It is suggested that carbohydrate metabolites may involve in the development of morula to blastocyst but many of the mechanisms are not unmasked. Two-cell stage embryos were collected and examined the effects of lactate on the development of blastocyst in vitro. The expression profiles of lactate dehydrognase (Ldh) genes and aquaporin (Aqp) genes were analyzed with RT-PCR. The successful development from morula to blastocyst was dependent on lactate concentrations. The expression profiles of Ldh genes were changed by the lactate concentration. Ldha was expressed in morula stage at 10 mM lactate, and in blastocyst stage at lactate free condition. Ldhb was expressed in morula stage at 10 mM and 20 mM lactate, and in blastocyst stage at 10 mM lactate. Aqp genes were also showed different expression patterns by the lactate concentrations. Aqp3 was expressed in hatching embryo at 120 hr post hCG administration (hph) which was cultured in BWW medium and lactate free condition. Aqp7 was expressed in hatching embryos at 120 hph which was cultured at 10 mM lactate condition. Also Aqp8 was expressed in hatching embryo at BWW and 20 mM lactate condition. Aqp9 was expressed in morula at BWW and 10 mM lactate condition, and in blastocyst at BWW. Based on these results, it is suggested that concentration of lactate in the medium and the level of lactate synthesis in embryo is critical factor for blastocoels formation. In addition it is suggested that LDH may involve the AQPs expression in embryos.
In order to improve the cryopreservation by vitrification or slow freezing of nuclear transplant rabbit embryos, the effects of factors affecting embryo cryopreservation such as cryoprotectants, equilibration, cooling rate and post-thaw dilution on post-thaw survial and development were determined using intact embryos of morular stage. And the post-thaw development of nuclear transplanted embryos cryopreserved under the optimal conditions examined was compared between vitrification and slow freezing. The cryoprotectant solution used was ethyleneglycol-ficoll-sucrose (EFS) or ethyleneglycol-poly-vinylpyrrolidone-galactose- I (EPG- I ) for vitrification, and EPG- II for slow freezing. To examine the viability of frozen-thawed embryos, the nuclear transplanted embryos were co-cultured in TCM-199 plus 10% FBS with bovine oviduct epithelial cells(BOEC) for 24 hrs and the intact morulae were co-cultured with BOEC for 5 days and 3 days to hatching blastocyst stage in 39 ˚C 5% $CO_2$ incubator. The results obtained were as follows: Following vitrification with EFS, the post-thaw development of rabbit morulae to hatching blastocyst was significantly(P<0.05) higher in compacted stage(82.4%) than in early morular stage(60.0%). The post-thaw development of compacted morulae to hatching blastocyst was similarly high in vitrification with EFS(82.4%), EPG- I (85.0%) and in slow freezing with EPG- II (83.3%). Following vitrification with EPG- I, the post-thaw development of intact rabbit morulae to hatching blastocyst was similar as 78.0% and 85.0% in 1-step and 2-step post-thaw dilution, respectively. The post-thaw development of nuclear transplanted rabbit embryos of compacted morulae stage to hatching blastocyst was similarly 43.6% and 40.0% in vitrification with EPG- Iand slow freezing with EPG- II, respectively. These results indicated that the rabbit nuclear transplant and intact embryos of morulae stage could be well cryopreserved with either vitrification or slow freezing procedure.
This study was carried out to investigate the effect of biological factors on the in vitro production(IVP) of bovine oocytes for development of simple culture methods and medium. Oocytes from the slaughterhouse ovaries were matured and fertilized using general protocol and this study was examined if there were necessary to co-culture, media change, media type and embryo density. This results were as follows: 1. The development rate according to co-culture with cumulus cells and non co-culture as drop culture was not significantly different in cleavage (68.9 vs 71.7%), 8-cell stage (41.2 vs 44.1%) and blastocyst stage (12.2 vs 13.8%), respectively (p<0.05) 2. The blastocyst development rates in YS and CRIaa were higher than that in TCM199 (12.4, 10.4$ vs 3.7%), but the cleavage (69.0, 77.8 and 61.0%) and 8-cell stage (31.7, 37.0 and 35.7%) development accoring to YS, TCM199 and CRIaa ws not significantly different, respectively (p<0.05). 3. There was no significantly different in cleavage (62.6, 59.5 and 61.2%), 8-cell(34.7, 37.9 and 34.0%) and blastocyst (9.5, 11.6 and 12.8%) development among medium change time as control, Group I and Group II, respectively (p<0.05). 4. Blastocyst formation of 8-cell stage according to embryo density was not significantly different in 1, 10 and 25 embryos (27.3, 22.5 and 34.0%), respectively (p<0.05). These results indicated that simple culture system could reduce bovine IVP embryos as drop culture as non co-culture system, high density embryo (25 embryos/50 $\mu$1 drop). YS defined medium and no medium change for whole culture period, although other biological factors need to examine in order to produce efficient IVP bovine embryos.
Imprinted genes are essential for fetal development, growth regulation, and postnatal behavior. However, little is known about imprinted genes in livestock. We hypothesized that certain putatively imprinted genes affected normal peri-implantation development such as embryo elongation, initial placental development, and preparation of implantation. The objective of the present study was to investigate the mRNA expression patterns of several putatively imprinted genes during the porcine peri-implantation stages from day 6 to day 21 of gestation. Imprinted genes were selected both maternally (Dlk1, IGF2, Ndn, and Sgce) and paternally (IGF2r, H19, Gnas and Xist). Here, we report that the maternally imprinted gene IGF2 was expressed from day 6 (Blastocyst stage), but Dlk1, Ndn, and Sgce were not expressed in this stage. These genes were first expressed between days 12 and day 14. All the maternally imprinted genes studied showed significantly high expression patterns from day 18 of embryo development. In contrast, paternally imprinted genes IGF2r, H19, Gnas, and Xist were first expressed from day 6 of embryo development (BL). Our data demonstrated that the expression of H19 and Gnas genes was significantly increased from day 14 of the embryo developmental stage, while IGF2r and Xist only showed high expression after day 21. This study is the first to show that the putatively imprinted genes were stage-specific during porcine embryonic development. These results demonstrate that the genes studied may exert important effects on embryo implantation and fetal development.
인삼종자의 휴과타파에 온도 및 지베레린의 효과를 배 생육 단계별로 조사하였던 바 그 결과는 다음과 같다. 1. 배의 후숙초기(8월 6일~11월 6일)에는 15$^{\circ}C$, 후숙중기(개갑후 30일)에는 1$0^{\circ}C$, 후숙종기(개갑후 30일~92일)에는 5$^{\circ}C$에서 배생장이 제일 잘되었다. 2. 개갑적온은 17$^{\circ}C$ 정도로 배생장 적온(15$^{\circ}C$)보다 높았다. 3. 배의 비대생장이 완료된 종자에서는 고온 즉(25-3$0^{\circ}C$)에서 발아가 촉진되었으나 곧 부패하였다. 4. 개갑된 종자가 5$^{\circ}C$에서 105일째 80%, 1$0^{\circ}C$에서 147일째 28%의 발아율을 보였으나 15$^{\circ}C$ 이상의 온도에서는 전혀 발아되지 않았다. 5. 지베레린처리에 의해 개갑율은 증가되었으나 발아에 필요한 저온 대치효과는 인정되지 않았다. 6. 발아에 필요한 저온처리는 배의 비대생장 완료에 필요한 것으로 여겨졌다.
Chick embryos from stage 14 to stage 31 were studied by means of serial section and light microscopy in order to learn the relationship between the settlement sites of the primordial germ cells (PGCs) and the forming genital ridge. The results showed that: when embryo hatched for 53-56 h, the PGCs reached the coelomic epithelial tissue where gonad would be formed, meanwhile the epithelial tissue began thicker before the PGCs reached. Before stage 19, the final region the PGCs arrived was the thickened portion of the coelomic epithelium, the glycogen in the PGCs cytoplasm maintenance remained unchanged. However at the 3.5-5th hatching day, the glycogen in the PGCs cytoplasm reduced gradually. On the 6th hatching day, the gonad of the embryo appeared the feature of ovary, and the glycogen in the PGCs cytoplasm reduced further. On the 7th hatching day, the differentiation of ovary or testis was obvious and the glycogen in the PGCs cytoplasm later disappeared.
These studies were carried out ot investigate on the transferred embryo development following ultrarapid frozen for 8-cell and morula of in vitro fertilization mouse embryos. The post-thaw embryo survival was evaluated and compared by cell stage of embryos and by equilibration time before ultrarapid freezing. The results obatined were summerized as follows: 1. The effects of equilibration time of 3 vs. 6 minutes before ultrarapid freezing and after thawing on the morphological survival and the viability of 8-cell and morulas embryos were not significant. 2. When the ultrarapid frozen-thawed 32 eight-cell and 33 morula embryos, and 30 fresh blastocysts were transferred to pseudopregnant recipient mice, the number of normal offsprings produced were 9(28.1%), 14(42.4%) and 18(60.0%), respectively. From the above resutls, it was concluded that the optimal conditions of pH osmolality of the media for mouse IVF and embryo culture, and the period of sperm preincubation might be 7.1, 310 mOsm and 120 min., respectively,a nd somewhat high conception rate might be resulted from transfer of frozen embryos of morula stage and fresh embryos of blastocyst stage.
Remarkable progress has recently been made in embryo transfer technology, resulting in the birth of IVF and nuclear transfer offsprings in swine. However, further progress of the technology to (I) make a safe, effective and economic estrual-cycle synchronization compound, (2) regulate each step of sperm capacitation (3) induce monospermic fertilization, (4) in vitro grow and mature oocytes, (5) fertilize the oocytes efficently, (6) culture the oocytes to the blastocyst stage in defined media, (7) produce multiply copies of embryos with superior genetic merit, (8) preselect the sex of these superior offsprings, and (9) preserve embryos by freezing and storage in liquid nitrogen is required before this promising technology is applied routinely to swine for practical use.
This study was carried out to evaluate the efficiency of production of cloned embryos by nuclear translatation (NT) when using 4-cell to compact morula stage embryos as nuclear donor. In micromanitulation and electrofusion of blastomeres from 4-cell to morula stage embryos, the successful injection rate was higher with late stage blastomeres, on the contrary the fusion rate was lower. The in vitro developmental rate of NT embryos was not significantly different between cell-stages of donor blastomeres. Although the overall rate of production of cloned embryos with 4-cell. 8-cell, early and late morula stage embryos was 14.0, 18.0, 15.3 and 14.1%, respectively, the mean number of blastocysts produced with a donor embryo was the most (4.51) with the compact morulae. Therefore, it can be suggested that the embryos at thelate stage is more beneficial for the mulciple production of cloned embryos, If the late stage blastomeres have maintained their totipotency to produce intact offspring.
As a tumor suppressor homologue during mitosis, Chk2 is involved in replication checkpoints, DNA repair, and cell cycle arrest, although its functions during mouse oocyte meiosis and early embryo development remain uncertain. We investigated the functions of Chk2 during mouse oocyte maturation and early embryo development. Chk2 exhibited a dynamic localization pattern; Chk2 expression was restricted to germinal vesicles at the germinal vesicle (GV) stage, was associated with centromeres at pro-metaphase I (Pro-MI), and localized to spindle poles at metaphase I (MI). Disrupting Chk2 activity resulted in cell cycle progression defects. First, inhibitor-treated oocytes were arrested at the GV stage and failed to undergo germinal vesicle breakdown (GVBD); this could be rescued after Chk2 inhibition release. Second, Chk2 inhibition after oocyte GVBD caused MI arrest. Third, the first cleavage of early embryo development was disrupted by Chk2 inhibition. Additionally, in inhibitor-treated oocytes, checkpoint protein Bub3 expression was consistently localized at centromeres at the MI stage, which indicated that the spindle assembly checkpoint (SAC) was activated. Moreover, disrupting Chk2 activity in oocytes caused severe chromosome misalignments and spindle disruption. In inhibitor-treated oocytes, centrosome protein ${\gamma}$-tubulin and Polo-like kinase 1 (Plk1) were dissociated from spindle poles. These results indicated that Chk2 regulated cell cycle progression and spindle assembly during mouse oocyte maturation and early embryo development.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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