The ultimate goal of human assisted reproductive technology is to achieve a healthy pregnancy and birth, ideally from the selection and transfer of a single competent embryo. Recently, techniques for efficiently evaluating the state and quality of preimplantation embryos using time-lapse imaging systems have been applied. Artificial intelligence programs based on deep learning technology and big data analysis of time-lapse monitoring system during in vitro culture of preimplantation embryos have also been rapidly developed. In addition, several molecular markers of the secretome have been successfully analyzed in spent embryo culture media, which could easily be obtained during in vitro embryo culture. It is also possible to analyze small amounts of cell-free nucleic acids, mitochondrial nucleic acids, miRNA, and long non-coding RNA derived from embryos using real-time polymerase chain reaction (PCR) or digital PCR, as well as next-generation sequencing. Various efforts are being made to use non-invasive evaluation of embryo quality (NiEEQ) to select the embryo with the best developmental competence. However, each NiEEQ method has some limitations that should be evaluated case by case. Therefore, an integrated analysis strategy fusing several NiEEQ methods should be urgently developed and confirmed by proper clinical trials.
울릉연화바위솔을 분화로 재배하고자 할 때, 적정 광도와 내음성 정도, 적정 분용토, 그리고 적정 시비조건을 알아보기 위해 실험을 수행한 결과는 다음과 같다. 적정 광도를 알아보기 위해 광도를 52, 82, 90, 97% 차광을 하고 울릉바위솔을 재배한 결과, 52% 차광에서 생육이 가장 양호한 것으로 나타나 최적 광도는 차광율 52% 이하로 판단되었다. 또한 82% 차광구부터는 생육이 급격하게 저하되고 엽색도 엷어지는 것으로 나타나 울릉연화바위솔은 내음성이 비교적 약한 종류임을 알 수 있었다. 적정 분용토 선발을 위하여 마사토:유비상토(80:20, v/v), 마사토:유비상토(60:40), 유비상토:강모래(20:80), 마사토:유비상토:강모래(60:20:20)와 같이 4종류의 배합토를 이용하였다. 그 결과 마사토:유비상토:강모래(60:20:20)에서 지상부생체중, 초폭, 런너수 등에서가장 좋은 것으로 나타났다. 특히 지상부 생체중의 경우 다른 용토에서는 약 5-8g 범위였으나, 마사토:유비상토:강모래(60:20:20)에서는 16g으로 2배 정도의 생육량을 보였다. 시비조건은 하이포넥스 액비를 1,000배로 희석하여 1회/주처리했을 때, 생체중 및 초폭, 분지수 등에서 가장 좋게 나타났다. 특히 생체중의 경우 대조구(무처리)가 19g인데 비해 1,000배액 1회/주 처리에서 약 35g으로 84% 정도 생장량이 증가하였다. 대체적으로 액비농도가 높고 처리횟수가 많을수록 생육이 양호하였다.
These studies were preformed to investigate the freezing conditions to achieve good post-thaw viability of spend and the practical methods of artificial insemination frozen canine semen. Semen were collected from nine male dogs which had been proved to be fertile in the past and the semen were treated for freezing procedure. Post-thaw motility and viability of canine sperm were evaluated to investigate individual tolerance of freezing, difference among freezing extenders, dif-ference among freezing equipments and freezing conditions, difference between fast and slow cooling rate, difference according to different glycerol concentration, effect of seeding on post-thaw viability, difference according to cutting part of straw, difference according to thawing temperatures, and dif-ference according to media added to thawed semen. Thawed semen for insemination were added with equal volnme of canine capacitation medium (CCM) and the volume of semen and the number per insemination were adjusted as 2-3 ml and $20-30 {\times}10^7,$ respectively. The semen were inseminated in vagina using balloon catheter and en17ryos were cellected from 9 to 11 days after the second Al to d determine fertilization.
Although trout farming is well established in Korea, very little information is available on the composition of intestinal microflora in rainbow trout (Salmo gairdnerii). In 1994, from October through November, we investigated the composition and succession of intestinal bacteria. As fish grew, total viable counts increased dramatically until 45 days after fertilization when anaerobes started to appear on the media. After this time, they increased steadily. Ten aerobic generic were identified and Gram negative bacteria constituted 85% of total isolates. Among these, Pseudomonas, Eikenella, and Alcaligenes were the three major genera. Six anaerobic genera were isolated and identified. The ratio of anaerobes to aerobes was about 1 : 1 in adult trout and the composition of genera was changed under different conditions.
Bovine oocytes obtained from ovarian(2 to 5mm in diameter) of slaughtered cows were cultured in TCM 199 with 10~20% estrous-cow-serum(ECS) for 24~25hr at 39$^{\circ}C$ in 5% CO2-95% air. After culture, some oocytes were examined their maturation. The remainder were used to assess the fertilizability with frozen-thawed spermatozoa in a medium containing caffeine and heparin, and subsequent development in media with bovien cumulus cells(BCC) or bovine oviduct epithelial cells(BOEC). The results obtained were summarized as follows ; 1. The maturation rate of the oocytes in TCM199 with 15% ECS group(76.5%) was higher than that of 10% ECS(69.2%) or 20% ECS group(64.8%). 2. The proportions of the oocytes penetrated and the pronuclear oocytes in the presence of caffeine and heparin were 72.1%(62/86) and 93.5%(58/62), respectively. The rate of polyspermy in the fertilized oocytes was 8.1%. 3. When 73 oocytes recovered from fertilization drop were cultured in TC-199 medium with 10% fetal calf serum(FCS), 41 oocytes(56%) cleaved to 2-cell and further stages of embryos. Among these only one embryo developed upto morula stage. 4. The rate of the cleaved oocytes was higher in medium with BCC(80%:59/74) than BOEC(76%:58/76). However, the rate of developed morulae and blastocysts was higher in the medium with BOEC(40%;23/58) than with BCC(34;20/59).
This study was conducted to compare the insemination time of bovine oocytes and determine the effects of glucose(1.5 mM) on the development of bovine embryos at early cleavage stage. Oocytes were matured for 24 h, followed by exposure to sperm and cultured in modified Tyrode's media drops or with bovine oviduct epithelial cell monolayer prepared in TCM199(BOECM). Insemination time and culture system were varied in each experiment. In experiment 1, to investigate the developmental capacity of bovine embryos after different time of exposure to sperm, bovine ova and sperm were co-incubated for 18, 30 or 54 h, respectively. The development to blastocysts of 30 and 54 h insemination groups were significantly higher(P<0.05) than 18 h group, and in case of blastocysts of cleaved embryos, 30 h group were significantly higher(P<0.05) than other groups. In experiment 2, we investigated the effect of glucose on early bovine embryos. After 18 h insemination, in vitro fertilized oocytes were separated following 3 groups ; G+0, C+24 and C+48. Oocytes of G+0 group were cultured in glucose added Tyrode's medium after fertilization, oocytes in C+24 and C+48 groups were cultured in glucose free Tyrode's medium after fertilization. After 24 h culture, G+24 group was moved to glucose added medium. All oocytes of 3 groups were moved to BOECM after 48 h culture. The rates of cleavage and development to blastocysts in G+0 group were significantly lower than other groups. In experiment 3, we determined the effects of glucose exposure from 8 to 20 h after insemination on the cleavage and development of oocytes. The oocytes in glucose added group had high capacity of cleavage and further development. This study shows that in bovine oocytes, the optimal exposure to sperm is 30 h and glucose exposure to bovine one-cell embryos is detrimental to their first cleavage and further development in vitro but there has no evidence of detrimental effect of glucose(1.5 mM) exposure to bovine embryos over the two-cell stage in vitro.
Bovine oocytes with compact and complete cumulus cells were cultured for up to 24h in TCM199 buffered with 25mmol/l hepes and supplemented with 10% FBS (fetal bovine serum), 1mg/ml $17{\beta}$-estradiol, 20IU/ml hCG(human chorionic gonadotropin). All of the oocytes were divided into at 6 groups depending upon incubation times (control, 0 hour, 6 hours, 12 hours, 16 hours, 18 hours). To all experimental media, $200{\mu}g/ml$ puromycin was added at different incubation times mentioned above. Following these culture times, in vitro insemination was conducted with frozen-thawed bovine spermatozoa in medium BO (Brackett and Oliphant medium for in vitro insemination) with $10{\mu}g/ml$ BSA(bovine serum albumin) and 10 mg/ml heparin added. After 22h culture, the oocytes were fixed with acetic alcohol solution and stained with orcein acetic solution to evaluate sperm nuclear progression. Addition of puromycin after 0, 6 and 12 h of culture resulted in near of oocyte maturation at the M1 stage. Contrariwise, puromycin addition after 12 h of culture led to restoration of nuclear progression to M2 stage. On the one hand, puromycin affected the synthesis of Cyclin B protein that may be involved in the oocyte maturation and sperm capacitation for in vitro fertilization. The present study suggests the participation of protein synthesis, cyclin B, in the oocyte development from M1 to M2 stages in vitro.
The aims of this study were first to evaluate the effects of different levels (20, 40 and 100%) and sources (follicular size: large, >7 mm; medium, >5-7 mm; small, 3-5 mm) of porcine follicular fluid (pFF) on the in vitro maturation (IVM) of porcine oocytes, and the effects of fertilization treatments and different culture conditions on development of fertilized oocytes were also investigated. No differences in the maturation (63.6-76.6%) and cleavage (24.8-34.3%) rates were observed among the 20,40 and 100% pFF groups (p>0.05). The cleavage rates of oocytes cultured and fertilized in 40% and 100% pFF maturation media were significantly higher than those fertilized in m199-NBCS (51.0-61.2% vs. 12.8-31.8%. p<0.05), regardless of sources of the pFF. When oocytes were fertilized in m199-NBCS followed by culture in rabbit oviducts for 4 days, the cleavage rate in 40% pFF group was better than that in 100% pFF group (46.9% vs. 32.5%, p<0.05). Two oocytes recovered from the oviducts in the 40% pFF group developed to blastocysts after IVC. However, none developed to blastocysts when fertilized in the IVM medium after being transferred to rabbit oviducts. In conclusion, addition of pFF accompanied with gonadotropins (FSH, LH) in IVM medium enhanced maturation and cleavage rates of porcine oocytes. Direct addition of sperm suspension to IVM medium may be an alternative to simplify the fertilization procedures and to reduce the mechanical lesion during manipulation. Furthermore, rabbit oviducts provide a better environment for the in vitro fertilized oocyte developing to the morula and blastocyst stages.
Kim, Sang-Hwan;Song, Young-Seon;Hwang, Sue-Yun;Min, Kwan-Sik;Yoon, Jong-Taek
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제26권3호
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pp.334-342
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2013
Proteases and protease inhibitors play key roles in most physiological processes, including cell migration, cell signaling, and cell surface and tissue remodeling. Among these, the matrix metalloproteinase (MMPs) pathway is one of the most efficient biosynthetic pathways for controlling the activation of enzymes responsible for protein degradation. This also indicates the association of MMPs with the maturation of spermatozoa. In an attempt to investigate the effect of MMP activation and inhibitors in cultures with various hormones during sperm capacitation, we examined and monitored the localization and expression of MMPs (MMP-2 and MMP-9), tissue inhibitors of metalloproteinases (TIMP-2 and TIMP-3), as well as their expression profiles. Matured spermatozoa were collected from cultures with follicle-stimulating hormone (FSH), luteinizing hormone (LH), and Lutalyse at 1 h, 6 h, 18 h, and 24 h. ELISA detected the expression of MMP-2, MMP-9, TIMP-2, and TIMP-3 in all culture media, regardless of medium type (FSH-supplemented fertilization Brackett-Oliphant medium (FFBO), LH-supplemented FBO (LFBO), or Lutalyse-supplemented FBO (LuFBO)). TIMP-2 and TIMP-3 expression patterns decreased in LFBO and LuFBO. MMP-2 and MMP-9 activity in FBO and FFBO progressively increased from 1 h to 24 h but was not detected in LFBO and LuFBO. The localization and expression of TIMP-2 and TIMP-3 in sperm heads was also measured by immunofluorescence analysis. However, MMPs were not detected in the sperm heads. MMP and TIMP expression patterns differed according to the effect of various hormones. These findings suggest that MMPs have a role in sperm viability during capacitation. In conjunction with hormones, MMPs play a role in maintaining capacitation and fertilization by controlling extracellular matrix inhibitors of sperm.
This study was conducted to evaluate the effects of different volume ($100{\mu}l$ vs. 2 ml) of microdrop culture on B6D2F1 mice oogenesis. In the present study, B6D2F1/CrljOri $F_1$ mice were utilized in order to maximize oogenesis. Also we used TCM-199, Dulbecco's medified Eagle's medium (DMEM), embryo culture medium (Fertilization medium, Cleavage medium, Blastocyst medium), G series medium and One step medium. Blastulation rate was not different between groups ($58.4{\pm}2.9%$ vs. $61.2{\pm}4.8%$). Zona hatched rate ($38{\pm}15.4%$ vs. $27{\pm}3.4%$) and attached rate ($55{\pm}13.9%$ vs. $46{\pm}3.9%$) did not differ by the volume of culture media. Total cell numbers ($59.8{\pm}9.7$ vs. $70.3{\pm}8.7$), ICM cell numbers ($15.8{\pm}0.6$ vs. $16.8{\pm}1.5$), TE cell numbers ($44.0{\pm}9.7$ vs. $53.6{\pm}7.3$), % ICM ($26.4{\pm}2.9%$ vs. $23.8{\pm}3.3%$) and ICM:TE ratio ($1:2.8{\pm}0.4$ vs. $1:3.2{\pm}0.6$) were not different between groups (i.e., $100{\mu}l$ vs. 2 ml). These results show that the capacity of the culture medium did not effect the cell numbers of B6D2F1 mice blastocysts. In summary, these results can provide fundamental data to maximize culture condition for in vitro fertilization on B6D2F1 mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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