This study was investigated to find out optimal medium maximizing the production of fibrinolytic enzyme by Bacillus sp. isolated from Korean fermented soybean paste, which could hydrolyze the fibrin produced through the blood coagulation mechanism in human body. Among carbon sources tested, galactose was most effective for the enzyme production, and the level of the concentration for the optimal enzyme production was $4\%$(w/v). For nitrogen sources tested, malt extract was most effective for the enzyme production, and level of the concentration for optimal enzyme production was $4\%$(w/v). For mineral sources tested, $K_2HPO_4$ was most effective for enzyme production. The enzyme was maximally produced by cultivating the organism at the liquid medium of the initial pH 6 and temperature of $40^{\circ}C$.
Disturbance of antioxidant system is very common in chronic alcoholics and herbal or natural products with antioxidant activity have been used for its treatment. This study was to investigate the effect of Vitis vinifera extract(V), Schisandra chinensis extract(S), Taraxacum officinale extract(T), Gardenia jasminoides extract(G), Angelica acutiloba extract(A) and Paeonia japonica extract(P), and their combinations on the antioxidant and ethanol oxidation system. Male Sprague-Dawley rats were subjected to Lieber-DeCarli ethanol liquid diet(ED) and were then given different herbal extract mixtures for 6 weeks including VST(V 100+S 150+T 150mg/kg/day), VSG(V 100+S 150+G 150mg/kg/day), VTG(V 100+T 150+G 150mg/kg/day), and VAP(V 100+A 150+P 150mg/kg/day). When the activity of alcohol dehydrogenase(ADH) and acetaldehyde dehydrogenase(ALDH) were compared between ED only group and herbal extracts treatment group, the differences were statistically significant. Phase I and II(glutathione-S-transferase, phenol sulfatransferase) enzyme activities were found to be significantly higher in the VAT treatment group compared to the ED group. Herbal extracts not only repressed the ethanol-induced elevation of malondialdehyde level, but also protected against ethanol-induced decrease in glutathione content, glutathione reductase, glutathione peroxidase, catalase and superoxide dismutase activities. The administration of the herbal extracts was found to be effective in eliminating lipid-peroxides induced by long-term consumption of alcohol by activating various enzyme systems and physiological active compound formation system. After a chronic consumption of alcohol, Angelica Radix protected the liver via activating the ethanol-metabolism enzyme system, and Paeoniae Radix via activating the ethanol-metabolism enzyme and the phase I, II-metabolism enzyme system. Taraxaci Herba was also effective in liver protection via activating the ethanol-metabolism enzyme system and the phase I, II-metabolism enzyme system, Gardeniae Fructus via activating the phase II-metabolism enzyme system and the anti-oxidation system enzyme, and Schisandra Fructus and a grapestone via activating the anti-oxidation system. Our data suggest that these herbal extracts may be useful as a health functional food or new drug candidate for fatty liver and hepatotoxicity induced by chronic alcohol consumption.
Kim, Myeong-Gil;Oh, Moon-Seog;Kang, Suk-Ho;Kim, Han-Taek;Yoon, Mi-Hye
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.30
no.4
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pp.359-365
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2015
The purpose of this study was to investigate the contents of sugars and ${\alpha}$-amylase and ${\beta}$-amylase activities in 98 specimen with enzyme foods and enzyme-shaped foods (the other processed foods, beverage bases, fermented drinks, liquid teas). The ${\alpha}$-amylase activity in enzyme foods and the other processed foods were ranged 4.9~53,854.6 U/g and 2.9~1,182.7 U/g, respectively, there was a big difference in the same type. The ${\alpha}$-amylase activity of the fermented products (beverage bases, fermented drinks, liquid teas) were ranged 0.1~1.7 U/g. The average of ${\beta}$-amylase activity in enzyme foods, the other processed foods, the fermented products were found 126.0 U/g, 5.6 U/g and 10.5 U/g, respectively, enzyme-shaped foods were a lot lower than enzyme foods. Total contents of sugars were average 22.4 g/100 g in enzyme foods, 14.8 g/100 g in the other processed foods, 46.9 g/100 g in beverage bases, 41.1 g/100 g in fermented drinks, 39.5 g/100 g in liquid teas, total contents of sugars appeared high amount in the fermented products. Correlations between ${\alpha}$-amylase activity and lactose content was statistically significant in enzyme foods (r = 0.644) and it was strong in the other processed foods (r = 0.903). Correlations between ${\beta}$-amylase activity and lactose content was statistically significant in enzyme foods (r = 0.648) and it was strong in the other processed foods (r = 0.757). There was a significant relationship between ${\alpha}$-amylase and ${\beta}$-amylase activities in enzyme foods and the other processed foods (r = 0.869, r = 0.760). That is, it was found that also the proportional relationship established among the ${\alpha}$-amylase activity, ${\beta}$-amylase activity.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1986.12a
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pp.515.1-515
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1986
Thermostable tryptophanase was extracted from a thermophilie bacterium, strain T which was absolutely symbiotic with strain 5. The enzyme was purified 14.7 fold with 5.8% yield by chromatographies using ion exchange, gel filtration, and hydrophobic interaction columns, followed by high performance liquid chromatography on hydroxyapatite column. The purified enzyme has a molecular weight of approximately 210,000 estimated by gel filtration column chromatography, and the molecular weight of subunit was determined by SDS polyacrylamide gel electrophoresis to be 46,000, which indicates that the native enzyme is made of four homologous subunits. The tryptophanase was stable at 65o0 and the optimum temperature for the enzyme activity for 20 min reaction was 70$^{\circ}C$. The purified enzyme activity for 20 min ieaction was 70$^{\circ}C$. The purified enzyme catalyzed the degradation of L-tryptophan into indole, pyruvate and ammonia in the presence of pyridoxal phosphate. 5-Hydroxy-Ltryptophan, 5-methyl-DL-tryptophan, L-cysteine, S-methyl-L-cysteine, 5-methyl-DL-tryptophan, L-cysteine, S-methyl-Lcysteine, and L-serine were also used as substrates to form pyruvate. The amino acid composition of the tryptophanase was determined, and found to contain a high percentage of hydrophobic amino acids, especially in the proline content, which was much higher than that of Escherichia coli tryptophanase. In addition, the 35N-terminal amino acid sequence of the tryptophanase was completely different from that of E. coli tryptophanase.
In order to enzymatically produce chitooligosaccharide using the crude enzyme preparation from Bacillus cereus D-11, we first studied the optimal reaction conditions. It was found that the optimal temperature for hydrolysis of chitosan was $55^{\circ}C$. The ratio of enzyme/substrate should not be lower than 0.13 U/mg in the reaction mixture. The enzyme activity was stable below $50^{\circ}C$. The products of enzymatic reaction were analyzed by both thin layer chromatography and high performance liquid chromatography. Under the appropriate condition, chitosan was hydrolyzed using the enzyme preparation. The resulting chitooligosaccharides were purified and separated by Dowex ($H^+$) ion exchange chromatography. From 4 g soluble chitosan, 0.95 g $(GlcN)_2$, 1.43 g $(GlcN)_3$, and 1.18 g $(GlcN)_4$ were recovered.
Enalapril. a prodrug. is the ethyl ester of a long-acting angiotensin converting enzyme inhibitor. enalaprilat. Because enalapril does not contain any appreciable chromophore. detection of the drug in a complex matrix (e.g.. biological fluids) has been problematic with conventional detection systems in high-performance liquid chromatography (HPLC). As a result. determination of enalaprillevel in blood samples has been typically carried out using HPLC-MS/MS in the literature. (omitted)
An outer membrane-associated 2-furaldehyde dehydrogenase, catalyzing the oxidation of 2-furaldehyde to 2-furoic acid from Klebsiella pneumoniae was purified to homogeneity and characterized. The enzyme showed its highly specific dependency on $\beta$-$NAD^{+}$. Enzyme activity was monitored during purification by using substrate 2-furaldehyde and coenzyme $\beta$-$NAD^{+}$ by means of high performance liquid chromatography. The outer membrane was successfully collected by the methods of Percoll density gradient ultracentrifugation and ultracentrifugation after preferential solubilization of the membrane with $Mg^{2+}$ and Triton X-100. The enzyme was purified by the series of procedures including extraction of outer membrane protein with EDTA and lysozume, and fractionation by column chromatography on QAE-Sephades Q-50, and subsequently Sephadex G-100. The enzume showed its optimal activity at $85^{\circ}C$, pH 9.5, and in the presence of 1.5% (vol/vol) Triton X-100. The enzyme exhibited a native molecular size of 88,000 by nondenaturing polyacrylamide gel electrophoresis and had an apparent Km of 4.72mM for 2-furaldehyde.
The purpose of this study was that the optimal hydrolysis conditions of endo- and exo-type enzymes were selected to utilize organic cheese byproducts. Optimal substrate concentration and optimum enzyme ratio were measured by using 4 kinds of endo-type enzymes (alcalase, neutrase, protamex, and foodpro alkaline protease) and two exo-type enzymes (flavourzyme and prozyme 2000P) for whey protein hydrolysis were analyzed using liquid chromatography. As a result, the optimal endo-type enzyme through the first enzyme reaction was selected as alcalse, and as a result of the secondary enzyme reaction, flavourzme was selected as the Exo type enzyme. The concentration of whey protein substrate for optimal primary and secondary enzyme reactions was 10%. In addition, the optimum ratio of enzyme was 0.5% of alcalase and 0.2% of flavourzyme, which showed low molecular weight chromatography pattern compared to 2% of alcalase and 1% of flavourzyme hydrolyzate. Therefore, hydrolyzing the endo-type enzyme alcalase at a concentration of 0.5% for 10 hours and then hydrolyzing the exo-type enzyme flavouryme at a concentration of 0.2% for 4 hours was considered to be the optimum condition.
The goal of this study was to identify and characterize selected Trichoderma isolates by metabolic profiling and enzyme assay for evaluation of their potential as biocontrol agents against plant pathogens. Trichoderma isolates were obtained from the Rural Development Administration Genebank Information Center (Wanju, Republic of Korea). Eleven Trichoderma isolates were re-identified using ribosomal DNA internal transcribed spacer (ITS) regions. ITS sequence results showed new identification of Trichoderma isolates. In addition, metabolic profiling of the ethyl acetate extracts of the liquid cultures of five Trichoderma isolates that showed the best anti-Phytophthora activities was conducted using gas chromatography-mass spectrometry. Metabolic profiling revealed that Trichoderma isolates shared common metabolites with well-known antifungal activities. Enzyme assays indicated strong cell wall-degrading enzyme activities of Trichoderma isolates. Overall, our results indicated that the selected Trichoderma isolates have great potential for use as biocontrol agents against plant pathogens.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1987.07a
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pp.157-167
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1987
The have been many reports that phenoloxidase are correlated with development in many fungi. C. congregatus, one of nushroom-forming basidiomycetes, which requires light for its development also has phenoloxidases. In C. congragatus, there are two sets of membrane-associated phenoloxidase (PHO I and PHO II) which are differentiated by their isozyme patterns, and each enzyme set consists of two different subtrate specific enzyme protein; o-tolidine reacting enzyme, and DOPA reacting enzyme. PHO I which is localized by a protoplast-concanavalin A technique by using a new solidifying agent, Pluronic Polyol F 127, instead of agar appears in the vegetative hyphae, and PHO II appears at the early primordial stage on agar and at the sclerotial stage of liquid shake cultures. Inhibition of PHO I with the enzyme inhibitors inhibits mushroom formation as well as melanization of the vegetative hyphae at concentrations which do not inhibit the vegetative growth. PHO I deficient mutants do not form mushrooms or melanins, and the mutants show abnormal nuclear migration patterns. PHO II has roles; possibly cementing the adjacent hyphae during the actual three dimensonal structure formation, and melanizing mushrooms and sclerotia. The possible roles of PHO I in the light reception complex and in melanin formation, the function of malanin, and possible roles of postulated post translational modifying enzymes which regulate the phenoloxidases, nuclear migration pattern, and self-nonself recognition mechanism are discussed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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