The pseudodisaccharide salbostatin, which consists of valienamine linked to 2-amino-1,5-anhydro-2-deoxyglucitol, is a strong trehalase inhibitor. From our Streptomyces albus ATCC 21838 genomic library, we identified thirty-two ORFs in a 37-kb gene cluster. Twenty-one genes are supposed to be a complete set of modules responsible for the salbostatin biosynthesis. Through sequence analysis of the gene cluster, some of the upstream gene products (SalB, SalC, SalD, SalE, and SalF) revealed functional resemblance with trehalose biosynthetic enzymes. On the basis of this rationale, we isolated the five genes (salB, salC, salD, salE, and salF) from the S. albus ATCC 21838 and cloned them into the expression vector pWHM3. We demonstrated the noticeable expression and accumulation of trehalose, using only the five upstream biosynthetic gene cluster of salbostatin, in the transformed Streptomyces lividans TK24. Finally, 490 mg/l trehalose was produced by fermentation of the transformant with sucrosedepleted R2YE media.
Plasmid pLEX3 isolated from the recombinant cosmid library of Zoogloea ramigera 115 was found to be responsible for the restoration of the rugose colony phenotype. To confirm the essential region responsible for the complementation, subclones were constructed from plasmid pLEX3 and transformed into mutant strain Z. ramigera 115SLR. The recombinant plasmids pLEX10 and pLEX11 were shown to complement the slime-forming property of Z. ramigera 115SLR. In a compositional analysis of the exopolysaccharides from Z. ramigera 115, Z. ramigera 115SLR, and Z. ramigera 115SLR harboring plasmid pLEX11, the exopolysaccharides showed a similar composition with glucose, galactose, and side chain groups. The complete nucleotide sequence of the 3.25kb genocim DNA insert in plasmid pLEX11 was determined and its analysis identified two open reading frames which could encode two proteins. The gene products derived form the two open reading frames were confirmed by and in vivo transcription using a T7-RNA polymerase. The ORF1 produced a 30 kDa protein, whereas the ORF2 was found responsible for the complementation of the morphological mutation and produced a 14 kDa protein. An in vivo gene expression of plasmid pTEX10 showed another open reading frame encoding a 50 kDa protein. The gene products form ORF1 and ORF2 are regarded as novel proteins which do not show any homology with other proteins.
팽나무버섯 균사체 DNA를 대장균 프라스미드인 PBR322를 이용하여 gene library를 작성 하였다. 팽나무버섯에서 ${\beta}-isopropyl$ malate dehydrogenase 유전자 클론을 얻었으며 이 클론은 대장균 Leucine 요구성 균주를 complementation 시켰다. 이 클론의 팽나무버섯 DNA 크기는 약 lKb였으며 BamH1과 Ava 1 제한효소 절단부위를 지니고 있었다.
To understand molecular mechanisms of mouse mammary gland involution, clones were isolated by differential screening of a cDNA library. Partial sequences of a clone showed 100% identity to cDNA sequences of mouse lysozyme P gene. Northern analysis was performed to examine expression levels of lysozyme mRNA in mammary gland at several physiological states. Expression of lysozyme gene was induced at involution day 5 compared with lactating stage. High levels of lysozyme mRNA were also detected at virgin tissues. Two types of separate genes, P and M lysozyme, have been known in mouse, and we found that both lysozyme P and M genes were expressed in mammary tissues by reverse transcriptase-polymerase chain reaction. The lysozyme enzyme activity determined by lysoplate assay was also higher in involuted mammary tissues compared with lactating tissues, showing a similar trend to its mRNA levels. Lysozyme is an antimicrobial protein and involved in host defense mechanism. The increase in lysozyme gene expression may help to prevent microbial infection during mammary gland involution at which stage the residual milk in the mammary gland provides good nutritional sources for microbial growth.
Yeast, like many other microbes, encounters large variations in ambient pH in their natural environments. Microorganisms capable of growing over a wide pH range require a versatile, efficient pH homeostatic mechanism protecting intracellular processes against extremes of pH. In several organisms, fusions to the bacterial lacZ gene have been extremely useful for the identification of genes expressed at different time during the life cycle or under different growth conditions. In this study, using the lacZ gene screening system, we surveyed a large number of yeast strains with lacZ insertion to identify genes regulated by pH. A yeast genomic library was constructed and inserted with lacZ by a shuttle mutagenesis procedure. The yeast transformants were individually picked up with a toothpick, replica-plated, and grown in alkaline pH medium. Among the 35,000 colonies screened, 10 candidate strains were identified initially by the $\beta$-gal assay. We finally confirmed two yeast strains carrying the genes whose expression are strictly dependent on pH of growth medium. One of the fusions showing a 10-fold induction in expression level in response to alkali pH was selected and further characterized. The pH-regulated gene was cloned by inverse PCR and a partial sequence of the gene was determined. Identification and characterization of the gene is currently under investigation.
We characterized a cytoplasmic actin gene locus in greenling Hexagrammos otakii (Scorpaeniformes). Genomic clones isolated from the greenling DNA library contained two homologous cytoplasmic actin gene copies (HObact2.1 and HObact2.2) in a tail-to-head orientation. Their gene structure is characterized by six translated exons and one non-translated exon. Exon-intron organization and the nucleotide sequences of the two actin gene isoforms are very similar. However, only the HObact2.1 isoform contains microsatellite-like, dinucleotide repeats in the 5'-flanking region (named HOms2002) and intron 1 following the non-translated exon 1 (named HOms769). One microsatellite locus (HOms769) was highly polymorphic while the other (HOms2002) was not. Based on bioinformatic analysis, different transcription factor binding motifs are related to stress and immune responses in the two actin isoforms. Semiquantitative and real-time reverse transcription-PCR assays showed that both isoform transcripts were detectable ubiquitously in all the tissues examined. However, the basal expression levels of each isoform varied across tissues. Overall, the two isoforms showed a similar, but not identical, expression pattern. Our data suggest that the cytoplasmic actin genes may be the result of a recent duplication event in the greenling genome, which has not experienced significant subfunctionalization in their housekeeping roles.
A genomic library of Streptococcus vestibularis ATCC49124 was constructed in an E. coli plasmid vector, and the urease-positive transformants harboring the urease gene cluster were isolated on Christensen-urea agar plates. The minimal DNA region required for urease activity was located in a 5.6 kb DNA fragment, and a DNA sequence analysis revealed the presence of a partial ureI gene and seven complete open reading frames, corresponding to ureA, B, C, E, F, G, and D, respectively. The nucleotide sequence over the entire ure gene cluster and 3'-end flanking region of S. vestibularis was up to 95% identical to that of S. salivarius, another closely related oral bacterium, and S. thermophilus, isolated from dairy products. The predicted amino acid sequences for the structural peptides were 98-100% identical to the corresponding peptides in S. salivarius and S. thermophilus, respectively, whereas those for the accessory proteins were 96-100% identical. The recombinant E. coli strain containing the S. vestibularis ure gene cluster expressed a high level of the functional urease holoenzyme when grown in a medium supplemented with 1 mM nickel chloride. The enzyme was purified over 49-fold by using DEAE-Sepharose FF, Superdex HR 200, and Mono-Q HR 5/5 column chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 2,019 U/mg, and the Michaelis constant ($K_{m}$) of the enzyme was estimated to be 1.4 mM urea. A Superose 6HR gel filtration chromatography study demonstrated that the native molecular weight was about 196 kDa.
A gene coding for the $\beta$-galactosidase (lactase) of Kluyveromyces tragilis UCD 55-55 was isolated by complementation in Escherichia coli YMC9. From the plasmid library made from Sau3A-digested chromosomal DNA, one positive clone was selected. The cloned gene for $\beta$-galactosidase was on 7.3 kilobase pair DNA fragment, and a slightly low level of $\beta$-galactosidase enzyme activity was detecied in E. coli. It was also confirmed that the cloned gene comes from K. tragilis by DNA-DNA hybridization and immunochemical blotting experiments. In order to construct a new yeast strain having the metabolic ability for lactose, the cloned gene for K. tragilis $\beta$-galactosidase was inserted in yeast vector YEp24 and YRp17, and transformed into Saccharomyces cerevisiae YNN27 and Ml-2B. The yeast transformants showed the nearly the same $\beta$-galactosidase productivity as level of K. tragilis when uninduced, but these could not utilize lactose as a sole carbon source, presumably due to the lack of lactose transport system. Nevertheless, a slightly higher ethanol productivity was achieved by these transformants than S. cerevisiae or K. tragilis, in the medium containing glucose and lactose.
Sporulation-specific glucoamylase (SGA) gene was isolated from genomic library of Saccharomyces diastaticus 5114-9A by using glucoamylase non-producing mutant of S. diastaticus as a recipient. When the glucoamylase activities of culture supernatant, periplasmic, and intracellular fraction of cells transformed with hybrid plasmid containing SGA gene were measured, the highest activity was detected in culture supernatant. SGA produced by transformant and extracellular glucoamylase produced by S. diastaticus 5114-9A differed in enzyme characteristics such as optimum temperature, thermostability, and resistance to SDS and urea. But the characteristics of SGA produced by sporulating yeast cells and vegetatively growing transformants were identical.
Bacterial communities at 10 cm, 100 cm, and 200 cm depths in a 100-year-old lead-zinc tailing heap were evaluated by constructing 16S rRNA gene libraries. In total, 98 operational taxonomic units (OTUs) were identified from 193 clones at a 3% sequence difference level. The OTU number and species richness decreased with the depth. Species composition was significantly different between the three libraries. Fifty-seven percent of the examined clones were Acidobacteria and 27% belonged to Proteobacteria. Other sequences included Chloroflexi, Firmicutes, Chlamydiae, Actinobacteria, Gemmatimonadetes, Nitrospira, and three unclassified OTUs. Alphaproteobacteria, Betaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Firmicutes, and Actinobacteria were mainly distributed in the rhizosphere of naturally colonizing plants; however, Deltaproteobacteria, Acidobacteria, and Chloroflexi tended to inhabit the deeper tailings (below the 100 cm-depth).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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