A modified form of the integrated Michaelis-Menten equation would provide a useful means of evaluating enzyme kinetic parameters in nonlinear progress reaction with time. A slight modification of the Lineweaver-Burk form (and other variants) using for the velocity, the change in substrate concentration divided by time ($\={v}$), and for the velocity, the change in substrate for the time interval ($\={S}$), allows this linear reciprocal form to be used with negligible error even when as much as half of the substrate is utilized during the time interval.
G. melanogenus로부터 분리한 폴리올 탈수소 효소는 이미 알려진 바의 다른 폴리올 탈수소 효소와는 달리 조효소로서 2,6-dichlorophenolindophenol (DPIP)와 같은 인위적 전자 수용체를 필수로 요구하고 있음으로 이 특수 효소의 반응메카니즘을 반응속도론적 연구를 통하여 규명코저 시도하였으며, 폴리올 산화반응에 대한 초기속도 측정실험과 효소반응 산물인 케토산에 의한 저해 실험을 통하여 이 반응은 Ping-Pong Bi-Bi형의 반응메카니즘으로 진행됨을 확인하였다. 따라서 두 기질 즉 포리올로서 D-mannitol 및 전자수용체로 DPIP가 효소에 의하여 반응이 진행될 경우 D-mannitol이 우선 효소와 작용하며 첫 반응산물로서 해당하는 케토산인 D-fructose가 생성될 것으로 기대되며 이 반응이 전체 반응속도를 조절하는 과정일 것이라고 추측하였다.
Micrococcus luteus purine nucleoside phosphorylase (PNP) has been purified and characterized. The physical and kinetic properties have been described previously. Chemical modification of the enzyme was attempted to gain insight on the active site. The enzyme was inactivated in a time-dependent manner by the arginine- specific modifying reagent phenylglyoxal. There was a linear relationship between the observed rate of inactivation and the phenylglyoxal concentration. At 30 $^{\circ}C$ the bimolecular rate constant for the modification was 0.015 $min^{-1}mM^{-1}$ in 50 mM $NaHCO_3$ buffer, pH 7.5. The plot of logk versus log phenylglyoxal concentration was a strainght line with a slope value of 0.9, indicating that modification of one arginine residue was needed to inactivate the enzyme. Preincubation with saturated solutions of substrates protected the enzyme from inhibition of phenylglyoxal, indicating that reactions with phenylglyoxal were directed at arginyl residues essential for the catalytic functioning of the enzyme.
The fast-migrating cationic peroxidase isozyme, named RC3, was purified from rice (Oryza sativa cv. Nak-Dong) callus. Purification of the enzyme was accomplished by ammonium sulfate fractionation, CM-cellulose ionexchange chromatography, and Sephacryl S-100 gel filtration. The molecular mass of the enzyme was about 34 KDa as determined by SDS-PACE and 38 KDa by Sephacryl-100 gel filtration. The pI value of the enzyme was 8.9. Antiserum against RC3 was raised in rabbits, and anti RC3 antiserum reacted with RC3 isozyme by Ouchterlony double immunodiffusion. The optimum pHs and Km values of the enzyme for various substrates were determined. Kinetic studies with various substrates showed that RC3 had very low Km value of 0.01 mM for ferulic acid and ascorbic acid. However, the enzyme did not use esculetin as a substrate.
The structural properties of cellulose are significantly changed with the progress of hydrolysis reaction. The effects of changes on such properties of cellulosic substrate as crystallinity, amicessibility of enzyme to the active site of cellulose surface, and particle size on the kinetics of enzymatic hydrolysis have been studied. Among those physical studies, the apparent surface active site of cellulose particle was found to have the most significant effect on the hydrolysis kinetics. Based on the experimental results, the adsorption affinity of enzyme and hydrolysis rate were mainly influenced by the surface roughness of cellulose particle. The extent of accesssible active site may be expressed as the change of particle diameter. The Langmuir isotherm was proposed in terms of enzyme activity to explain the actual action of enzyme protein.
The wound-inducible lipoxygenase obtained from maize is one of the nontraditional lipoxygenases that possess dual positional specificity. In this paper, we provide our results on the determination and comparison of the kinetic constants of the maize lipoxygenase, with or without detergents in the steady state, and characterization of the dependence of the kinetic lag phase or initial burst, on pH, substrate, and detergent in the pre-steady state of the lipoxygenase reaction. The oxidation of linoleic acid showed a typical lag phase in the pre-steady state of the lipoxygenase reaction at pH 7.5 in the presence of 0.25% Tween-20 detergent. The reciprocal correlation between the induction period and the enzyme level indicated that this lag phenomenon was attributable to the slow oxidative activation of Fe (II) to Fe (III) at the active site of the enzyme as observed in other lipoxygenase reactions. Contrary to the lagging phenomenon observed at pH 7.5 in the presence of Tween-20, a unique initial burst was observed at pH 6.2 in the absence of detergents. To our knowledge, the initial burst in the oxidation of linoleic acid at pH 6.2 is the first observation in the lipoxygenase reaction. Kinetic constants (Km and kcat values) were largely dependent on the presence of detergent. An inverse correlation of the initial burst period with enzyme levels and interpretations on kinetic constants suggested that the observed initial burst in the oxidation of linoleic acid could be due to the availability of free fatty acids as substrates for binding with the lipoxygenase enzyme.
Embryonic stem cells (ESCs), representing a population of undifferentiated pluripotent cells with both self-renewal and multilineage differentiation characteristics, are capable of spontaneous differentiation into cardiomyocytes. The present study sought to define the kinetic characterization of lactate dehydrogenase (LDH) and creatine kinase (CK) of ESC- and neonatal-derived cardiomyocytes. Spontaneously differentiated cardiomyocytes from embryoid bodies (EBs) derived from mouse ESC line (Royan B1) and neonatal cardiomyocytes were dispersed in a buffer solution. Enzymes were extracted by sonication and centrifugation for kinetic evaluation of LDH and CK with spectrophotometric methods. While a comparison between the kinetic properties of the LDH and CK of both groups revealed not only different Michaelis constants and optimum temperatures for LDH but also different Michaelis constants and optimum pH for CK, the pH profile of LDH and optimum temperature of CK were similar. In defining some kinetic properties of cardiac metabolic enzymes of ESC-derived cardiomyocytes, our results are expected to further facilitate the use of ESCs as an experimental model.
The molecular nature of aspirin hydrolysis was studied using cyclodextrin as a biomimetic model for esterase. Cyclodextrin was selected for this purpose because it meets the necessary requirements for the hydrolysis study, Dissociation constants and catalytic rates were obtained under alkaline conditions by the kinetic method.
A ${\beta}$-galactosidase with high transgalactosylic activity was purified from a Bacillus species, registered as KFCC10855. The enzyme preparation showed a single protein band corresponding to a molecular mass of 150 kDa on SDS-PAGE and gave a single peak with the estimated molecular mass of 250 kDa on Sephacryl S-300 gel filtration, suggesting that the enzyme is a homodimeric protein. The amino acid and sugar analyses revealed that the enzyme is a glycoprotein, containing 19.2 weight percent of sugar moieties, and is much more abundant in hydrophilic amino acid residues than in hydrophobic residues, the mole ratio being about 2:1. The pI and optimum pH were determined to be 5.0 and 6.0, respectively. Having a temperature optimum at $70^{\circ}C$ for the hydrolysis of lactose, the enzyme showed good thermal stability. The activity of the enzyme preparation was markedly increased by the presence of exogenous Mg (II) and was decreased by the addition of EDTA. Among the metal ions examined, the most severely inhibitory effect was seen with Ag (I) and Hg (II). Further, results of protein modification by various chemical reagents implied that 1 cysteine, 1 histidine, and 2 methionine residues occur in certain critical sites of the enzyme, most likely including the active site. Enzyme kinetic parameters, measured for both hydrolysis and transgalactosylation of lactose, indicated that the enzyme has an excellent catalytic efficiency for formation of the transgalactosylic products in reaction mixtures containing high concentrations of the substrate.
Changes in electric resistance was measured to carry out the kinetic analysis of milk gellation upon addition of rennet. Using pasteurized milk and commercial rennin, kinetic properties were investigated during milk gellation in terms of initial hydrolysis and coagulation steps. Specially designed reactor with two platinum electrodes was used throughout the experiments. As a function of either milk concentrations or reaction temperatures, gel time exhibited directly proportional relations: on the contrary, gel time was inversely pro-portional to enzyme concentration. Activation energies for enzymatic degradation and cogulation were 16.3, 4.6 and 34, 8.6 Kcal/mol, repectively. This simple analytical method proved to be very effective to characterize the mechanism of milk gellation. Moreover, unlike other methods, this method reguired simple apparatus and short time of analysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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