본 연구에서는 안정성이 보장된 효모를 숙주로 하여 이미 lysozyme 생산능이 확인된 저 copy수의 YCp type인 pHK101의 생산능을 높이기 위해 고발현 벡터인 다 copy 수의 YEp type인 pHK501을 구축하였다. pHK501과 pHK101형질전환체의 M. luteus를 기질로 한 lysoplate assay 비교에서 확실한 생산량의 증가를 생육저지환을 통해 확인하였다. 또한 E. coli에서 peptidoglycan만을 추출하여 기질로 사용한 lysoplate assay에서도 pHK501형질전환체의 배양액 중에는 정상적 인 HLY의 생산을 직접 확인할 수 있었다. 플라스크 배양에서 배양시간에 따른 HLY의 최대 생산량은 81시간만에 pHK501형질전환체가 55 units/$m\ell$에 도달됨으로써 pHK101(7 units/$m\ell$)에 비해 약 8배 증가됐다. 발효조규모에서의 HLY 생산은 24시간만에 26.8 units/$m\ell$(1.12 units/$m\ell$/h)에 도달하였고 전체 생산성은 플라스크배양(0.625 units/$m\ell$/h)에 비해 약 1.8배 정도 증가되었다.
The cDNA, encoding human lysozyme (HLY) which was isolated from a human placenta cDNA library, has been well characterized (Yoshimura et al., 1988). Based on the communication, we have prepared an artificial HLY gene from chemically synthesized 38-oligomer with high codon usage in Saccharomyces cerevisiae. For directing the synthesis and secretion of HLY in S. cerevisiae, an expression vector, pHKl was constructed by inserting the HLY gene, containing a synthetic HLY secretion signal sequence, between the yeast GAP promoter and PH05 terminator. From a lysoplate assay, we have confirmed an yeast transformant harboring a pHK1 which makes a clearing zone on the overlayed Micrococcus luteus. This result means a chemically synthesized HLY gene which was normally expressed and secreted in yeast.
We have intended to accelerate the secretion of human lysozyme(HLY) with permeabilizing agents from the cultivated cells of the recombinant Saccharomyces cerevisiae. The five agents CaCl2, Tween 80, ethanol, Triton X 100, and cetyltrimethylammonium bromide(CTAB) were used as permeabilizing agents. Treatments of the yeast cell with CaCl2, Tween 80, and ethanol were effective to increase the secretion from the yeast cells. Especially, treatment of 10% ethanol increased the extracellular HLY activity by 38.6% at 30oC for 48 h in culture broth. But Triton X 100 and CTAB unexpectedly didn't play a role in increase of HLY secretion. Recovery of a foreign protein by permeabilizing agents is easier than by osmotic shock, and is less expensive than enzymatic digestion.
본 연구는 식품에 존재하는 L. monocytogenes균의 신속한 검출방법을 조사하기 위하여 hlyA 유전자 primer 를 사용하여 PCR 기법으로 행하였으며 primer의 특이성과 PCR의 민감성, L. monocytogenes균의 검출을 위한 최적조건 및 우유 및 소고기의 적용시험을 각각 조사하였다 PCR 특이성 실험에서는 L. monocytogenes 20주에 대한 PCR 분석 결과 모두 713 bp 크기의 PCR products를 확인할 수 있었고, Listeria spp. 및 다른 세균에서는 동일한 Poducts가 증폭되지 않으므로써 hiyA based primer의 L. monocytogenes에 대한 PCR 특이성이 관찰되었다. PCR 분석법의 민감도는 L. monocytogenes ATCC 19111의 1 pg DNA와 2.4$\times$$10^4$cell 수준에서 target DNA가 증폭되었다. Tailing의 제거와 민감도를 높이기 위하여 PCR cycle 수에 따른 최적조건을 조사한 결과 20~30 cycle 정도의 PCR clcyle 수가 좋은 것으로 나타났으며 민감도는 20 cycle PCR amplification을 행한 후 한번 더 10~15 cycle로 처리했을 때 훨씬 증가하였다. 한편, 우유(10 mL)와 쇠고기 절편(10g)에 0~$10^{7}$ CFU/mL 또는 g 수준으로 L. monocytogenes를 신속하게 검출하기 위하여 PCR을 적용한 결과, 우유시료에서는 2번 PCR을 반복함으로써 2 cells까지 검출할 수 있었고, 쇠고기 절편은 LEB로 35$^{\circ}C$에서 24시간 증균하여 PCR합으로써 2.6$\times$$10^2$cell가지 검출할 수 있었다.
Two housekeeping genes, of Listeria monocytogenes dat and hlyA, were analyzed in a set of 28 isolates from different sources to estimate their genetic diversities. These strains were previously characterized by pulsed-field gel electrophoresis. Complete gene sequences for dat (465 bp) and hlyA (584 bp) had sequence similarity of $99.87-100\%$ S and $99.96-100\%$ S among isolates, respectively. Also, we found that the numbers of sequence types (ST) were about 3-fold less than those of PFGE types (3 STs versus 11 PFGE types). There was, however, a good correlation between the PFGE patterns and phylogenetic grouping of two gene sequences among the isolates. Further studies on analyzing additional loci would increase the discriminatory power of sequence typing for L. monocytogenes strains.
Competitive polymerase chain reaction (cPCR) was used to develop a direct enumeration method of Listeria monocytogenes in pork meat. Pork meat was artificially inoculated with L. monocytogenes and DNA was extracted using guanidine thiocyanate-phenol-chloroform and subjected to PCR amplification. Sixteen primer sets for L. monocytogenes hlyA gene were tested for sensitive detection and the DG69/DG74 primer set was selected. The detection limit achieved with this primer set was as low as 860 colony-forming units (cfu) per 0.1 g of pork meat. When the samples were cultured at $30^{\circ}C$ for 16 hr in Brain Heart Infusion (BHI) medium, even a single bacterium could be detected with this primer set by PCR. For cPCR, the hlyA gene, which features a 148 bp-deletion, was cloned in the pGEM-4Z vector. A known amount of competitor DNA which has the same primer binding sites was co-amplified with L. monocytogenes total DNA from the artificially inoculated pork meat. The cell-number determined by cPCR was approximately equal to cfu from the Most Probable Number (MPN) method. The whole procedure took only 5 hr.
Listeria spp. were isolated from a total of 402 naturally contaminated domestic ready-to-eat (RTE) vegetable samples by the conventional Food and Drug Administration protocol and confinned by API-Listeria kit. Also, the susceptibility to 12 antibiotics, polymerase chain reaction (PCR) assay for virulence gene of pathogenic Listeria monocytogenes isolates, and in vitro virulence assay using myeloma and hybridoma cells from murine and human sources were tested. Among the samples, 17 samples (4.2%) were found to be contaminated with Listeria species. Among the 17 strains of Listeria spp. isolates, only 2 strains (11.8%) of L. monocytogenes and 15 strains (88.2%) of L. innocua were identified. Antibiotic susceptibility test showed that the Listeria spp. isolates were very susceptible to the antibiotics tested, except for nalidixic acid. Among 17 strains of Listeria spp., PCR analysis showed that 2 strains of L. monocytogenes isolates proved to have a virulence hly gene, but none of L. innocua had the hly gene. Also, hybridoma Ped-2E9 cells assay showed that only L. monocytogenes isolates killed approximately 95-99% hybridoma cells after 6 h, but L. innocua isolates had about 0-5% lethal effect. These results indicate that PCR assay with hly primer or hybridoma Ped-2E9 cells assay could be used as a good monitoring tool or in vitro virulence test for L. monocytogenes.
야콘의 유전자원 4계통(HLY1, HLY2, HLY3, HLY4)에 대하여 단백질, 회분, 탄수화물, 식이섬유, 비타민, 프락토올리고당 등의 영양 성분을 분석하였다. 2010년 강원도 평창군 진부면(해발고도 560 m) 시험 포장에서 5월 12일에 정식하여 10월 20일에 수확한 야콘을 시료로 사용하여 농촌진흥청 식품 분석표에 준하여 분석하였다. 야콘은 신선한 괴근 100g당 열량 44~59kcal, 수분함량이 86~87%, 회분 0.2~0.4g, 단백질 0.5~0.7g, 탄수화물 11.0~13.1g, 지방 0.1~0.2g, 식이섬유 1.4~1.7g, 칼슘 8~10mg, 인 24~31mg, 철 0~0.1mg, 나트륨 1~2mg, 칼륨 154~208mg, 레티놀 0.001~0.004mg, 카로틴 0.001~0.024mg, 티아민 0.03~0.11mg, 리보플라빈 0.02~0.03mg, 니아신 0.3~0.4mg, 아스코르브산 10.6~29.6mg이 들어 있는 것으로 조사되었다. 또한 야콘의 괴근에는 당 함량이 많았는데 생체중 100g당 프락토올리고당 5.7~10.1g, 글루코스 0.3~0.9g, 프럭토스 0.2~0.7g, 슈크로스 0.4~3.3g이 함유되어 있었다. 따라서 야콘은 베타카로틴, 칼슘, 탄수화물 등 14가지 필수영양소를 함유하고 있는 알칼리성 식품으로서 향후 기능성 식품소재로도 이용가치가 높으리라 판단된다.
SlyA는 Salmonella와 같은 장내세균과(Enterobacteriaceae)에 속하는 E. coli에서 용혈소(HlyE)의 발현을 조절하는 전사 조절인자로 알려져 있다. 그러나 Salmonella에는 slyA 유전자가 있지만 hlyE 유전자는 없다. Salmonella에서 SlyA의 역할을 탐구하기 위해 slyA 유전자가 결실된 돌연변이주를 사용하였다. S. Typhimurium CK295 (ΔslyA)는 allelic exchange 방법으로 제작되었다. 야생형 균주와 CK295 균주의 비교시험에서 생육 특성, 운동성, 총 단백질 분석, 분비 단백질 분석 등에서 특별한 차이가 발견되지 않았다. CK295 균주는 야생형에 비해 생물막을 약간 적게 생성하는 패턴을 보였다. 흥미롭게도, 대식세포에서의 생존능력을 비교한 결과, CK295 균주는 야생형에 비해 생존능력이 60% 감소하는 것으로 나타났다. 마우스의 독성을 테스트하기 위해 6주령 BALB/c 마우스에 경구 투여한 후 사망률을 측정하였다. 그 결과, BALB/c에서 CK295 (ΔslyA)의 LD50 값이 야생형 S. Typhimurium 𝜒3339의 값보다 100배 이상 높게 나타났다. 종합적으로, SlyA는 살모넬라균의 in vivo 생존에 관여하는 독성 인자를 코딩하는 유전자의 발현을 조절하는 것으로 추정된다.
Kim, Min-Ju;Han, Jae-Kwang;Park, Jong-Su;Lee, Jin-Sung;Lee, Soon-Ho;Cho, Joon-Il;Kim, Keun-Sung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권6호
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pp.872-879
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2015
Many strains of Bacillus cereus cause gastrointestinal diseases, and the closely related insect pathogen Bacillus thuringiensis has also been involved in outbreaks of diarrhea. The diarrheal diseases are attributed to enterotoxins. Sixteen reference strains of B. cereus and nine commercial and 12 reference strains of B. thuringiensis were screened by PCR for the presence of 10 enterotoxigenic genes (hblA, hblC, hblD, nheA, nheB, nheC, cytK, bceT, entFM, and entS), one emetogenic gene (ces), seven hemolytic genes (hlyA, hlyII, hlyIII, plcA, cerA, cerB, and cerO), and a pleiotropic transcriptional activator gene (plcR). These genes encode various enterotoxins and other virulence factors thought to play a role in infections of mammals. Amplicons were successfully generated from the strains of B. cereus and B. thuringiensis for each of these sequences, except the ces gene. Intriguingly, the majority of these B. cereus enterotoxin genes and other virulence factor genes appeared to be widespread among B. thuringiensis strains as well as B. cereus strains.
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