Objective: The study investigated the biological functions and mechanisms for controlling cashmere growth of Liaoning cashmere goat by ovarian carcinoma immunoreactive antigen-like protein 2 (OCIAD2) and decorin (DCN) genes. Methods: cDNA library of Liaoning cashmere goat was constructed in early stages. OCIAD2 and DCN genes related to cashmere growth were identified by homology analysis comparison. The expression location of OCIAD2 and DCN genes in primary and secondary hair follicles (SF) was performed using in situ hybridization. The expression of OCIAD2 and DCN genes in primary and SF was performed using real-time polymerase chain reaction (PCR). Results: In situ hybridization revealed that OCIAD2 and DCN were expressed in the inner root sheath of Liaoning cashmere goat hair follicles. Real-time quantitative PCR showed that these genes were highly expressed in SF during anagen, while these genes were highly expressed in primary hair follicle in catagen phase. Melatonin (MT) inhibited the expression of OCIAD2 and promoted the expression of DCN. Insulin-like growth factors-1 (IGF-1) inhibited the expression of OCIAD2 and DCN, while fibroblast growth factors 5 (FGF5) promoted the expression of these genes. MT and IGF-1 promoted OCIAD2 synergistically, while MT and FGF5 inhibited the genes simultaneously. MT+IGF-1/MT+FGF5 inhibited DCN gene. RNAi technology showed that OCIAD2 expression was promoted, while that of DCN was inhibited. Conclusion: Activation of bone morphogenetic protein (BMP) signaling pathway up-regulated OCIAD2 expression and stimulated SF to control cell proliferation. DCN gene affected hair follicle morphogenesis and periodic changes by promoting transforming growth $factor-{\beta}$ ($TGF-{\beta}$) and BMP signaling pathways. OCIAD2 and DCN genes have opposite effects on $TGF-{\beta}$ signaling pathway and inhibit each other to affect the hair growth.
Cancer stem cells (CSCs) are often characterized by the elevated expression of drug-resistance related stem-cell surface markers, such as CD133 and ABCG2. Recently, we reported that CSCs have a high level of expression of the IL-6 receptor (IL-6R). The purpose of this study was to investigate the effect of anticancer drugs on the expression of the drug resistance-related cancer stem cell markers, ABCG2, IL-6R, and CD133 in non-small cell lung cancer (NSCLC) cell lines. A549, H460, and H23 NSCLC cell lines were treated with the anticancer drugs 5-fluorouracil (5-FU; $25{\mu}g/ml$) and methotrexate (MTX; $50{\mu}g/ml$), and the expression of putative CSC markers was analyzed by fluorescent activated cell sorter (FACS) and the gene expression level of abcg2, il-6r and cd133 by reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR). We found that the fraction of ABCG2-positive(+) cells was significantly increased by treatment with both 5-FU and MTX in NSCLC cells, and the elevation of abcg2, il-6r and cd133 expressions in response to these drugs was also confirmed using RT-PCR. Also, the number of IL-6R(+) cells was increased by MTX in the 3 cell lines mentioned and increased by 5-FU in the H460 cell line. The number of CD133(+) cells was also significantly increased by both 5-FU and MTX treatment in all of the cell lines tested. These results indicate that 5-FU and MTX considerably enhance the expression of drug-resistance related CSC markers in NSCLC cell lines. Thus, we suggest that antimetabolite cancer drugs, such as 5-FU and MTX, can lead to the propagation of CSCs through altering the expression of CSC markers.
The efficacy of anticancer drugs depends on a variety of signaling pathways, which can be positively or negatively regulated. In this study, we show that SETDB1 HMTase is down-regulated at the transcriptional level by several anticancer drugs, due to its inherent instability. Using RNA sequence analysis, we identified FosB as being regulated by SETDB1 during anticancer drug therapy. FosB expression was increased by treatment with doxorubicin, taxol and siSETDB1. Moreover, FosB was associated with an increased rate of proliferation. Combinatory transfection of siFosB and siSETDB1 was slightly increased compared to transfection of siFosB. Furthermore, FosB was regulated by multiple kinase pathways. ChIP analysis showed that SETDB1 and H3K9me3 interact with a specific region of the FosB promoter. These results suggest that SETDB1-mediated FosB expression is a common molecular phenomenon, and might be a novel pathway responsible for the increase in cell proliferation that frequently occurs during anticancer drug therapy.
Statins are competitive inhibitors of hydroxy-3-methyl glutaryl coenzyme A (HMG-CoA) reductase and used most frequently to reduce plasma cholesterol levels and to decrease cardiovascular events. However, statins also have been reported to have undesirable side effects such as myotoxicity and hepatotoxicity associated with their intrinsic efficacy mechanisms. Clinical studies recurrently reported that statin therapy elevated the level of liver enzymes such as ALT and AST in patients suggesting possible liver toxicity due to statins. This observation has been drawn great attention since statins are the most prescribed drugs and statin-therapy was extended to a larger number of high-risk patients. Here we employed rat primary hepatocytes and microarray technique to understand underlying mechanism responsible for statin-induced liver toxicity on cell level. We isolated genes whose expressions were commonly modulated by statin treatments and examined their biological functions. It is of interest that those genes have function related to response to stress in particular immunity and defense in cells. Our study provided the basic information on cellular mechanism of statin-induced cytotoxicity and may serve for finding indicator genes of statin -induced toxicity in rat primary hepatocytes.
$\beta$-Glucans have been known to exhibit antitumor activities by potentiating host immunity by an unknown mechanism. The C-type lectin dectin-1, a $\beta$-glucan receptor, is found on the macrophage and can recognize various $\beta$-glucans. Previously, we demonstrated the presence of $\beta$-glucan receptor, dectin-1, on the Raw 264.7 cells as well as on murine mucosal organs, such as the thymus, the lung, and the spleen. In order to investigate immunopotentiation of innate immunity by $\beta$-glucan, we stimulated a murine macrophage Raw 264.7 cell line with $\beta$-glucans from Pleurotus ostreatus, Saccharomyces cerevisiae, and Laminaria digitata. Then, we analyzed cytokines such as tumor necrosis factor (TNF)-$\alpha$ and interleukin (IL)-6 by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). In addition we analyzed gene expression patterns in $\beta$-glucan-treated Raw 264.7 cells by applying total mRNA to cDNA microarray to investigate the expression of 7,000 known genes. When stimulated with $\beta$-glucans, the macrophage cells increased TNF-$\alpha$ expression. When co-stimulation of the cells with $\beta$-glucan and lipopolysaccharide (LPS), a synergy effect was observed by increased TNF-$\alpha$ expression. In IL-6 expression, any of the $\beta$-glucans tested could not induce IL-6 expression by itself. However, when co-stimulation occurred with $\beta$-glucan and LPS, the cells showed strong synergistic effects by increased IL-6 expression. Chip analysis showed that $\beta$-glucan of P. ostreatus increased gene expressions of immunomodulating gene families such as kinases, lectin associated genes and TNF-related genes in the macrophage cell line. Induction of TNF receptor expression by FACS analysis was synergized only when co-stimulated with $\beta$-glucan and LPS, not with $\beta$-glucan alone. From these data, $\beta$-glucan increased expressions of immunomodulating genes and showed synergistic effect with LPS.
Expression of xenobiotic-metabolizing enzymes can be altered by xenobiotics, which represents changes in the production of reactive metabolic intermediates as well as toxicities in tissues. Metabolic intermediates derived from xenobiotics are considered to produce the reactive oxygen species including drug free radicals and hydroxyl free radicals, which would be ultimately responsible for drug-induced toxicities. The effects of 1,2-benzothiazine anti-inflammatory agents on the expression of xenobiotic-metabolizing enzymes including major cytochrome P450s, microsomal epoxide hydrolase (mEH) and glutathione S-transferase (GST) were studied in the liver with the aim of providing the part of information on potential production of reactive metabolites and hepatotoxicity by the agents. The synthetic compounds 24, 36 and 39 exhibited anti-inflammatory effects in rats as assessed by the Randall-Selitto method. The anti-inflammatory effect was detected as early as at 30 min after gavaging the agents with the ED5O being noted at 80 mg/kg, which was comparable to that of ibuprofen. Treatment of rats with each compound (100 mg/kg, 3d) resulted in no significant induction in the immunochemically-detectable cytochromes P45O 1A1/2, P450 2B1/2, P45O 2 Cl1 and P45O 2El. Changes in the mEN expression were also minimal, as evidenced by both Western blot and Northern blot analyses. Hepatic GST expression was slightly increased by the agents: GST Ya protein and mRNA expression was ~1.5-fold increased after treatment with compounds 24 and 39, whereas GST Yb1/2 and Yc1/2 mRNA levels were elevated 2- to 3-fold. In summary the effects of the synthetic 1,2-benzothiazines on the expression of major P45O, mEH and G57 were not significant, providing evidence that metabolic activation of the agents, potential drug interaction and hepatotoxicity would be minimal.
We investigated the role of HDAC3 in anti-cancer drug-resistance. The expression of HDAC3 was decreased in cancer cell lines resistant to anti-cancer drugs such as celastrol and taxol. HDAC3 conferred sensitivity to these anti-cancer drugs. HDAC3 activity was necessary for conferring sensitivity to these anti-cancer drugs. The down-regulation of HDAC3 increased the expression of MDR1 and conferred resistance to anti-cancer drugs. The expression of tubulin ${\beta}3$ was increased in drug-resistant cancer cell lines. ChIP assays showed the binding of HDAC3 to the promoter sequences of tubulin ${\beta}3$ and HDAC6. HDAC6 showed an interaction with tubulin ${\beta}3$. HDAC3 had a negative regulatory role in the expression of tubulin ${\beta}3$ and HDAC6. The down-regulation of HDAC6 decreased the expression of MDR1 and tubulin ${\beta}3$, but did not affect HDAC3 expression. The down-regulation of HDAC6 conferred sensitivity to taxol. The down-regulation of tubulin ${\beta}3$ did not affect the expression of HDAC6 or MDR1. The down-regulation of tubulin ${\beta}3$ conferred sensitivity to anti-cancer drugs. Our results showed that tubulin ${\beta}3$ serves as a downstream target of HDAC3 and mediates resistance to microtubule-targeting drugs. Thus, the HDAC3-HDAC6-Tubulin ${\beta}$ axis can be employed for the development of anti-cancer drugs.
Kim, Seul-Ki;Yum, Soo-Hwan;Jo, Wol-Soon;Lee, Bok-Luel;Jeong, Min-Ho;Ha, Nam-Chul
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제18권5호
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pp.845-851
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2008
TolC is an outer membrane porin protein and an essential component of drug efflux and type-I secretion systems in Gram-negative bacteria. TolC comprises a periplasmic $\alpha$-helical barrel domain and a membrane-embedded $\beta$-barrel domain. TdeA, a functional and structural homolog of TolC, is required for toxin and drug export in the pathogenic oral bacterium Actinobacillus actinomycetemcomitans. Here, we report the expression of the periplasmic domain of TdeA as a soluble protein by substitution of the membrane-embedded domain with short linkers, which enabled us to purify the protein in the absence of detergent. We confirmed the structural integrity of the TdeA periplasmic domain by size-exclusion chromatography, circular dichroism spectroscopy, and electron microscopy, which together showed that the periplasmic domain of the TolC protein family fold correctly on its own. We further demonstrated that the periplasmic domain of TdeA interacts with peptidoglycans of the bacterial cell wall, which supports the idea that completely folded TolC family proteins traverse the peptidoglycan layer to interact with inner membrane transporters.
Choi, Sung Yoon;Kim, Byung Hwi;Huh, Beom Kang;Jeong, Woong;Park, Min;Park, Hyo Jin;Park, Ji-Ho;Heo, Chan Yeong;Choy, Young Bin
Journal of Industrial and Engineering Chemistry
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제67권
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pp.469-477
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2018
We describe surgical sutures enabled with the local, sustained delivery of a TGF-${\beta}$ inhibitory drug, tranilast. To fabricate drug-delivery sutures, we separately prepared a tranilast-loaded strand using poly (lactic-co-glycolic acid), which was then physically braided with a surgical suture already in clinical use. By this method, the drug-delivery sutures maintained the mechanical strength and allowed the modulation of drug release profiles by simply altering the tranilast-loaded strand. The drug-delivery sutures herein released tranilast for up to 14 days. When applied to animal models, scarring was indeed reduced with diminished TGF-${\beta}$ expression and fibroblast numbers during the entire 21 day testing period.
The amphetamine derivative 3, 4-methylenedioxymethamphetamine (MDMA) has become a popular recreational drug, and has also been shown to cause serotonergic neurotoxicity. This report shows that MDMA impairs brain development in a whole mouse embryo culture. The results of quantitative real-time PCR analysis showed that autophagy-related protein 5 (Atg5) expression is elevated in mouse embryo and neuroblastoma cells after MDMA treatment. This elevated Atg5 expression interferes with the neuronal differentiation of neuroblastoma cells such as SH-SY5Y and PC12 cells. Thus, our results suggest that the use of MDMA during pregnancy may impair neuronal development via an induction of Atg5 expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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