In mammalian ovary, steroidogenic acute regulatory (StAR) protein mediates the true rate-limiting step of transport of cholesterol from outer to inner mitochondrial membrane. Appropriate expression of StAR gene represents an indispensable component of steroidogenesis and its regulation has been found to be species specific. However, limited information is available regarding StAR gene expression during estrous cycle in buffalo ovary. In the present study, expression, localization and hormonal regulation of StAR mRNA were analyzed by semi-quantitative RT-PCR in buffalo ovary and partial cDNA was cloned. Total RNA was isolated from whole follicles of different sizes, granulosa cells from different size follicles and postovulatory structures like corpus luteum and Corpus albicans. Semi-quantitative RT-PCR analyses showed StAR mRNA expression in the postovulatory structure, corpus luteum. No StAR mRNA was detected in total RNA isolated from whole follicles of different size including the preovulatory follicle (>9 mm in diameter). However, granulosa cells isolated from preovulatory follicles showed the moderate expression of StAR mRNA. To assess the hormonal regulation of StAR mRNA, primary culture of buffalo granulosa cells were treated with FSH (100 ng/ml) alone or along with IGF-I (100 ng/ml) for 12 to 18 h. The abundance of StAR mRNA increased in cells treated with FSH alone or FSH with IGF-I. However, effect of FSH with IGF-I on mRNA expression was found highly significant (p<0.01). In conclusion, differential expression of StAR messages was observed during estrous cycle in buffalo ovary. Also, there was a synergistic action of IGF-I on FSH stimulation of StAR gene.
This study was conducted to analyze the expression pattern of inhibitor of DNA binding proteins (Id)1 and Id2 mRNA on folliculogenesis in rat ovary. The ovaries were obtained from 27 days old Sprague-Dawley rat, fixed, dehydrated, and paraffin embedded. For in situ hybridization, anti-sense and sense Idl and Id2 cRNA probes were prepared and applied to the ovarian section. The ovarian sections were coated with NTB-2 emulsion. After that, the slides were developed and counterstained with hematoxylin and eosin staining. In oocytes, the hybridizational signals of Id1 mRNA were strong in primordial and primary follicles, however, there were no signals in that of atretic or preovulatory follicles. The Id2 mRNA signals were also strong in the oocytes of primordial, primary and secondary follicles. Interestingly, the Id2 mRNA was expressed specifically granulosa cells, but nor in oocyte or theca cells in dominant and preovulatory follicles. Based on these results, Id1 and Id2 mRNA was expressed specifically at follicle stages and follicular tissue and might be closely related with follicle development.
Kim, Dong-Hoon;No, Jin-Gu;Park, Jong-Ju;Park, Jin-Ki;Yoo, Jae Gyu
Reproductive and Developmental Biology
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제36권4호
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pp.255-260
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2012
The purpose of this study was to assess follicular viability and competence through in vitro culture of preantral follicles isolated from vitrified mouse whole ovaries. Mouse preantral follicles were enzymatically isolated from vitrified- warmed and fresh ovaries and cultured for 10 days followed by in vitro oocyte maturation. In vitro matured oocytes were fertilized and cultured to the blastocyst stage. Five minutes pre-exposure to vitrification solution of whole ovaries had significantly higher (p<0.05) oocyte survival and maturation rates than between 10 min exposure groups. Oocyte diameter was significantly smaller (p<0.05) in the 5 and 10 min exposure groups ($69.4{\pm}2.8$ and $67.8{\pm}3.1$) when compared to that of control group ($71.7{\pm}2.1$). There was no statistical significant difference in blastocyst development rates between vitrification group (8.6%) and the fresh control group (12.0%). The mean number of cells per blastocyst was significantly lower (p<0.05) in the vitrification group ($41.9{\pm}20.2$) than in the fresh control group ($55.1{\pm}22.5$). The results show that mouse oocytes within preantral follicles isolated from the vitrified whole ovaries can achieve full maturation, normal fertilization and embryo development.
The present study examined the follicular populations prior to and during superovulation and investigated their relationship with superovulatory response in crossbred cattle. Eleven animals were administered i.m. 8 doses of Folltropin of 2.5 ml each (1.75 mg/ml) spread over 4 days beginning on Day 10 of oestrous cycle, and 30 and 20 mg Lutalyse was given alongwith the 5th and 6th injections of Folltropin, respectively, to induce luteolysis. The animals were artificially inseminated 48, 60 and 72 h after the first Lutalyse injection. The number of corpora lutea (CL) was recorded by palpation per rectum and embryos were recovered non-surgically on Day 6 (Day 0 day of superoestrus). The ovarian follicular population was examined by transrectal Ultrasonography 15 h prior to and 52 h after the first FSH injection, and then on the day of superoestrus and the day of flushing. The follicles were classfied on the basis of diameter as small (3-5 mm), medium (6-9 mm) and large (${\geq}10mm$). The total number of follicles increased significantly (p < 0.01) from $2.45{\pm}0.35$, 15 h prior to the first FSH injection to $8.09{\pm}1.12$, 52 h after the first FSH injection and then further to $13.27{\pm}1.89 $ on the day of superoestrus. A positive correlation was observed between the number of small follicles 15 h prior to the first FSH injection (r = 0.60, p < 0.05), the number of large follicles 52 h after the first FSH injection (r=0.59, p < 0.05) and the number of CL. The follicular population prior to and during superovulation was, however, not significantly different between high (> 6 CL) and low responders (${\leq}6CL$). The present study suggests that the follicular populations undergo dynamic changes during superovulation and that follicular populations prior to superovulation have a limited application as an indicator of the superovulatory response.
Proteins and lipids not only provide a source of energy to the cell, but also play vital roles in modifying the physical properties and function of the biological membranes. In the present study, we investigated the biochemical constituents, viz. proteins and lipids, in growing oocytes of goat antral follicles during summer and winter seasons. Goat genitalia in phosphate buffered saline (pH 7.4) were brought to the laboratory within one hour of slaughter under aseptic conditions at $37^{\circ}C$. Oocytes were aspirated from normal small (<3 mm in diameter) and large (>3 mm) follicles and pooled for biochemical estimations. A significant increase in the amount of protein and lipid was observed with the growth of the oocyte. The amount of protein varied non-significantly with the season, while the amount of lipid varied significantly. The amounts of phospholipid, cholesterol, free fatty acid, and triglyceride increased with the growth of the oocyte, but no significant effect of season in these constituents was observed. Lysolecithin, sphingomyelin, and sterols were the polar lipids identified in both oocytes prepared from small follicles (small oocytes) as well as large follicles (large oocytes). In addition, the small oocytes also contained phosphatidyl serine, while large oocytes contained phosphatidyl glycerol phosphate and phosphatidyl inositol. Among non-polar lipids, triglycerides and long chain alcohols appear only in small oocytes and not in large oocytes. Monoglycerides, 1,2-diglycerides, 1,3-diglycerides and o-dialkyl glycerol ethers, fatty acids, fatty acid methyl esters, and wax esters were identified in both small and large oocytes. Information on biochemical composition of growing oocytes is relevant to oocyte and embryo competence, culture and cryopreservation.
This experiment was conducted to determine the extent to which susceptibility to cortisol-induced follicle shutdown is influenced by fleece phentotype. Twenty Finewool (10 sheep low fibre diameter, low coefficient of fibre diameter-LL and 10 low fibre diameter, high coefficient of variation of fibre diameter-LH) and twenty Strongwool (10 low fibre diameter, low coefficient of variation of fibre diameter-HL and 10 high fibre diameter and high coefficient of variation of fibre diameter-HH) sheep of 9 months of age were individually penned in an animal house and were injected intramuscularly with an aqueous suspension of hydrocortisone acetate at a rate of 1.42 mg/kg body weight for a period of two weeks. Fibre diameter was measured from clipped tattooed patch wool samples. Follicle activity was measured by histological changes in skin biopsies taken weekly. Blood samples were collected at two-week intervals and plasma cortisol measured. Increased plasma cortisol concentration significantly (p<0.05) reduced clean wool production and mean fibre diameter dropped to its lowest level four weeks after commencement and two weeks after the cessation of cortisol injection. Elevation of plasma cortisol concentration significantly (p<0.0001) increased the percentage of inactive follicles two weeks after injection started. High fibre diameter groups (Strongwool sheep; i.e. HL+HH) had significantly (p<0.0001) higher percentage of follicle shutdown than low fibre diameter groups (Finewool sheep; i.e. LL+LH). Average percentage of shutdown follicles for Finewool (LL+LH) and Strongwool (HL+HH) Merino sheep was $9.8{\pm}0.9$ and $13.5{\pm}0.9$ respectively. Shutdown of primary follicles was more pronounced in Finewool than Strongwool sheep. There was no significant effect of coefficient of variation of fibre diameter on propensity to follicle shutdown induced by exogenous cortisol. It is concluded that elevation in plasma cortisol concentration is inhibitory to the normal activity of follicles in Strongwool sheep but that variation in fibre diameter has little or no effect.
모낭은 복잡한 상호작용을 통하여 성장 및 주기가 조절되며 다양한 세포들로 구성진 기관이다. 모낭의 세포들이 in vitro에서 배양될 때 그들의 형태나 양상 등의 관찰을 위하여 구성 세포들을 분리 및 배양하였다. 모낭의 bulge를 구성하는 ORS 세포와 색소 합성을 하지 않는 멜라닌 세포를 두 단계의 효소처리 방법을 통하여 분리 및 배양하였고, bulge를 구성하는 세포의 경우에는 microdissection을 통하여 각각의 조직을 분리하고 DP와 DS 세포는 explantation 방법을 통하여 배양 하였으며, matrix 세포는 효소처리를 통하여 분리 및 배양할 수 있었다. 또한 연속 배양을 통하여 그들의 형태적인 특성 및 증식양상을 관찰하였다.
The aim of this study was to evaluate if oocytes, aspirated from postovulatory ovarian follicles of superovulated rabbits 14 h post-hCG administration, could be efficiently used as ooplasm recipients for somatic cell nuclear transfer (SCNT). Within a common SCNT protocol, a comparison between oocytes recovered by direct aspiration (aspirated) from available ovarian follicles and oocytes flushed out from oviducts (flushed) was carried out. The results showed that maturation and enucleation rates of aspirated oocytes were 70.7% and 69.2%, significantly lower than 95.3% (p<0.01) and 83.6% (p<0.05), respectively, from flushed oocytes. However, following enucleation of matured oocytes as ooplasm recipients for SCNT, no difference was recorded in fusion and cleavage rates, as well as blastocyst development from cleaved embryos or hatching of blastocysts between aspirated and flushed groups. Additionally, some matured aspirated and flushed oocytes were also used for immediate parthenogenetic activation and the resulting embryo development was not significantly different. Results from this study show the following: i) the majority of oocytes aspirated from postovulatory ovarian follicles of superovulated rabbits 14 h post-hCG administration are matured and can be used directly as ooplasm recipients for SCNT; ii) the reconstructed embryos derived from these oocytes have similar in vitro developmental ability to those flushed from the oviducts.
Current developments in IVF and animal cloning have resulted in increasing demand for large quantities of oocytes and ovarian follicles at specific stages of development. These medical and scientific needs may be met by developing an optimal culture system for preantral follicles. In this study, we investigated the growth of porcine preantral follicle cultures in different media and in the presence and absence of serum. Follicles were manually dissected from ovaries obtained from prepubertal gilts at a local slaughterhouse, and cultured for 3 days in M199 or NCSU23 medium supplemented with porcine FSH, transferrin, L-ascorbic acid and insulin. Follicle diameters were measured on day 1 and 3 of culture. In Experiment 1, the effect of supplementing culture medium with fetal calf serum (FCS) on porcine preantral follicle growth was examined. In the group of cultures supplemented with FCS, follicle diameter after 3 days of culture, survival rate and antrum formation rate in the FCS group were significantly higher than those of the control group. In Experiment 2, the effects of culture medium (M199 and NCSU23) on follicle growth were compared. Follicle diameters were increased in the M199 group, compared with those in NCSU23 (p<0.05), but we observed no significant differences in survival and antrum formation rates between cultures grown in the two media. In conclusion, supplementation of the culture medium with serum enhances preantral follicle growth and antrum formation, and M199 is superior to NUSU23 for porcine preantral follicle culture in vitro.
The present study was carried out to evaluate the effect of superovulation treatments on ovarian responses, oocyte recovery rates and grades of collected oocytes using an ultrasound-guided transvaginal approach in Korean native cows. Superovulation in cows was induced with two different regimenes: 1) FSH-decreasing dose(n=8): the cows were received twice per day for three days of the total dose of 400 mg of FSH-p, 2) FSH-single dose(n=9): the cows were administrated a single dose of 400 mg of FSH-p in 25% PVP. The Observation of visible follicles and collection of oocytes were performed 12 hours following the last FSH in FSH-decreasing dose group and 48 hours after the FSH-single dose injection. All visible follicles larger than 6 mm were punctured and aspirated with a 6.5 MHz convex-array ultrasound transducer designed for intravaginal use. The mean number of visible follicles(> 6 mm) was significantly(P<0.05) higher in the FSH-decreasing dose treatment (22.811.9) and FSH-single dose treatment (20.612.0) groups than the non-treatment group(7.0$\pm$8). The mean recovery rate of oocytes was not significantly(P<0.05) different between the treatment and control groups, but the mean number of collected oocytes was significantly(P<0.05) higher in the FSH-decreasing dose treatment( 12.611.5) and FSH-single dose treatment (11.813.6) groups than the non-treatment group(3.7$\pm$0.5). In conclusion, the FSH-single dose treatment at superovulation in cows for ultrasound-guided aspiration might increase the number of aspiratable follicles and the recovery rate of follicular oocytes as the FSH-decreasing dose treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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