Clostridium difficile toxin A is known to cause colonic epithelial cell apoptosis, which is considered the main causative event that triggers inflammatory responses in the colon, reflecting the concept that the essential role of epithelial cells in the colon is to form a physical barrier in the gut. We previously showed that toxin A-induced colonocyte apoptosis and subsequent inflammation were dependent on prostaglandin E2 ($PGE_2$) produced in response to toxin A stimulation. However, the molecular mechanism by which $PGE_2$ mediates cell apoptosis in toxin A-exposed colonocytes has remained unclear. Here, we sought to identify the signaling pathway involved in toxin A-induced, $PGE_2$-mediated colonocyte apoptosis. In non-transformed NCM460 human colonocytes, toxin A exposure strongly upregulated expression of Bak, which is known to form mitochondrial outer membrane pores, resulting in apoptosis. RT-PCR analyses revealed that this increase in Bak expression was attributable to toxin A-induced transcriptional upregulation. We also found that toxin A upregulation of Bak expression was dependent on $PGE_2$ production, and further showed that this effect was recapitulated by an Prostaglandin E2(PGE2) receptor-1 receptor agonist, but not by agonists of other EP receptors. Collectively, these results suggest that toxin A-induced cell apoptosis involves $PGE_2$-upregulation of Bak through the EP1 receptor.
Caveolin-1 of the caveolin family of proteins regulates mammary gland development and has been shown to play a contradictory role in breast tumor progression. A specific anti-Caveolin-1 antibody will be useful for functional study of Caveolin-1 in different tissues. In this study, we generated a rabbit polyclonal antibody that specifically recognizes the N-terminal amino acids 50-65 of Caveolin-1. This polyclonal antibody specifically reacted with Caveolin-1 extracted from cells of different species, including human epithelial A431 cells, goat primary mammary epithelial cells and mice fibroblast NIH 3T3 cells, by Western blotting. Endogenous Caveolin-1 protein expressing in cells and normal human tissues was detected by this polyclonal antibody using immunocytofluorescent and immunohistochemical staining, respectively. Furthermore, an apparent decrease in Caveolin-1 expression in tumorous breast and colon tissues was detected by this polyclonal antibody. In conclusion, we have identified amino acids 50-65 of Caveolin-1, which contains an epitope that is specific to Caveolin-1 and is conserved in the human, goat and mouse. In future, this anti-Caveolin-1 antibody can be used to examine the progression of breast and colon cancers and to study functions of Caveolin-1 in human, goat and mouse cells.
Intestinal epithelial cells (IEC) play an important role in the mucosal immune system. IEC-derived mediators of inflammatory cascades play a principal role in the development of colon inflammation. The aim of this study was to investigate the inhibitory effect of aqueous extracts of Schizandra chinensis fruits (SC-Ex) on the production of inflammatory mediators by the human colonic epithelial cells. HT-29 cells were stimulated with dextran sulfate sodium in the presence or absence of SC-Ex to examine the cytoprotection and production of IL-8 and reactive oxygen species (ROS). It was shown that dextran sulfate sodium (DSS) caused the reduction of cell viability and production of IL-8 and ROS in DSS-treated HT-29 cells. We observed that the treatment of SC-Ex protected significantly cell proliferation from DSS-induced damage in dose-dependent manner. SC-Ex (10 and 100 ${\mu}g$/ml) also suppressed DSS-induced production of IL-8 mRNA and protein. Moreover, DSS-induced ROS production was inhibited markedly by the treatment of 100 ${\mu}g$/ml SC-Ex. These results suggest that SC-Ex has the protective effects on DSS-induced cell damage and the release of inflammatory mediators in the intestinal epithelial cells.
This study investigated therapeutic candidates with anti-inflammatory potential among traditional dietary ingredients targeting inflammatory bowel disease (IBD). Both Avena sativa and traditional fermented products, such as Korean soy paste, are popular health foods. We investigated the anti-inflammatory effects of soy paste combined with A. sativa (KDA), compared with soy paste without A. sativa (KD) by evaluating the expression of pro-inflammatory cytokines in lipopolysaccharide-stimulated RAW264.7 mouse macrophages and HT-29 human colon epithelial cells. KDA significantly inhibited the production of nitric oxide (NO) and downregulated the pro-inflammatory cytokines, such as interleukin (IL)-1β, IL-6, and tumor necrosis factor-α in lipopolysaccharide (LPS)-induced RAW264.7 cells. In another in vitro experiment involving LPS-stimulated HT-29 cells, KDA suppressed the levels of IL-8, which is the chemokine elevated in IBD. In addition, KDA exhibited anti-oxidative properties, such as 2,2-diphenyl-1-picryl-hydrazyl-hydrate (DPPH) and 2,2'-azino-bis(3-ethylbenz-thiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) radical scavenging activity. Our findings revealed that A. sativa combined with soy paste exhibits a synergistic anti-inflammatory and anti-oxidant effect following fermentation. These results suggest that KDA may be used as a potential anti-inflammatory therapy against IBD.
Invasion of enteric bacteria, such as Salmonella and invasive E. coli, into intestinal epithelial cells induces proinflammatory gene responses and finally epithelial cell apoptosis. In this study, we asked whether invasive bacterial infection of human intestinal epithelial cells could upregulate cyclooxygenase-2 (COX-2) gene expression and whether increased COX-2 expression could influence intestinal epithelial cell apoptosis. Expression of COX-2 mRNA and prostaglandin (PG) $E_2$ production were upregulated in HT-29 colon epithelial cells which were infected with S. dublin or invasive E. coli, as examined by quantitative RT-PCR and radioimmunoassay. Inhibition of COX-2 expression and $PGE_2$ production using NS-398, a specific COX-2 inhibitor, showed a significant increase of epithelial cell apoptosis and caspase-3 activation in HT-29 cells infected with invasive bacteria. However, the addition of valerylsalicylate, a specific COX-1 inhibitor, did not change apoptosis in S. dublin-infected HT-29 cells. These results suggest that up regulated COX-2 expression and $PGE_2$ production in response to invasive bacterial infection could contribute to host defense by inhibiting apoptosis of intestinal epithelial cells.
Kim, Hangeun;Kim, Hye Sun;Park, Woo Jung;Chung, Dae Kyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권11호
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pp.1849-1855
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2015
Staphylococcus aureus plays an important role in sepsis, septic shock, pneumonia, and wound infections. Here, we demonstrate that Lactobacillus plantarum extracts inhibited S. aureus-induced cell death of a human epithelial cell line, HT-29. In particular, we have shown that S. aureus-induced cell death was abolished by neutralization of α-toxin, indicating that α-toxin is the major mediator of S. aureus-induced cell death. DNA fragmentation experiment and caspase assay revealed that the S. aureus-induced cell death was apoptosis. L. plantarum extracts inhibited the generation of effector caspase-3 and the initiator caspase-9 in S. aureus- or α-toxin-induced cell death. Moreover, expression of Bcl-2, an anti-apoptotic protein, was activated in L. plantarum extract-treated cells as compared with the S. aureus- or α-toxin-treated only cells. Furthermore, S. aureus-induced apoptosis was efficiently inhibited by lipoteichoic acid and peptidoglycan of L. plantarum. Together, our results suggest that L. plantarum extracts can inhibit the S. aureus-mediated apoptosis, which is associated with S. aureus spreading, in intestinal epithelial cells, and may provide a new therapeutic reagent to treat bacterial infections.
Epithelial-to-mesenchymal transition (EMT) is a collection of events that allows the conversion of adherent epithelial cells, tightly bound to each other within an organized tissue, into independent fibroblastic cells possessing migratory properties and the ability to invade the extracellular matrix. EMT contributes to the complex architecture of the embryo by permitting the progression of embryogenesis from a simple single-cell layer epithelium to a complex three-dimensional organism composed of both epithelial and mesenchymal cells. However, in most tissues EMT is a developmentally restricted process and fully differentiated epithelia typically maintain their epithelial phenotype. Recently, elements of EMT, specially the loss of epithelial markers and the gain of mesenchymal markers, have been observed in pathological states, including epithelial cancers. Increasing evidence has confirmed its presence in human colon during colorectal carcinogenesis. In general, chronic inflammation is considered to be one of the causes of many human cancers including colorectal cancer(CRC). Accordingly, epidemiologic and clinical studies indicate that patients affected by ulcerative colitis and Crohn's disease, the two major forms of inflammatory bowel disease, have an increased risk of developing CRC. A large body of evidence supports roles for the SMAD/STAT3 signaling pathway, the NF-kB pathway, the Ras-mitogenactivated protein kinase/Snail/Slug and microRNAs in the development of colorectal cancers via epithelial-tomesenchymal transition. Thus, EMT appears to be closely involved in the pathogenesis of colorectal cancer, and analysis refered to it can yield novel targets for therapy.
Kim, Ju-Ho;Oh, Sae-Ock;Jun, Sung-Sook;Jung, Jin-Sup;Woo, Jae-Suk;Kim, Yong-Keun;Lee, Sang-Ho
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제3권1호
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pp.75-82
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1999
It has been reported that activation of sphingomyelin pathway and nonsteroidal anti-inflammatory drugs (NSAIDS) inhibit the promotion of colon carcinoma. Ceramide, a metabolite of sphingomyelin, and indomethacin were shown to induce apoptosis in colon carcinoma cells. However, the mechanisms of ceramide- and indomethacin-induced apoptosis in the colon carcinoma cells are not clearly elucidated. Recent studys showed that indomethacin-induced apoptosis in colon cancer cells through the cyclooxygenase-independent pathways, and that may be mediated by generation of ceramide. In this study, we compared effects of ceramide and indomethacin on important modulators of apoptotic processes in HT29 cells, a human colon cancer cell line. Ceramide and indomethacin induced apoptosis dose- and time- dependently. Ceramide and indomethacin increased stress-activated protein kinase (SAPK) activity, and decreased mitogen-activated protein kinase (MAPK) activity. The expression of Bak was increased by the treatment of ceramide and indomethacin. The expression of other Bcl-2 related proteins (Mcl-1, $Bcl-X_L,$ Bax) which were known to be expressed in colon epithelial cells was not changed during the ceramide- and indomethacin-induced apoptosis. Our results suggest that ceramide and indomethacin share common mechanisms for induction of apoptosis in HT29 cells.
대한약학회 2003년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.2-2
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pp.80.1-80.1
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2003
Intestinal epithelial cells can produce cytokines and chemokines that play an important role in the mucosal immune response. Regulation of this production is important to prevent inflammatory tissue damage. Glycyrrhiza glabra has been shown to inhibit inflammation. The aim of this study was to examine the inhibitory effect of 18- beta-glycyrrhetinic acid, a triterpenoid saponin of Glycyrrhiza glabra, on IL-S production via mitogen-activated protein kinases (MAPKs) and nuclear factor-kappa B (NF-kB) in TNF-alpha-stimulated human colon epithelial cells. (omitted)
Ahmed, Muhammad Bilal;Islam, Salman Ul;Sonn, Jong Kyung;Lee, Young Sup
Molecules and Cells
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제43권7호
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pp.662-670
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2020
We have investigated the involvement of the pre-mRNA processing factor 4B (PRP4) kinase domain in mediating drug resistance. HCT116 cells were treated with curcumin, and apoptosis was assessed based on flow cytometry and the generation of reactive oxygen species (ROS). Cells were then transfected with PRP4 or pre-mRNA-processing-splicing factor 8 (PRP8), and drug resistance was analyzed both in vitro and in vivo. Furthermore, we deleted the kinase domain in PRP4 using Gateway™ technology. Curcumin induced cell death through the production of ROS and decreased the activation of survival signals, but PRP4 overexpression reversed the curcumin-induced oxidative stress and apoptosis. PRP8 failed to reverse the curcumin-induced apoptosis in the HCT116 colon cancer cell line. In xenograft mouse model experiments, curcumin effectively reduced tumour size whereas PRP4 conferred resistance to curcumin, which was evident from increasing tumour size, while PRP8 failed to regulate the curcumin action. PRP4 overexpression altered the morphology, rearranged the actin cytoskeleton, triggered epithelial-mesenchymal transition (EMT), and decreased the invasiveness of HCT116 cells. The loss of E-cadherin, a hallmark of EMT, was observed in HCT116 cells overexpressing PRP4. Moreover, we observed that the EMT-inducing potential of PRP4 was aborted after the deletion of its kinase domain. Collectively, our investigations suggest that the PRP4 kinase domain is responsible for promoting drug resistance to curcumin by inducing EMT. Further evaluation of PRP4-induced inhibition of cell death and PRP4 kinase domain interactions with various other proteins might lead to the development of novel approaches for overcoming drug resistance in patients with colon cancer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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