In the setting of semidenite linear complementarity problems on $S^n$, we focus on the Stein Transformation $S_A(X)\;:=X-AXA^T$, and show that $S_A$ is (strictly) monotone if and only if ${\nu}_r(UAU^T{\circ}\;UAU^T)$(<)${\leq}1$, for all orthogonal matrices U where ${\circ}$ is the Hadamard product and ${\nu}_r$ is the real numerical radius. In particular, we show that if ${\rho}(A)$ < 1 and ${\nu}_r(UAU^T{\circ}\;UAU^T){\leq}1$, then SDLCP($S_A$, Q) has a unique solution for all $Q{\in}S^n$. In an attempt to characterize the GUS-property of a nonmonotone $S_A$, we give an instance of a nonnormal $2{\times}2$ matrix A such that SDLCP($S_A$, Q) has a unique solution for Q either a diagonal or a symmetric positive or negative semidenite matrix. We show that this particular $S_A$ has the $P^{\prime}_2$-property.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1996.07a
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pp.26-38
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1996
To investigate the regulation of plant histone H2A gene expression, we isolated two H2A genes (TH254 and TH274) from wheat, which encode different types of variants. Both genes had an intron in the coding region. In the promoters, some characteristics sequences, such as Oct and Nona motifs, which are conserved among plant histone genes were also found, and they were located in a short region (about 120 bp) upstream from the putative TATA box. Analyses of promoter activity with H2A-GUS fusion genes in the transient system using tobacco protoplasts revealed novel types of positive cis-acting sequences in the TH254 promoter: a direct repeat of a 13-bp sequence (AGTTACATTATTG) and a stretch composed of an AT-rich sequence (ATATAGAAAATTAAAA) and a G-box (CACGTG). A quantitative S1 assay of the mRNA amounts from the TH254/GUS and TH274/GUG chimeric genes in stably transformed and cell cycle-synchronized tobacco cell lines showed that the promoters of both genes contained at least one cis-acting element responsible for S phase-specific expression. Histochemical analysis of transgenic tobacco plants carrying the chimeric genes showed that the promoters of the two H2A genes were both active in developing seedlings and flower organs but regulated in different manner.
Erythropoietin (EPO) is a glycoprotein that mediates the growth and differentiation of erythroid progenitors. In order to produce recombinant human erythropoietin in tobacco plant, the EPO genomic DNA (5.4 kb) was cloned into plant expression vectors, pBI$\Delta$GUS121, pBD$\Delta$GUS121 and pPEV-1, and introduced in Nicotiana tabacum (var. Xanthi) via Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. After selection on MS media containing kanamycin (Km), 10 Km-resistant plants were obtained per each construct. The correct integration of EPO genomic DNA in the genome of transgenic plant was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). Northern blot showed that transcripts of 1.8 kb length were produced in leaves of the plants, but there was no difference of mRNA amount according to promoter number and 5'-untranslated sequence (UTS). The proteins obtained from leaves of transgenic plants were immunologically detected by Western blot using rabbit anti-human EPO polyclonal antibody. The expressed protein appeared as smaller band of apparent mass of 30 kDa as compared to the EPO protein from human urine (37 kDa), suggesting that the modification (glycosylation) system in tobacco plant might be different from that of mammalian cells.
Park, Hyeong Cheol;Kim, Man Lyang;Kang, Yun Hwan;Jeong, Jae Cheol;Cheong, Mi Sun;Choi, Wonkyun;Lee, Sang Yeol;Cho, Moo Je;Kim, Min Chul;Chung, Woo Sik;Yun, Dae-Jin
Molecules and Cells
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v.27
no.4
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pp.475-480
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2009
The transcription of soybean (Glycine max) calmodulin isoform-4 (GmCaM-4) is dramatically induced within 0.5 h of exposure to pathogen or NaCl. Core cis-acting elements that regulate the expression of the GmCaM-4 gene in response to pathogen and salt stress were previously identified, between -1,207 and -1,128 bp, and between -858 and -728 bp, in the GmCaM-4 promoter. Here, we characterized the properties of the DNA-binding complexes that form at the two core cis-acting elements of the GmCaM-4 promoter in pathogen-treated nuclear extracts. We generated GUS reporter constructs harboring various deletions of approximately 1.3-kb GmCaM-4 promoter, and analyzed GUS expression in tobacco plants transformed with these constructs. The GUS expression analysis suggested that the two previously identified core regions are involved in inducing GmCaM-4 expression in the heterologous system. Finally, a transient expression assay of Arabidopsis protoplasts showed that the GmCaM-4 promoter produced greater levels of GUS activity than did the CaMV35S promoter after pathogen or NaCl treatments, suggesting that the GmCaM-4 promoter may be useful in the production of conditional gene expression systems.
Microsomal ${\omega}-3$ fatty acid desaturase (FAD3) is an essential enzyme in the production of the n-3 polyunsaturated fatty acid ${\alpha}-linolenic$ acid during the seed developing stage. To understand the regulatory mechanism of the gene encoding the ${\omega}-3$ fatty acid desaturase, a genomic fragment corresponding to the previously isolated perilla seed PfFAD3 cDNA was amplified from perilla (Perilla frutescens Britt) by GenomeWalker PCR. Sequence analysis of the fragment provided with identification of a 1485-bp 5'-upstream region and a 241-bp intron in the open reading frame. To determine the tissue-specificity of the PfFAD3 gene expression, the 5'-upstream region was fused to the ${\beta}-glucuronidase$ (GUS) gene and incorporated into Arabidopsis thaliana. Histochemical assay of the transgenic plants showed that GUS expression was restricted to seed and pollen, showing that PfFAD3 gene was exclusively expressed in those tissues.
An efficient transformation system for high-throughput functional genomic studies of kiwifruit has been developed to overcome the problem of necrosis in Actinidia arguta explants. The system uses Agrobacterium tumefaciens strain EHA105 harbouring the binary vector pART27-10 to inoculate leaf strips. The vector contains neomycin phosphotransferase (nptII) and ${\beta}$-glucuronidase (GUS) (uidA) genes. A range of light intensities and different strengths of Murashige and Skoog (MS) basal salt media was used to overcome the problem of browning and/or necrosis of explants and calli. Callus browning was significantly reduced, resulting in regenerated adventitious shoots when the MS basal salt concentration in the culture medium was reduced to half-strength at low light intensity ($3.4\;{\mu}mol\;m^{-2}\;s^{-1}$) conditions. Inoculated leaf strips produced putative transformed shoots of Actinidia arguta on half-MS basal salt medium supplemented with 3.0 $mg\;l^{-1}$ zeatin, 0.5 $mg\;l^{-1}$ 6-benzyladenine, 0.05 $mg\;l^{-1}$ naphthalene acetic acid, 150 $mg\;l^{-1}$ kanamycin and 300 $mg\;l^{-1}$$Timentin^{(R)}$. All regenerated plantlets were deemed putativ transgenic by histochemical GUS assay and polymerase chain-reaction analysis.
Optimal protocol for efficient genetic transformation has been defined to aid future strategies of genetic engineering in pigeon pea with agronomically important genes. Transgenic pigeonpea plants were successfully produced through Agrobacterium tumefaciens-mediated genetic transformation method using cotyledonary node explants by employing defined culture media. The explants were co-cultivated with A. tumefaciens strain C-58 harboring the binary plasmid, pCAMBIA-1301 [con-ferring $\beta$-glucuronidase(GUS) activity and resistance to hygromycin] and cultured on selection medium (regeneration medium supplemented with hygromycin) to select putatively transformed shoots. The shoots were then rooted on root induction medium and transferred to pots containing sand and soil mixture in the ratio of 1:1. About 22 putative TO transgenic plants have been produced. Stable expression and integration of the transgenes in the putative transgenics were confirmed by GUS assay, PCR and Southern blot hybridization with a transformation efficiency of over 45%. Stable integration and expression of the marker gene has been confirmed in the TO and T1 transgenics through PCR, and Southern hybridization.
Fresh Oenanthe javanica DC. leaves still attached to stem architecture were immersed in NaOH solution for 3 min before agroinfiltration and co-cultivation. MTT assay revealed that NaOH solution containing up to 0.7% was still safe for the leaf viability. Fluorometric GUS enzyme analysis showed that 0.5% NaOH-treated leaf tissues were efficiently transformed by vacuum infiltration for 20 min with Agrobacterium cells at a density of $OD_{600}=0.5$ to 1.0. These conditions worked well for the expression of HBsAg, which was confirmed by western blotting and ELISA.
Lee Ki-Jung;Seo Jen-Kyung;Lee Hye-Young;Jeon Eun-Hee;Shin Sang-Hyun;Lee Jai-Heon;Kim Doh-Hoon;Ko Jong-Min;Hahn Won Young;Baek In-Youl;Oh Boung-Jun;Chung Young-Soo
Journal of Life Science
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v.16
no.2
s.75
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pp.289-296
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2006
In order to establish highly efficient gene transfer condition at early stage of soybean transformation, various experiments were performed and compared their efficiencies by transient GUS analysis; those conditions are genotype determination of Korean soybean cultivars for amenability to Agro-infection, appropriate agar and selective agent concentration, orientation of explant placement, hormone pre-culture, and liquid selection condition. In the genotype screen of Korean soybean varieties, 14 amenable genotypes were selected. For efficient Agrobacterium washing, cefotaxime was chosen and hygromycin at the concentration of 10 and 15 ppm was used as selection agent in the media. Agar concentration was slightly better in 0.6% and 0.8% for both shoot and callus formation, and explant placement with adaxial side down showed high frequency of GUS expression. For wounding treatment, oriental needle was efficient than scalpel for shoot formation and gene transfer. To increase the frequency of gene transfer, hormone pre-treatment was applied. BA at the concentration of 5 and 10 ppm resulted in better survival at the late stage of selection in shoot elongation media. Selection in liquid media after hormone pre-treatment seemed to be effective to remove the escaped non-transformants at early stage of procedure. Considering the results obtained, Eunhakong could be the first choice as a material for soybean transformation among Korean soybean genotypes.
Park, Yoon-Kyung;Park, Gene-Sue;Yang, Young-Ki;Cheong, Hyeon-Sook
Journal of Plant Biology
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v.39
no.2
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pp.93-98
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1996
In order to enhance the system of potato transformation and further regeneration, potato was transformed using the Agrobacterium tumefaciens harboring $\beta$-glucuronidase (GUS) gene. We found that a series fo modified medium ttained 100% shoot regeneration within 5 weeks after the preincubated explants on stage I medium were infected with Agrobacterium. Callus appeared at the cut edges of stem segments on stage II medium, mainly at the basal parts. Some explants started to form shoots after two to three weeks on stage III medium containing kanamycin (50 mg/L). When transferred to MS medium containing 200 mg/L kanamycin, 81% of the transformed shoots formed roots at the cut edge of the plantlets. In contrast, untrasformed shoots never rooted and became yellowish after few weeks under the same conditions. Southern and northern analysis indicated in vitro shoot regeneration on the callus derived from the potato explants, which were incubated with Agrobacteria. The regeneration cycle was shortened after the transformatin and finally the transformation efficiency was highly enhanced.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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