Kim, Gye-Won;Hong, Sung-Youl;Shin, Soon-Cheon;Lee, Sung-Hee;Kim, Won-Bae
Archives of Pharmacal Research
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제10권1호
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pp.18-24
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1987
Mouse monocolonal antibodies to Hepatitis B surface antien (HBsAg) were prepared and their functional capabilities tested by the method of solid phase enzyme linked immuno sorbent assay (ELISA). HBsAg binding studies inicated that one monoclonal antibody 6E-1-1 bound more HBsAg at a faster rate than the other monoclonal antibodies. Also, for the binding inhibition studies with the selected monoclonal antibody 6E-1-1, one monoclonal antibody 8D-3-6 didn't exhibit binding inhibition for HBsAg. Then, a simultaneous ELISA method was developed for the immunodiagnosis of HBsAg. Different combinations of two monoclonal antibodies as solid phase and horseradish peroxidase (HRPO) labeled phase were studied. The combination of monoclonal antibody of higher affinity constant (6E-1-1) immobilized in a solid phase and monoclonal antibody of lower affinity constant (8D-3-6) as a HRPO laeled phase was more sensitive when two monoclonal antibodies of different affinity constants for HBsAg were prepared.
To construct a competitive ELISA standard curve for the detection of glucose-6-phosphate debydrogenase (G6PD), we used highly purified native G6PD (nG6PD) as both immobilized and soluble antigens and anti-G6PD serum raised against nG6PD as antibody. The polystyrene cuvettes coated with nG6PD were challenged with a mixture of a limiting amount of anti-G6PD serum and various doses of nG6PD as competitors followed by incubation with alkaline phosphatase-anti-IgG conjugate. The competitive ELISA did not exhibit the typical sigmoidal dose-response curve characteristic of competition immunoassays under the optimal concentrations of antigen and antibody. The soluble nG6PD used as competitor failed to effectively inhibit the binding of antibodies to the immobilized nG6PD. The addition of NADP, a cofactor of G6PD enzyme, to coating buffer used for immobilizing nG6PD to the cuvettes and PBS-Tween-BSA buffer for diluting competitors did not improve the inhibition of antibody binding to immobilized nG6PD by soluble n/G6PD. The addition of BSA to coating buffer did not increase inhibition, either. Surprisingly, when partially active G6PD (paG6PD), obtained by repeated freeze-thawing, was used as competitor, the antibody binding to either immobilized nG6PD or immobilized paG6PD was inhibited 49-58%. We conclude that an effective competitive ELISA system with nG6PD enzyme and anti-G6PD serum for the detection of G6PD may not be established due to the poor inhibition of antibody binding to immobilized nG6PD by soluble nG6PD under the present assay conditions and that the inhibition may be improved by using an inactivated enzyme as competitor regardless of the type of immobilized antigen used. These results imply that the immobilized nG6PD may undergo denaturation upon binding to the polystyrene cuvettes and that our anti-G6PD serum may recognize denatured enzyme better than active enzyme.
Adenosine deaminase (ADA) has been utilized as the label in devising a potentiometric homogeneous assay for riboflavin and riboflavin binding protein (RBP). The proposed homogeneous assay method employs an ADA-biotin conjugate as the signal generator and an avidin-riboflavin conjugate as the signal modulator in the solution phase. The catalytic activity of the ADA-biotin conjugate is inhibited in the presence of an excess amount of the avidin-riboflavin conjugate, and the observed inhibition is reversed in an amount proportional to the concentration of RBP added. When the analyte riboflavin is added to this mixture of ADA-biotin, avidin-riboflavin and RBP, the activity of the enzyme conjugate is re-inhibited in an amount proportional to the concentration of riboflavin. Since the enzyme label used in this system is ADA, an ammonia-producing enzyme, a potentiometric rather than photometric detection scheme is used to monitor the enzymatic activity in the assay.
A simple method for studying the lectin-like interactions between Helicobacter pylori and cultured human epithelial cell lines was developed using an enzyme-linked, biotin-streptavidin bacterial-adhesion assay. The present study suggests that this method is suitable for evaluating the participation of lectin interactions in the adhesion of H. pylori to cultured HeLa S3 and Kato III cells, both fixed and glycosidase-treated cells, as well as assessing glycoconjugated binding inhibition studies. The time-course and dose-dependent kinetics of the biotin-labeled H. pylori adhesion th the formaldehyde-fixed Hela S3 and Kato III cell lines exhibited saturation. In addition, the binding of the biotin-labeled H. pylori to the formaldehyde-fixed cultured cells was partially blocked by pre-incubation with glycoconjugates and polyclonal antibodies against a heparan sulfate binding protein from H. pylori.
Mistletoe lectin I(ML I)에 대한 간단하고 빠른 용액상 효소결합 분석법을 렉틴의 당 특이성을 이용하여 개발하였다. ML I에 특이성을 가지고 있는 D-galactose를 사용하였으며, 용액상 분석법의 효소로는 malate dehydrogenase(MDH)를 사용하였다. 분석신호물질로 사용되는 MDH-galactose 접합체는 isothiocyanate 방법을 통해 합성하였으며, 이 접합제는 thiourea 결합을 하고 있다. ML I의 존재하에, ML I은 D-galactole와의 특이 인식결합을 통해 MDH-galartose 접합체의 활동도를 억제한다. 그러므로, 존재하는 ML I의 농도는 MDH-galactose 접합제의 촉매활동도의 억제도에 비례하게 된다. 따라서, 본 용액상 효소결합 분석법을 통하여 ${\mu}g/mL$ 수준의 ML I의 측정이 분석 시간 10분 이내에 가능하였다.
생촉매인 효소의 기질선택성은 다양한 분야에서 유용하게 이용되고 있다. 그 중에서도 효소결합면역흡착검사(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)는 항원항체의 결합을 항체와 공유결합된 효소의 반응으로 나타냄으로써 다양한 항원들의 진단을 가능케 했다. 하지만 기존의 효소결합면역흡착검사는 하나의 항체당 하나의 효소가 결합된 형태이기 때문에 감도(sensitivity)의 증가 폭에 그 한계가 있으며, 이를 극복하기 위한 방안으로 하나의 항체당 결합된 효소의 수를 증가시킴으로써 혁신적인 감도의 향상을 가져오는 연구가 진행되었다. 최근 나노바이오촉매(nanobiocatalyst, NBC) 접근방식을 이용한 효소활성의 안정화는 효소결합면역흡착검사의 감도 향상뿐만 아니라 그 성능의 안정성을 확보할 수 있는 연구결과로 이어지고 있다. 본 총설에서는 일반적인 효소결합면역흡착검사의 기본적인 원리와 감도향상을 위한 연구, 그리고 성능안정성(performance stability)을 향상시키기 위한 나노바이오촉매-결합면역흡착검사(Nanobiocatalyst-Linked Immunosorbent Assay, NBC-LISA)에 대하여 살펴보고자 한다.
The quality of an intravenous immunoglobulin preparation (IVIG) is reflected by the degree of nonspecific activation of complements, the so-called anticomplementary activity (ACA). ACA of aggregates in IVIG was investigated using method by the European Pharmacopoeia and Clq-coated microtiter enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Both the EP method and the ELISA method showed a dose response curve with the amount of complements bound increasing with the percentage content of aggregates in immunoglobulin standard. The correlation between the two tests was good (r=0.96, r=0.99). However, the correlation was not found when the ACA (EP method) of IVIG product was compared with its aggregate percentage. These results emphasize that the method of aggregate formation affects ACA and that estimation of the percentage distribution of aggregates by HPLC may not reflect ACA. In analysing WIG product for Clq binding activity test with the ELISA, the result by using Protein A-HRP correlated with aggregate percentage (r=0.84). But the correlation decreased (r=0.48) when the result used Protein A-AP(having poorer sensitivity than HRP) was compared with aggregate percentage. As a result, some variation between the two methods, due to differences in assay principles, is to be expected. However, ELISA technique has the advantage in that it is easier to perform, more precise and less subject to reagent variability, and is the more suitable screening method than HPLC analysis.
The viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) has an extensive host range, and infects farmed and wild fish inhabiting both freshwater and marine ecosystems. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is highly useful in diagnosing viral hemorrhagic septicemia. However, ELISA shows high, non-specific background reaction with fish antibodies. In this study, we optimized the antigen and antibody concentrations used for detecting specific antibodies in VHSV-infected olive flounder to reduce non-specific binding, and improve the sensitivity of ELISA. The results suggested that OD (optical Density) values were valid when ELISA was performed with $0.1{\mu}g/well$ of virus, involving blocking with blocking buffer (Roth, Roti-Block), 1:300-1:600 dilution with flounder antisera, and 1:1000 dilution with anti-flounder IgM and HRP-conjugated goat anti-mouse IgG for detecting the VHSV antibody in flounder sera. Furthermore, 11 different VHSV strains isolated in Korea from 2012 to 2016 were used to infect the fish. The results showed no correlation between viral pathogenicity and antibody production. This research is a basic study on the application of antibody detection in the diagnosis of viral hemorrhagic septicemia in the olive flounder.
We have examined the feasibility of using the specific interaction between mistletoe lectin I (ML I) and ${\beta}$-Dgalactose instead of the anti-ML I antibody in developing a homogeneous type competitive binding assay for ML I. We also have examined the feasibility of adapting the biotin/avidin mediated homogeneous assay for this system. Alkaline phosphatase (AKP) was employed as a single substrate enzyme label. The dose-response curve shows a detection range of 1-25 ${\mu}$g/mL and a linear response with a correlation coefficient of 0.99. To demonstrate the analytical utility of this method, 10 ${\mu}$g/mL of ML I was spiked into distilled water. The results show that the mean recovery was 10.03 ${\mu}$g/mL with an SD of 0.18. The difference between the spiked value and the mean recovery was 0.03 ${\mu}$g/mL, with a relative error of 0.3 and 1.6 % of RSD.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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