The objective of this study was to examine the effect of vitamin B (pantothenic acid, folic acid, and myo-inositol) that was supplemented to embryo culture medium on in vitro development of parthenogenetically activated (PA) pig embryos. Cumulus-oocyte complexes derived from slaughtered ovaries were matured in TCM-199 supplemented with porcine follicular fluid, cysteine, pyruvate, EGF, insulin, and hormones (hCG and eCG) for the first 22 h and then further cultured in hormone-free medium for an additional 22 h. After maturation culture, metaphase II oocytes that extruded 1st polar body were electrically activated and treated with $5.0\;{\mu}g/ml$ cytochalasin B for 4 h. Then, PA embryos were cultured for 7 days in a modified NCSU-23 that was supplemented with pantothenic acid, myo-inositol, or folic acid at different concentrations ($3{\sim}300\;{\mu}M$) according to the experimental design. Myo-inositol added to culture medium did not show any beneficial or inhibitory effects on embryo cleavage and blastocyst formation. However, $300\;{\mu}M$ pantothenic acid significantly inhibited blastocyst formation compared to control (no addition) (24% vs. 36%, p<0.05). Folic acid ($300\;{\mu}M$) significantly (p<0.05) increased blastocyst formation (56%) compared to control (41%). Our results demonstrated that in vitro development of PA embryos was significantly influenced by vitamin B and addition of $300\;{\mu}M$ folic acid to culture medium improved in vitro development of pig PA embryos.
The object of this study was to evaluate the effect of uterine epithelial cells on development of Korean native cattle(KNC) oocytes fertilized in vitro. Qocytes were collected from ovaries of slaughtered Korean Native Cows and matured in TCM199 with granulosa cells supplemented with 10% FBS, 5$\mu$g/ml FSH, 10 JU/ml hCG, and 1$\mu$g/ml estradiol-17$\beta$ for 24 hrs. For co-culture of in vitro development of fertilized ova, oviductal epithelial cells (l$\times$l0˚cells /ml) obtained from slaughtered cow and uterine epithelial cells(1$\times$10˚cells /ml) flushed from the superovulated holstein on Day 7 were incubated in 39$^{\circ}C$, 5% $CO_2$, 95% air. Frozen-thawed KNC sperm was capacitated with BO(Brackett & Oliphant, 1975) medium supplemented with 10mM, 5mM-caffein. Matured oocytes were inseminated for 20 hrs. And then fertilized oocytes were washed with culture medium and transferred to oviductal epithelial cells for in vitro development and three days later a portion of embryos were transferred to uterine epithelial cells. Stastical methods of developmental rates on KNC-IVF oocytes was ANOVA-test. Developmental rates of KNC-IVF oocytes was significant higher(P<0.01) when co-cul-tured with uterine epithelial cells(25.2%) than oviductal epithelial cells. Blatocyst cul-tured for 7 to 9 days were frozen by automatic freezer with 1.4M glycerol-PBS. Survival rates of blastocyst was 40.0%. Fourteen frozen-thawed blastocysts were transferred to five holstein heifers on day 7 after natural estrus. Three recipients were observed twin and one recipient was single by ultra-sound systems on days 45 after embryo transfer.
Basic informations for direct somatic embryo formation in Rehmannja glutinosa Lib. were obtained in 500ml erlenmyer flask. The ratio of ammonium to nitrate nitrogen of 825(mg/l) : 1900(mg/l) was proper condition for somatic embryo formation from stem and petiole explants and 3% sucrose was the most effective carbon source. Full strength MS medium with 2mg/l BA was better than LS medium for somatic embryogenesis. The initial pH 5.7 of medium(full strength MS with 2.0mg/l BA and 0.1mg/l NAA) was good for embryo production. Potassium ion was taken up rapidly within 2 weeks. while $Ca^{++}$ and $Mg^{++}$ ion contents were almost constant during culture period. Sucrose hydrolysis occurred throughout the culture, while glucose and fructose were absorbed simultaneously from the third week of culture.
The objective of this study was to produce calves derived from in vitro fertilization of in vitro matured follicular oocytes. Oocytes aspirated from small antral folicles of ovaries obtained at a local slaughter house were matured and fertilized in vitro. At l8hrs after insemination with Korean native cattle semen, oocytes were co-cultured for 6~7 days by utilizing co-culture system with bovine oviduct epithelial cell. After co-culture, good or excellent quality late morulae or early blastocysts were selected by morphological criteria under stereo microscope. Selected embryos were transferred to recipients on day 6 or 7 (estrus = day 0). Recipients were monitored by observation for estrus and rectal palpation after 60 days from embryo transfer. One of them went to term with the birth of a calf. This case is the first production of calf derived from in vitro fertilization in Korea.
효율적인 homozygous 동물을 생산하기 위한 실험의 단계로 염색체가 4배체인 수정란의 이용성을 타진하기 위해 생쥐 수정란과 cytochalasin B를 사용하여 4배체 유도에 관한실험을 수행하였다. 생쥐 2-세포기 수정란을 10$\mu\textrm{g}$/ml 농도의 cytochasin B로 약 20시간 배양하였을 때 모든 수정란은 발육을 거의 멈추었으나, 이 수정란을 cytochalasin B-free medium에 체외배양하였을 때 발육이 재개되어 48시간 후 상실기나 배반포기까지 약 74%의 발육율을 나타내었다. 그러나 발육된 수정란의 세포수는 대조구에 비해 휠신 적은 것으로 나타났다. 염색체 분석결과 cytochalasin B로 처리한 대부분의 수정란은 4배체인 것으로 나타났고 약간의 수정란은 mosaicism과 다배체를 나타내기도 하였다. 그러므로 cytochalasin B를 이용하여 효과적으로 4배체의 수정란을 유도할 수 있는 것으로 나타났다.
Insulin and transfenin (Tf) were found to be essential for suwival and differentiation of brain neuroblasts obtained from chick embryo. This requirement, however, is Changed from insulin to Tf upon neuronal development of the embryo, and this phenomenon is due to the changes in the levels of corresponding receptors. Using cultured neuroblasts, the level of Tf receptor is also found to increase Lvhile that of insulin receptor falls dramatically during the course of the cell differentiation. These results suggest that the development-specific changes in the levels of insulin and Tf receptors in embryo can be reproduced in the culture system during the differentiation period. Because the culture system used was a defined medium and contained no other macromolecules than insulin and Tf, it appears possible that insulin and Tf may act as signalling molecules in the control of neuronal development.
Rugosa rose (Rosa rugosa) is cultivated as a garden flower and an important genetic resource for the breeding of roses (R. hybrida). This study describes culture conditions for high frequency plant regeneration from zygotic embryo explants via somatic embryogenesis in rugosa rose. Mature zygotic embryo, cotyledon, and radicle explants formed embryogenic calluses at frequencies of 38, 6.7, and 8.8% when cultured on half-strength Murashige and Skoog medium (${\frac{1}{2}}MS$) supplemented with 2.26, 9.05, and $9.05{\mu}M$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, respectively. Embryogenic calluses produced numerous somatic embryos, which then developed into plantlets on ${\frac{1}{2}}MS$ without growth regulators. Regenerated plantlets were grown to whole plants in a growth chamber.
This study was conducted to evaluate the effects of different volume ($100{\mu}l$ vs. 2 ml) of microdrop culture on B6D2F1 mice oogenesis. In the present study, B6D2F1/CrljOri $F_1$ mice were utilized in order to maximize oogenesis. Also we used TCM-199, Dulbecco's medified Eagle's medium (DMEM), embryo culture medium (Fertilization medium, Cleavage medium, Blastocyst medium), G series medium and One step medium. Blastulation rate was not different between groups ($58.4{\pm}2.9%$ vs. $61.2{\pm}4.8%$). Zona hatched rate ($38{\pm}15.4%$ vs. $27{\pm}3.4%$) and attached rate ($55{\pm}13.9%$ vs. $46{\pm}3.9%$) did not differ by the volume of culture media. Total cell numbers ($59.8{\pm}9.7$ vs. $70.3{\pm}8.7$), ICM cell numbers ($15.8{\pm}0.6$ vs. $16.8{\pm}1.5$), TE cell numbers ($44.0{\pm}9.7$ vs. $53.6{\pm}7.3$), % ICM ($26.4{\pm}2.9%$ vs. $23.8{\pm}3.3%$) and ICM:TE ratio ($1:2.8{\pm}0.4$ vs. $1:3.2{\pm}0.6$) were not different between groups (i.e., $100{\mu}l$ vs. 2 ml). These results show that the capacity of the culture medium did not effect the cell numbers of B6D2F1 mice blastocysts. In summary, these results can provide fundamental data to maximize culture condition for in vitro fertilization on B6D2F1 mice.
This study described about preparation of the cross-linked silk fibroin (SF) film by ${\gamma}$-irradiation of the casted SF film, which is fabricated from aqueous solution regenerated via fibers of cocoons and their application as supports for human cell culture. The properties of cross-linked SF film were evaluated by FT-IR spectroscopy, contact angle, solubility to water, thermal analysis, surface area analyzer, and morphology via scanning electron microscopy (SEM). The cross-linked SF films were not dissolved in water and exhibited the rough surface morphology, large surface area, and good thermal properties. The human fibroblast cell (CCD-986sk) and embryo kidney-ft cell were well growed on the surface of cross-linked SF film supports prepared by ${\gamma}$-irradiation. The cross-linked SF film prepared by ${\gamma}$-irradiation can be used as biomaterials for human cell culture.
Gene and cell transfer technique will serve as a powerful tool for the genetic improvement of the poultry and to yield useful products. For avian transgenesis, Japanese quail may serve as an excellent animal model because of its small body size and fast growth rate. Recent progress was described on the manipulation of quail embryos such as the introduction of foreign genes and cells, and the subsequent culturing of the manipulated embryos yielding hatchlings. Intraspecific donor-derived offspring have been available in quail, however, further investigation will be required to obtain interspecific offspring with the aim of rescuing endangered species. Trans genesis will also be useful for improving the profitability and quality of poultry stocks and for developing stocks with novel uses. Considerable progress should soon be made toward the production of transgenic poultry. The key feature of the procedure described here is that embryos are initially taken out from the shell for ease of manipulation and then placed back in culture in addition to various operations midway during culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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