Ahmad Yar Qamar;Muhammad Ilyas Naveed;Sanan Raza;Xun Fang;Pantu Kumar Roy;Seonggyu Bang;Bereket Molla Tanga;Islam M. Saadeldin;Sanghoon Lee;Jongki Cho
Animal Bioscience
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제36권3호
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pp.385-403
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2023
Male fertility is affected by multiple endogenous stressors, including reactive oxygen species (ROS), which greatly deteriorate the fertility. However, physiological levels of ROS are required by sperm for the proper accomplishment of different cellular functions including proliferation, maturation, capacitation, acrosomal reaction, and fertilization. Excessive ROS production creates an imbalance between ROS production and neutralization resulting in oxidative stress (OS). OS causes male infertility by impairing sperm functions including reduced motility, deoxyribonucleic acid damage, morphological defects, and enhanced apoptosis. Several in-vivo and in-vitro studies have reported improvement in quality-related parameters of sperm following the use of different natural and synthetic antioxidants. In this review, we focus on the causes of OS, ROS production sources, mechanisms responsible for sperm damage, and the role of antioxidants in preserving sperm fertility.
Cryopreservation of porcine ovarian tissue by vitrification method is a promising approach to preserve genetic materials for future use. However, information is not enough and technology still remains in a challenge stage in pig. Therefore, the objective of present study was to determine possibility of vitrification method to cryopreserve porcine ovarian tissue and to confirm an occurrence of cryoinjuries. Briefly, cryoinjuries and apoptosis patterns in vitrified-warmed ovarian tissue were examined by histological evaluation and TUNEL assay respectively. In results, a damaged morphology of oocytes was detected among groups and the rate was significantly (p < 0.05) lower in vitrification group (25.8%) than freezing control group (67.7%), while fresh control group (6.6%) showed significantly (p < 0.05) lower than both groups. In addition, cryoinjury that form a wave pattern of tissues around follicles was found in the frozen control group, but not in the fresh control group as well as in the vitrification group. Apoptotic cells in follicle was observed only in freezing control group while no apoptotic cell was found in both fresh control and vitrification. Similarly, apoptotic patterns of tissues not in follicle were comparable between fresh control and vitrification groups while freezing control group showed increased tendency. Conclusively, it was confirmed that vitrification method has a prevention effect against cryoinjury and this method could be an alternative approach for cryopreservation of genetic material in pigs. Further study is needed to examine the viability of oocytes derived from vitrified-warmed ovarian tissue.
The efficiency of artificial insemination (AI) for horses remains unsatisfactory. It is mainly because each process of AI causes a detrimental effect on semen quality. To sustain quality of semen properly, several factors including libido of stallions and sperm damage during sperm processing and preservation should be considered. Stallions with decent libido produce a high ratio of sperm to seminal plasma in their ejaculates, which is the ideal semen composition for maintaining sperm quality. Thus, to maximize the fertility rate upon AI, stallions should be appropriately managed to enhance their libido. Seminal plasma should have a positive effect on horse fertility in the case of natural breeding, whereas the effects of seminal plasma on both sperm viability and quality in the context of AI remain controversial. Centrifugation of semen is performed during semen processing to remove seminal plasma and to isolate fine quality sperm from semen. However, the centrifugation process can also result in sperm loss and damage. To solve this problem, several different centrifugation techniques such as Cushion Fluid along with dual and single Androcoll-E$^{TM}$ were developed to minimize loss of sperm and to damage at the bottom of the pellet. Most recently, a new technique without centrifugation was developed with the purpose of separating sperm from semen. AI techniques have been advanced to deliver sperm to optimal region of female reproductive tract at perfect timing. Recombinant equine luteinizing hormone (reLH) and low dose insemination techniques have been developed to maximize both fertility rate and the efficiency of AI. Horse breeders should consider that the entire AI procedure should be optimized for each stallion due to variation in individual horses for a uniformed AI protocol.
This study was conducted to determine the relationship between elapsed time after semen preservation on the changes of bacteria and semen quality. Semen was diluted with BTS(Beltsville Thawing Solution) extender without antibiotic for 7 days and sperm parameter and fertility were measured. Sperm motility was measured by CASA and total bacteria number was counted after 22~24 hr incubation from counting agar plate in which sperm dilute to $10{\sim}10^6$ in 0.9% saline solution and inoculate to agar. Acrosomal integrity was measured by Chlortetracycline (CTC) staining. CTC patterns were uniform fluorescence over the whole head (pattern F), characteristic of incapacitated acrosome-intact spermatozoa; fluorescence-free band in the post-acrosomal region (pattern B), characteristic of capacitated acrosome-intact spermatozoa; and almost no fluorescence over the whole head except for a thin band in the equatorial segment (pattern AR), characteristic of acrosome reacted spermatozoa. Total number of bacteria was significantly increased (p<0.0001) 3 days after preservation. Sperm motility, viability, and morphological abnormality on elapsed time after preservation were lower from 5 ($77.24{\pm}6.47$, p<0.001) and 7 days ($77.24{\pm}6.47$, p<0.001) after preservation compared to 1 ($15.71{\pm}7.18$) and 3 days($18.39{\pm}7.22$) after preservation, respectively. Sperm viability was significantly lower ($53.25{\pm}35.03$, p<0.0001) at 7 days after preservation. Morphological abnormality of sperm was lower (p<0.001) at 1 ($15.71{\pm}7.18$) and 3 ($18.39{\pm}7.22$) days compared to 5 ($21.84{\pm}7.91$) and 7 ($22.59{\pm}9.93$) days after preservation. Acrosomal integrity and capacitation rate (pattern F) were significantly lower (p<0.001) from 5 days after preservation. Based on the data we obtained from this study suggested that semen preserved more than 5 days without antibiotic would not recommend use for artificial insemination.
Objective: Using domestic cats as a biomedical research model for fertility preservation, the present study aimed to characterize the influences of ovarian tissue encapsulation in biodegradable hydrogel matrix (fibrinogen/thrombin) on resilience to cryopreservation, and static versus non-static culture systems following ovarian tissue encapsulation and cryopreservation on follicle quality. Methods: In experiment I, ovarian tissues (n=21 animals; 567 ovarian fragments) were assigned to controls or hydrogel encapsulation with 5 or 10 mg/mL fibrinogen (5 or 10 FG). Following cryopreservation (slow freezing or vitrification), follicle viability, morphology, density, and key protein phosphorylation were assessed. In experiment II (based on the findings from experiment I), ovarian tissues (n=10 animals; 270 ovarian fragments) were encapsulated with 10 FG, cryopreserved, and in vitro cultured under static or non-static systems for 7 days followed by similar follicle quality assessments. Results: In experiment I, the combination of 10 FG encapsulation/slow freezing led to greater post-thawed follicle quality than in the control group, as shown by follicle viability (66.9%±2.2% vs. 61.5%±3.1%), normal follicle morphology (62.2% ±2.1% vs. 55.2%±3.5%), and the relative band intensity of vascular endothelial growth factor protein phosphorylation (0.58±0.06 vs. 0.42±0.09). Experiment II demonstrated that hydrogel encapsulation promoted follicle survival and maintenance of follicle development regardless of the culture system when compared to fresh controls. Conclusion: These results provide a better understanding of the role of hydrogel encapsulation and culture systems in ovarian tissue cryopreservation and follicle quality outcomes using an animal model, paving the way for optimized approaches to human fertility preservation.
To establish the recycling system of animal manure(AM) for environmental preservation and improve the utilization of AM, this study was to investigate the effects of the types and nitrogen application rate of AM on herbage productivity, efficiency of nitrogen utilization, nutritive value and an increase of soil fertility and in mixed grassland. This sudy was arranged in split plot design. Main plots were the types of AM(Cattle feedlot manure, CFM; Pig manure fermented with sawdust, PMFS; cattle sluny, CS) and subplots were the application rate of animal manure, such as 100, 200 and 300kgNiha. I. DM yields of herbage were the highest with CS and decreased by application over ZOOkgNiha AM. 2. Crude protein(CP) ontent was the highest with CFM and followed by CS, and the lowest with PMFS, and increased as application rate of AM increased. 3. Nitrogen(N) yields of CS treatment was higher than that of CFM and CS. and increased significantly as application rate of AM increased(P<0.05). 4. The contents of NDF, ADF and TDN was hardly influenced by the types and application rate of AM. 5. Organic matter(0M) content in the soil was the highest with PMFS and followed by CFM and the lowest with CS. OM content increased significantly as application rate of AM increased(P<0.05). 6. Total nitrogen content of the soil was not affected by the type of AM, but increased significantly as application rate of AM increased(P<0.05). (Key words : Animal manure, Grassland, Cattle feedlot manure, Pig manure fermented with sawdust, Cattle slurry, Soil fertility)
Until today, success in germline cells and tissue cryopreservation is limited mainly due to the poor understanding of the complex physiological processes can lead to cell damage during cryopreservation. Germline cells, from both male and female, have unique ability to differentiate into one or more cell lines and thus it becomes a crucial point to store them in subzero temperature with the minimal damage of their functional properties and maximum recovery of unchanged and viable cells when thawed. In the past three decades, a vast research has been performed using various different animal models which in fact have led to development of new methodologies and optimization of older one. However, successful use of animal model has provided the opportunity in research with human germline cells and tissues preservation, but not in all the cases. Therefore, the use of new cryo-protective chemicals and modified protocols have been often found in different groups of researchers based on the types, physical structures, utility and animal species of the specimens to be cryopreserved. This review discusses about the basics of different types of cryopreservation methodologies and commonly used optimized protocols and cryoprotectants for germline cells and tissues preservation.
본 연구는 닭 정액의 동결 보존을 위하여 비 글리세롤성 동결 보호제 중 MA 농도가 정자의 생존율과 융해된 동결 정자를 인공수정을 실시하여 생산된 수정란의 수정율, 부화율을 조사하고자 실시하였다. 동결 보조제로써 MA의 효율성은 7%, 9% 및 11% 범위에서 동결을 실시하였을 때, 정자의 생존율은 $35.16{\pm}6.12%$, $67.83{\pm}15.3%$ 및 $66.2{\pm}16.3%$로 관찰되었으며, 융해된 정자를 인공수정을 실시하여 생산된 수정란의 수정율은 21.5%, 34.7% 및 25%로 관찰되었으며, 수정된 수정란의 부화율은 100%, 89.5% 및 87.5%로 관찰되었다. 대조군으로써 신선 정액은 수정율이 96.0%로 관찰되었고, 부화율은 92.2%로 관찰되었다. 9% MA를 이용한 간이 동결법으로 생산된 동결 정자를 이용하여 3주간 수정란을 검사하였을 때, 수정율은 비록 35.3%로 관찰되었으나, 부화율은 90.3%로 관찰되었다. 이러한 결과에 따르면, 9% 농도로 MA 동결 보호제를 이용할 경우, 동결 및 융해된 정자를 이용하여 생산된 수정란에서 수정율을 감소시킬 수 있음을 보여주고 있으며, 부화율에는 영향을 주지 않음을 추정할 수 있다. 그러므로 수정율과 부화율에 나쁜 영향을 미치지 않고 가금 유전자원의 보존에 중요한 요인이 될 수 있는 적절한 농도의 MA 동결 보호제 범위는 7~9% 농도로 추정된다.
Objective: To define an appropriate vitrification condition of preantral follicle that yields high survival and to evaluate growth and ovulation rate of mouse follicles during in vitro culture after vitrification. Methods: Preantral follicles were isolated mechanically from mouse ovaries that were surgically recovered from mice aged 14 days. Retrieved preantral follicles were placed in EG (Ethylene Glycol) for 2, 5, 10 minutes and transferred to EFS-40 (40% EG, 18% Ficoll-70, 0.5 M sucrose) for 0.5, 1, 2 minutes. And then, preantral follicles were placed onto an EM grid and submerged immediately in liquid nitrogen. Thawing was carried out at room temperature. After defining the most appropriate vitrification condition that yields high survival, in vitro growth and ovulation rate of follicles were evaluated. Results: Appropriate vitrification condition that yield high survival rate ($83.2{\pm}2.1%$) of preantral follicle was EG for 5 minutes and EFS-40 for 0.5 minutes. In vitro survival rate of the vitrified preantral follicles were $85.5{\pm}0.5%$, $67.9{\pm}0.8%$ and $40.2{\pm}0.5%$ on day 2, 6 and 10. And in vitro growth of the vitrified preantral follicles were $107.1{\pm}16.1{\mu}m$, $117.1{\pm}18.4{\mu}m$, $178.4{\pm}45.6{\mu}m$ and $325.4{\pm}54.4{\mu}m$ on day 0, 2, 6 and 10. Although in vitro survival rate and growth of vitrified preantral follicles were lower than that of non-vitrified preantral follicles, the patterns of survival and growth were similar in vitrified and non-vitrified preantral follicles. The ovulation rate of antral follicles that was grown from vitrified preantral follicles was $32.6{\pm}1.2%$. Conclusion: Vitrified preantral follicles could be grown to antral sizes, and mature oocytes that can be used for IVF-ET programs were produced successfully. These data suggest that cryopreservation of preantral follicle by vitrification can be used for the preservation of the fertility.
Hue, Hye Jeong;Choi, Hyun Ji;Park, Jee Yoon;Suh, Dong Hoon;Lee, Jung Ryeol;Jee, Byung Chul;Kim, Seul Ki
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제48권2호
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pp.184-187
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2021
Radical trachelectomy is a fertility-preserving alternative to radical hysterectomy in carefully selected young women with early-stage cervical cancer. However, in cases with subsequent severe cervical stenosis, assisted reproductive techniques can be difficult. This is a case report of a 34-year-old patient who underwent robot-assisted radical trachelectomy and cerclage for early-stage (IB2) adenosquamous carcinoma. Three months after surgery, the patient underwent ovarian stimulation using a gonadotropin-releasing hormone antagonist protocol. As it was impossible to perform transcervical embryo transfer due to the almost complete absence of the cervical opening, transmyometrial embryo transfer under ultrasound guidance was performed. This resulted in a successful singleton pregnancy. This is the first case of successful pregnancy conceived by in vitro fertilization with transmyometrial embryo transfer in a patient who had previously undergone robot-assisted radical trachelectomy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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