Pfu DNA polymerase from Pyrococcus furiosus was expressed in the E. coli periplasm, and the fully active polymerase was partially purified by applying osmotic shock, ammonium sulfate precipitation, and heat treatment. This method represents a new way of expressing and purifying functional Pfu DNA polymerase without the use of chromatography.
에놀라아제는 대부분의 생명체에서 에너지 대사에 중추적인 기능을 하는 해당과정에 관여하는 효소이며, Escherichia coli에서 RNA 가공 및 분해에 중심적인 역할을 하는 RNase E와 PNPase, Helicase와 함께 RNA 분해 복합체를 형성한다고 알려져 있다. E. coli에서 에놀라아제의 mRNA는 RNase E의 동족체인 RNase G에 의해 잘려서 분해되어 조절 된다고 알려져있다. 산소가 없는 환경에서 과발현되는 것으로 알려진 에놀라아제의 발현에 있어서 RNase G의 역할을 알아보기 위하여, 연구를 수행한 결과, 미세호기성 조건에서는 에놀라아제와 RNase G의 발현양 사이에는 상관관계가 밝혀내었다. 이러한 연구결과는 미세호기성 조건에서는 RNase G 이외에 에놀라아제의 조절에 기여하는 다른 기작이 있을 수 있다는 것을 시사한다.
In order to overexpress bacteriophage PRD1 DNA polymerase in E. coli cells, the 2 kb HaeII fragment was isolated from phage genomic DNA. This fragment was then cloned into pEMBL/sup ex/ 3-expression vector. A specific 57bp deletion was performed by using uracil containing ss DNA and oligonucleotide spanning each region to remove an unwanted non-coding region. After this deletion, the PRD1 DNA polymerase gene is totally under the control of the vector promoter and SD sequence. Upon heat induction, a protein with an apparent size of 68 kdal was overexpressed as an active PRD1 DNA polymerase. The expression of PRD1 DNA polymerase was about 1% of total E. coli protein.
Park, Seo-Hyoung;Kim, Tae-Hwan;Cho, Chul-Koo;Lee, Yeon-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제11권3호
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pp.524-528
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2001
The measurement of radiation response using simple and informative techniques would be of great value in studying the genetic risk following occupational, therapeutic, or accidental exposure to radiation. When patients receive radiation therapy, many suffer from side effects. Since each patient receives a different dose due to different physical conditions, it is important to measure the exact dose of radiation received by each patient to lessen the side effects. Even though several biological dosimetric systems have already been developed, there is no ideal system that can satisfy all the criteria for an idean dosimetric system, especially for low-dose radiation as used in radiation therapy. In this study, an SOS Chromotest of E. coli PQ37 was evaluated as a novel dosimeter for low-dose gamma-rays. E. coli PQ37 was originally developed to screen chemical mutagens using the SOS Chromotest-a colorimtric assay, based on the induction of ${\beta}$-galactosidase ue to DNA damage. The survival fraction of E. coli PQ37 decreased dose-dependently with an increasing dose of cobalt-60 gamma-rays. Also, a good linear correlation was found between the biological damage revealed by the ${\beta}$-galactosidase expression and the doses of gamma-rays. The expression of ${\beta}$-galactosidase activity that responded to low-dose radiation under 1 Gy was $Y=0.404+(0.089{\pm}0.3)D+(-0.018{\pm}0.16)D^2$ (Y, absorbance at 420 nm; D, Dose of irradiation) as calculated using Graph Pad In Plot and Excel. When a rabbit was fed with capsules containing an agar block embdded with E. coli PQ37 showed a linear response to the radiation doses. Accordingly, the results confirm that E. coli PQ37 can be used as a sensitive biological dosimeter fro cobalt-60 gamma-rays. To the best of our knowledge, this is the first time that a bacterium has been used as a biological dosimeter, especially for low-dose radiation.
When ptsG, a glucose-specific phosphotransferase system (PTS) component, is deleted in Escherichia coli, growth can be severely poor because of the lack of efficient glucose transport. We discovered a new PTS transport system that could transport glucose through the growth-coupled experimental evolution of ptsG-deficient E. coli C strain under anaerobic conditions. Genome sequencing revealed mutations in agaR, which encodes a repressor of N-acetylgalactosamine (Aga) PTS expression in evolved progeny strains. RT-qPCR analysis showed that the expression of Aga PTS gene increased because of the loss-of-function of agaR. We confirmed the efficient Aga PTS-mediated glucose uptake by genetic complementation and anaerobic fermentation. We discussed the discovery of new glucose transporter in terms of different genetic backgrounds of E. coli strains, and the relationship between the pattern of mixed-acids fermentation and glucose transport rate.
Effects of chaperones on mRNA stability and gene expression were studied in order to develop an efficient Escherichia coli expression system that can maximize gene expression. The stability of mRNA was modulated by introducing various secondary structures at the 5'-end of mRNA. Four vector systems providing different 5'-end structures were constructed, and genes encoding GFPuv and endoxylanase were cloned into the four vector systems. Primer extension assay revealed different mRNA half-lives depending on the 5'-end secondary structures of mRNA. In addition to the stem-loop structure at the 5'-end of mRNA, coexpression of dnaK-dnaJ-grpE or groEL-groES, representative heat-shock genes in E. coli, increased the mRNA stability and the level of gene expression further, even though the degree of stabilization was varied. Our work suggests that some of the heat-shock proteins can function as mRNA stabilizers as well s protein chaperones.
글루타치온 생산증대를 도모하기 위하여 글루타치온 합성에 관여하는 효소들인 GSH-I 및 GSH-II 유전자들 pBR322 벡터에 클로닝하였다. gshI 유전자를 클로닝하기 위하여 GSH-I 효소활성이 결여된 GS903 균주를 분리하였다. E. coli K-12 염색체 DNA로부터 분리된 3.6Kb PstI DNA 절편을 pBR322 벡터에 클로닝하였다. gshII 유전자는 2.2Kb PstI-BamHI DNA 절편내에 존재하며 이 절편을 pUC13 벡터에 클로닝하였다. 플라스미드의 copy number와 gsh 유전자들을 포함하고 있는 삽입 DNA의 크기의 차이에 의한 gsh 유전자들의 발현 정도를 조사하기 위하여 pGH1090, pGH101, pGH200, pGH201, pLF4, pLF6 그리고 pGH300같은 여러 플라스미드를 사용함으로써 gshI 유전자의 발현이 의해 2배이상 증가하였다. 그러나 벡터 플라스미드내에 존재하는 gsh 유전자들을 포함하는 삽입 DNA의 크기의 차이에 의해서는 gsh 유전자들의 발현이 영향을 받지 않았다.
The optimization of the production of a fusion protein containing the antigenic domain 1 (AD-1) is of a great importance, considering its use in diagnostic tests. The fusion protein is produced by the fermentation of a recombinant strain of Escherichia coli containing the plasmid Mbg58, which expresses the AD-1 (aa 484-650) of human cytomegalovirus glycoprotein B as a fusion protein together with aa 1-375 of ${\beta}-galactosidase$. An important characteristic of promoters (lac and derivatives) used in recombinant protein production in E. coli is their inducibility. Induction by IPTG is widely used for basic research; however, its use in large-scale production is undesirable because of its high cost and toxicity. In this work, studies using different inducers and carbon sources for the production of a fusion protein containing the AD-l were performed. The results showed that lactose could be used as an inducer in the fermentation process for the production of this protein, and that expression levels could exceed those achieved with IPTG. The use of lactose for protein expression in E. coli should be extremely useful for the inexpensive, large-scale production of heterologous proteins in E. coli. Addition of sucrose to the fermentation medium improved the yield of recombinant protein, whereas addition of fructose or trehalose decreased the yield.
Kim, Yeon-Seok;Min, Ji-Ho;Hong, Han-Na;Park, Ji-Hyun;Park, Kyeong-Seo;Gu, Man-Bock
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권8호
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pp.1390-1393
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2007
In this study, three of the representative EDCs, $17{\beta}$-estradiol, bisphenol A, and styrene, were employed to find their mode of toxic actions in E. coli. To accomplish this, four different stress response genes, recA, katG, fabA, and grpE genes, were used as a representative for DNA, oxidative, membrane, or protein damage, respectively. The expression levels of these four genes were quantified using a real-time RT-PCR after challenge with three different EDCs individually. Bisphenol A and styrene caused high-level expression of recA and katG genes, respectively, whereas $17{\beta}$-estradiol made no significant changes in expression of any of those genes. These results lead to the classification of the mode of toxic actions of EDCs on E. coli.
Macrophages are the cells of the first-line defense system, which protect the body from foreign invaders such as bacteria. However, Gram-negative bacteria have always been the major challenge for macrophages due to the presence of lipopolysaccharides on their outer cell membrane. In the present study, we evaluated the effect of phloretin, a flavonoid commonly found in apple, on the protection of macrophages from Escherichia coli infection. RAW 264.7 cells infected with standard E. coli, or virulent E. coli K1 strain were treated with phloretin in a dose-dependent manner to examine its efficacy in protection of macrophages. Our results revealed that phloretin treatment reduced the production of nitric oxide (NO) and generation of reactive oxygen species along with reducing the secretion of proinflammatory cytokines induced by the E. coli and E. coli K1 strains in a concentration-dependent manner. Additionally, treatment of phloretin downregulated the expression of E. coli-induced major inflammatory markers i.e. cyclooxygenase-2 (COX-2) and hemeoxygenase-1 (HO-1), in a concentration dependent manner. Moreover, the TLR4-mediated NF-κB pathway was activated in E. coli-infected macrophages but was potentially downregulated by phloretin at the transcriptional and translational levels. Collectively, our data suggest that phloretin treatment protects macrophages from infection of virulent E. coli K1 strain by downregulating the TLR4-mediated signaling pathway and inhibiting NO and cytokine production, eventually protecting macrophages from E. coli-induced inflammation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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