A fully automatic image analysis method was applied to obtain detailed data on morphological parameters of a glucoamylase fermentation broth with Aspergillus niger No. PFST-38. a mutant strain for glucoamylase hyperproducer. In the initial stage of fermentation. there was an increase in hyphal length. whereas at the end of the fermentation a decrease in hyphal length and increase in hyphal thickness were observed. The percentage of clumps declined with dilution and the influence of shear stress upon hyphal length was negligible. It was found that the slower the decrease in the main hyphal length and the number of tips with the fermentation time. the higher the glucoamylase production rate was recorded. The production rate of glucoamylase was closely related to the increase in the hyphal thickness.
The effects of non-ionic surfactants (Triton X-100 and Tween 80) on cloned glucoamylase production and secretion in recombinant Saccharomyces cerevisiae culture were studied. Even though the extracellular glucoamylase activity was increased by addition of Tween 80 due to the increase of the cell mass, Tween 80 did not play a role in the increase of glucoamylase secretion. On the addition of Triton X-100 addition, the secretion efficiency was increased while the cell growth was inhibited. Triton X-100 was added to the culture broth after 24 hr of culture to minimize the inhibition of the cell growth, and consequently the glucoamylase activity in the culture broth was increased by 12%.
Aspergillus niger No. PFST-38 was grown on complex media in 30L agitated fermentors at various aeration rates and stirrer speeds. We could correlate the mixing time as a function of the Reynolds number and the apparent viscosity, as follows. ${\theta}_M=2.95\;\NRe^{-0.52},\;{\theta}_M=1.88\;{\eta_a}^{0.57}$ Also, the effects of the apparent viscosity (${\theta}_a$), the impeller rotational speed (N), the air flow rate ($V_s$), and the mixing time (${\theta}_M$) on the oxygen transfer coefficient, $K_L a$ were determined experimentally, and equated as follows. $K_La=12.04N^{0.88}Vs^{0.71}{n_a}^{-0.83},\;K_La=30.2N^{0.88}Vs^{0.71}{\theta_M}^{-1.45}$$K_La$ increased as the agitation speed and the air flow rate increased. The rate of $K_La$ increase was dependent more on the rotational speed of impeller than on the air flow rate. The glucoamylase production increased with the increase of the agitation speed upto at 500 rpm and increased with the increase of air flow rate upto at 1.0 vvm. The values calculated from the above equation confirmed that the experimental maximum production of glucoamylase was achieved when the $K_La$ and the apparent viscosity of the broth were $260\;hr^{-1}$ and 1800 cps, respectively.
In liquid cultures using sucrose media, the coculture of Monascus with recombinant Saccharomyces cerevisiae expressing the glucoamylase gene from Aspergillus niger enhanced red pigment production by approx. 19%, compared with the coculture of wild type S. cerevisiae. Coculture with recombinant S. cerevisiae was more effective than with wild type S. cerevisiae for Monascus red pigment production. Cocultures of Monascus with commercial amylases of Aspergillus also induced high production of pigment and morphological changes in a solid culture using sucrose media.
A fungal strain which produced high levels of acid protease and amylase was isolated from the atmosphere for application to the manufacture of digestive enzme preparation. This study was carried out to elucidate its microbiological characteristics, environmental conditions for production of the enzymes, and relationships between the enzyme activity and acidity. 1. The isolate was identified as a fungal strain which belonged to Aspergillus niger by the manual of Rafer and Fennel, and was found to be a strain producing high levels of acid protease and amylase. 2. The optimal pH of tile enzymes produced by the strain were: protease, 2.0;, ${\alpha}-amylase$, 4 to 5; and glucoamylase, 3 to 5. 3. The optimal culture conditions for production of the enzymes were: protease (at pH 2.5), 2 to 3 days incubation on wheat bran at $30^{\circ}C$; ${\alpha}-amylase$ and glucoamylase(at pH 3.0), 3 days incubation at $30^{\circ}C$. 4. The production of acid protease and glucoamylase was increased approximately by 20 percent when 2 percent of corn starch was added to the wheat bran medium. 5. The addition of 0.3 percent ammonium sulfate to the wheat bran medium resulted in enhancing the enzyme production, especially of acid prctease.
Glucoamylase and ethanol productivities of HSDD-170 and HSDM-119 formed by S. cerevisiae and S. diastaticus protoplast fusion were investigated. For the production of the glucoamylase, soluble starch as carbon source, yeast extract and C. S. L as nitrogen source added into the basal medium were favorable. The production of the enzyme reached at maximum after cultivation of the fusant for 4 days at 3$0^{\circ}C$, aerobically. The properties of glucoamylase produced by fusants were very similar to those produced by S. diastaticus as based on optimum temperature, pH stability. In alcohol fermentation from starch, strain HSDD-170 fermented starch faster than either of its parental strains. The maximum of alcohol yield in 15% of liquefied potato starch was 7.5% (v/v).
Enhanced application of solid-state fermentation (SSF) in industrial production and the influence of SSF of Rhizopus K1 on glucoamylase productivity were analyzed using the flat band method. A growth model was implemented through SSF of Rhizopus K1 in this experiment, and spectrophotometric method was used to determine glucoamylase activity. Results showed that in bran and potato culture medium with 70% moisture in a loose state, ${\mu}$ of mycelium reached to $0.15h^{-1}$ after 45 h of culture in a thermostatic water bath incubator at $30^{\circ}C$. Under a low-magnification microscope, mycelial cells appeared uniform, bulky with numerous branches, and were not easily ruptured. The generated glucoamylase activity reached to 55 U/g (dry basis). This study has good utilization value for glucoamylase production by Rhizopus in SSF.
Glucoamylases catalyze a stepwise hydrolysis of starch with the production of glucose. In order to make an efficient conversion of starch into glucose, glucoamylases prepared from Rhizopus spp. (Sigma Co.) were attached to a porous glass and immobilized by glutaraldehyde-induced crosslinking. The porous glass used in this study was $ZrO_2$ coated, $40{\sim}80$ mesh, 550 A pore diameter. Using the forgoing glass, we could couple as much as 50mg of protein per gram of carrier. Substrate for the glucoamylase was an enzyrne-modified thin-toiling 30% cornstarch solution used where greater solubility and low viscosity are desired. Immobilized glucoamylase had an optimum pH 7.0 to the alkaline side of soluble enzyme. Km values of immobilized and soluble enzyme were 1.04 mM and 1.25mM, respectively. The thermal stability of glucoamylase was increased by immobilization and the immobilized enzyme showed an optimum temperature at $40{\sim}60^{\circ}C$. The continuous conversion of cornstarch to glucose by use of immobilized glucoamylase resulted in the production of a more than 90 DE product.
The catalytic activities of immobilized gIucoamylase in a packed bed column and a continuous stirred tank reactor have been compared. Rapid production of glucose from liquefied starch have been studied through, the continuous liquefaction and saccharification using settling chamber. The immobilized glucoamylase with chitin gave the saccharification yield of 20% with the dextrin concentration of 100 g/l in a residence of 20 min. in a packed bed column. The half-life of immobilized glucoamylase with chitin was 19 days. The glucoamyalse immobilized in chitin and encapsulated with Ca-alginate gave the saccharification yield of 6% with the dextrin concentration of 50 g/l in a residence of 20 min. in a packed bed column. The Ca-alginate encapsulated and chitin immobilized glucomylase had a half-life of 25 days, which is 6 day larger than that of the immobilized glucoamylase with chitin only. In continuous liquefaction and saccharification, the glucose yield was 17% for the liquefied starch with naked barley concentration of 50gA in a residence of 20 min.
One hundred and fifty one mutant strains were obtained from the parent strain Aspergillus oryzae MF by ultra-violet ray irradiation. Among those mutants a strain, Asp. oryzae UM-36 which hyperprodued protease, was selected and its morphological characteristics and the production of enzymes protease, ${\alpha}$-amylase, and glucoamylase on wheat bran koji and on soy-sauce koji were studied. The results obtained were as follows 1. The selected mutant showed slower growth and weak sporulation on malt agar and on Czapek agar than the parent strain. 2. The conidiophores of the mutant were generally shorter than those of the parent when grown on malt agar. 3. Sectoring in colonies was not found when grown on malt agar and on Czapek agar. 4. The level of protease production by the mutant was increased approximately 1,4-fold higher on wheat bran koji and 2-fold higher on soysauce koji than by the parent. 5. The production of ${\alpha}$-amylase and glucoamylase by the mutant were also increased as compared with the parent on wheat bran koji and on soy sauce koji. 6. In the case of parent strain and mutant strain, the highest activity of protease appeared after three days in wheat bran medium at $30^{\circ}C$ incubation, but the highest activities of ${\alpha}$-amylase and glucoamylase appeared after two days.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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