Direct cell-cell communication via the transfer of small molecules between neighboring cells in tissue is accomplished by gap junctions composed of various connexins (Cxs). Proper postnatal development of the epididymis is important for acquisition of male reproduction. The epididymal epithelium is composed of several cell types, and some of these cells are connected by gap junctions. The present study was conducted to determine the presence of Cx transcripts in the corpus and cauda epididymis. In addition, transcriptional changes of Cxs expressed during different postnatal stages were examined by real-time PCR analysis. In both epididymal regions, the same nine Cx transcripts of thirteen Cxs tested were detected. In the corpus epididymis, the highest levels of Cxs31.1 and 37 transcripts were observed at 45 days of age, and amounts of Cxs26, 30.3, and 32 transcripts increased with age and subsequently decreased in the elderly. Expression of Cx31 was greatly increased in the adult and elder stages, while Cxs40, 43, and 45 were abundant in the early postnatal stages. In the cauda epididymis, expression of Cxs26, 30.3, 31.1, 37, and 40 reached the highest levels at 5 months of age. The levels of Cxs31 and 32 mRNAs fluctuated throughout the postnatal period. The amounts of Cxs43 and 45 transcripts were more abundant during the late neonatal and prepubertal ages than later ages. These findings suggest that regional specification of the epididymis is partly regulated by differential expression of Cx genes during the postnatal developmental period.
CD30 is a member of tumor necrosis factor receptor (TNFR) superfamily and has pleiotropic functions including cell activation, proliferation, differentiation, and death, depending on cell types and stage of differentiation. Although CD30 expression has been described mainly in hematopoietic tissues, several types of nonhematopoietic tumors including embryonic carcinoma and germ-cell tumors express CD30. We examined CD30 distribution in the testis and epididymis from wild type and CD30-deficient mice. In the testis, spermatogonia, spermatocytes and Sertoli cells expressed CD30, but not in spermatids. Spermatogonia and spermatocytes near the basement membrane strongly reacted to anti-CD30. In the epididymis, CD30 expression was exclusively observed in luminal epithelia and some interstitial cells. Taken together, these results show a spatio-temporal regulation of CD30 expression in mouse testis and epididymis and suggest a possible role of CD30 in spermatogonia and spermatocytes.
Londonkar, Ramesh L.;Sharangouda, Sharangouda;Patil, Saraswati B.
Advances in Traditional Medicine
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제8권1호
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pp.67-72
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2008
Adult male albino rats were treated with 0.5 mg and 0.75 mg morphine/100 g body weight intraperitoneally for 30 days. All the animals were autopsied on $31^{st}$ day. Epididymis and vas deferens were dissected out, weighed and processed for histological and biochemical studies. Morphine has caused a reduction in the weight of epididymis and vas deferens in both the doses of drug treated groups. The total cholesterol content is increased while protein, DNA and RNA contents and epididymal sperm counts are decreased. The acid phosphatase content is decreased 10.12 $\pm$ 0.11 in caput, 9.26 $\pm$ 0.30 in cauda of epididymis and in vas deferens 8.14 $\pm$ 0.15 in 0.5 mg treated groups and in 0.75 mg treated rats shows 9.52 $\pm$ 0.27 in caput, 9.14 $\pm$ 0.18 in cauda of epididymis and in vas deferens 7.84 $\pm$ 0.11is decreased, whereas alkaline phosphatase is increased. The surface epithelial cell height of these ducts is reduced and secretory activity is inhibited with the disruption of epithelial cell projections. The gravimetric and histometric changes of epididymis and vas deferens may be due to non-availability of androgens in morphine treated rats.
Communication among epididymal epithelial cells creates the best luminal condition where spermatozoa mature, transport and are stored. Vacuolar ATPase (V-ATPase) and cytokeratin 5 (KRT5) have been used as signal indicators for clear and basal cells of the epididymal epithelium, respectively, in mice, rats, bats, and pigs; however, these two markers have not yet been described in the epididymis of bulls. Here, we examined the presence and distribution of the B1 subunit of V-ATPase (B1-VATPase) and KRT5 in the distinct regions of adult bovine epididymides, specifically, the caput, corpus, and cauda. Immunofluorescence staining and confocal microscopy showed that narrow shaped-clear cells were placed in the caput and corpus regions of the bovine epididymis; however, they were absent in the cauda epididymis. In addition, B1-VATPase was highly expressed in the cauda spermatozoa; however, it was rarely detected in the caput spermatozoa. On the other hand, KRT5-positive cells, basal cells, were maintained beneath the basal lamina and they had the traditional form with a dome-shaped morphology from the caput to cauda region of the bovine epididymis. The co-expression of B1-VATPase and KRT5 was confined to basal cells placed in the basal region of the epithelium. In summary, 1) clear cells were present with region-specific localization, 2) B1-VATPase was present in the corpus and cauda spermatozoa but absent in the caput, 3) co-expressed cells with B1-VATPase and KRT5 were present in the adult bovine epididymis, and 4) B1-VATPase was not a specific marker for clear cells in the bovine epididymis. Therefore, the perfect epididymal luminal condition created by the specific expression and localization patterns of B1-VATPase might be necessary to obtain fertilizing capacity of spermatozoa in the bovine epididymis.
Objective: We examined the localization and expression of H+ pumping vacuolar ATPase (V-ATPase) and cytokeratin 5 (KRT5) in the epididymis of pigs, expressed in clear and basal cells, respectively, during postnatal development. Methods: Epididymides were obtained from pigs at 1, 7, 21, 60, 120, and 180 days of age; we observed the localization and expression patterns of V-ATPase and KRT5 in the different regions of these organs, namely, the caput, corpus, and cauda. The differentiation of epididymal epithelial cells was determined by immunofluorescence labeling using cell-type-specific markers and observed using confocal microscopy. Results: At postnatal day 5 (PND5), the localization of clear cells commenced migration from the cauda toward the caput. Although at PND120, goblet-shaped clear cells were detected along the entire length of the epididymis, those labeled for V-ATPase had disappeared from the corpus to cauda and were maintained only in the caput epididymis in adult pigs. In contrast, whereas basal cells labeled for KRT5 were only present in the vas deferens at birth, they were detected in all regions of the epididymis at PND60. These cells were localized at the base of the epithelium; however, no basal cells characterized by luminally extending cell projections were observed in any of the adult epididymides examined. Conclusion: The differentiation of clear and basal cells progressively initiates in a retrograde manner from the cauda to the caput epididymis. The cell-type-specific distribution and localization of the epithelial cells play important roles in establishing a unique luminal environment for sperm maturation and storage in the pig epididymis.
A proper development of the epididymis during the early postnatal development is required for successful fertility in the adult male. Direct cell-cell communication via connexin (Cx) molecules is a common way of cellular interactions to achieve normal development of a given tissue consisting of different cell types. The present research was attempted to determine the effect of exogenous exposure to estrogenic agonist or antiandrogen at the weaning age on expression of Cx isoforms in the adult corpus epididymis. Male rats were subcutaneously administrated with estradiol benzoate (EB) or flutamide (Flu) at the weaning age. The tissue was collected at 4 months of age. Expressional levels of Cx isoforms were determined by a quantitative real-time PCR. Statistical comparison showed significant increases of Cxs31, 32, 37, 40, and 43 transcript amounts by a treatment of $0.015{\mu}g$ of EB /kg body weight (BW). A treatment of $1.5{\mu}g$ of EB /kg BW caused a significant decrease of Cx43 gene expression but increases of Cxs26, 31, 32, 37, and 40 transcript levels. Exposure to $500{\mu}g$ of Flu/kg BW induced an increase of Cx37 expression but significant decreases of Cxs43 and 45 mRNA levels. Expression of Cx37 was increased by a treatment of 5 mg of Flu/kg BW, while transcript levels of Cxs26, 30.3, 31, 31.1, 32, and 43 were significantly decreased by same treatment. These results demonstrate that exposure to steroidal compounds at the early developmental age alters expression of Cx isoforms in the adult corpus epididymis.
Gangliosides are ubiquitous membrane components in mammalian cells and are suggested to play important roles in various functions such as cell-cell interaction, adhesion, cell differentiation, growth control and signaling. Among all ganglio-series gangliosides, GM3 has the simplest carbohydrate structure, and has been shown as a major gangliosides, in male reproductive system. To study GM3 distribution in the seminiferous tubule and epididymis, frozen sections were stained with specific monoclonal antibody (MAb) against ganglioside GM3. In the seminiferous tubule of testis, pachytene spermatocytes and spermmatids expressed ganglioside GM3, but not in spermatogonia and sertoli cells. Spermatogonia and sertoli cells near the basement membrane were negatively reacted to anti-GM3. In the epididymis, GM3 was expressed only in some interstitial cells. Taken togethers, these results suggest that the expression of ganglioside GM3 in rat seminiferous tubule and epididymis is spatio-temporally regu lated during spermatogenesis.
The objective of this study was to optimize the selection of sperm sources, optimal culture systems and vitrification method depends on sperm sources. The oocytes were inseminated with either KPN 105, 114, 191, SNU 101, 102, 103 or epididymis and then embryos inseminated were cultured in oviductal cell co-culture or HECM-6 as defined me dium. The blastocysts produced were pooled according to sperm sources as KPN, SNU or epididymis and then vitrified by OPP vitrification method. The results obtained were as follows: 1. The cleavage(86.2 or 84.7%) and development rates to blastocyst (30.6 or 32.0%) were not significantly different between oviductal cell co-culture or HECM-6 culture systems(P<0.05). 2. To determine the optimal sperm sources for using IVF in this system, cleavage rates in KPN 191 and SNU 101 (74.2, 55.8%) were significantly lower rather than those in KPN 105, 114, SNU 102, 103 or epididymis (86.7, 85.1, 89.8, 85.5 or 81.2%), but development rates to blastocyst in KPN 114, SNU 103 or epididymis sperm (30.0, 33.0 or 28.6%) were significantly higher rater than those in KPN 105, 191, SNU 101, 102(21.4, 15.4, 14.9 or 25.4%), respectively (P<0.05). 3. The blastocysts produced were pooled according to sperm sources as KPN, SNU or epididymis and then vitrified by OPP vitrification method. The survival rates were not significantly different among sperm sources (89.6%: 43/48 ; 90.1%: 46/51 ; 83.3% : 20/24). These results obtained indicate that the defined medium, HECM-6, could be use to produce of IVP bovine embryos. Since the frozen semen must be required to maintain of unvariation data in IVP embryo production system, KPN 114 and SNU 103 produced in our laboratory were useful for this purpose. The blastocysts produced by different sperm sources as KPN, SNU or epididymis were vitrified by OPP vitrification method and survived very high rates. The OPP vitrification method could be susceptibility to use of IVP bovine blastocyst embryos.
Ahmed, Mukhtar;Ahamed, R Nazeer;Aladakatti, RH;Deepthi, KR
Advances in Traditional Medicine
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제8권2호
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pp.111-124
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2008
In the present study, an attempt has been made to assess whether the effect of benzene extract of Ocimum sanctum leaves on the ultrastructural changes in the epithelial cells of the cauda epididymis, its subsequent recovery in the seminiferous epithelium and fertility of male albino rats. Wistar strain male albino rats were orally administered benzene extract of 250 mg/kg body weight of O. sanctum leaves followed by subsequent recovery maintaining suitable controls for 48 days. Results indicate decrease in the weights of testis, epididymis and seminal vesicles. Other accessory organs were not affected. Total count, cell and nuclei diameters of germ cells and Leydig cells were reduced. Cauda epididymis exhibited significant reduction in epithelial height and nuclei diameter of epithelial cells. Cells showed vacuolization with exhibit of signs of degeneration. Ultra study revealed that, in general, the cauda epididymis was affected and in particular, the principal, clear and basal cells were highly disturbed. Further, there was decrease in the size of lipid droplets, mitochondria, Golgi complex, endoplasmic reticulum and accumulation of lysosomal bodies. Fertility performance test showed no implantation in female rats mated with O. sanctum treated rats. Moreover, their recovery after withdrawal of treatment was observed suggesting that the effect of the treatment is transient and reversible. A recovery period resulted in normal spermatogenesis and fertility, suggesting reversible antispermatogenic and antifertility effects of the plant.
Cell-cell direct communication through channel-forming molecules, connexin (Cx), is essential for a tissue to exchange signaling molecules between neighboring cells and establish unique functional characteristics during postnatal development. The corpus epididymis is a well-known androgen-responsive tissue and involves in proper sperm maturation. In the present research, it was attempted to determine if expression of Cx isoforms in the corpus epididymis in the adult is modulated by exposure to estrogenic or anti-androgenic compound during the early postnatal period. The neonatal male rats at 7 days of age were subcutaneously injected by estradiol benzoate (EB) at low-dose ($0.015{\mu}g/kg$ body weight) or high-dose ($1.5{\mu}g/kg$ body weight) or flutamide (Flu) at low-dose ($500{\mu}g/kg$ body weight) or high-dose (50 mg/kg body weight). The corpus epididymis collected at 4 months of age was subjected to evaluate expressional changes of Cx isoforms by quantitative real-time PCR. Treatment of low-dose EB resulted in increases of Cx32, Cx37, and Cx45 transcript levels, while exposure to high-dose EB decreased expression of Cx26, Cx30.3, Cx31, Cx31.1, Cx32, Cx40, Cx43, and Cx45. Treatments of Flu caused significant decreases of expression of all examined Cx isoforms, except Cx37 and Cx43 shown no expressional change with high-dose Flu treatment. These findings imply that expression of most Cx isoforms present in the corpus epididymis would be transcriptionally regulated by actions of androgen and/or estrogen during postnatal period.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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