We have previously shown that microRNAs (miRNAs) miR-760, miR-186, miR-337-3p, and miR-216b stimulate premature senescence through protein kinase CK2 (CK2) downregulation in human colon cancer cells. Here, we examined whether these four miRNAs are involved in the replicative senescence of human lung fibroblast IMR-90 cells. miR-760 and miR-186 were significantly upregulated in replicatively senescent IMR-90 cells, and their joint action with both miR-337-3p and miR-216b was necessary for efficient downregulation of the ${\alpha}$ subunit of CK2 ($CK2{\alpha}$) in IMR-90 cells. A mutation in any of the four miRNA-binding sequences within the $CK2{\alpha}3^{\prime}$-untranslated region (UTR) indicated that all four miRNAs should simultaneously bind to the target sites for $CK2{\alpha}$ downregulation. The four miRNAs increased senescence-associated ${\beta}$-galactosidase (SA-${\beta}$-gal) staining, p53 and $p21^{Cip1/WAF1}$ expression, and reactive oxygen species (ROS) production in proliferating IMR-90 cells. $CK2{\alpha}$ overexpression almost abolished this event. Taken together, the present results suggest that the upregulation of miR-760 and miR-186 is associated with replicative senescence in human lung fibroblast cells, and their cooperative action with miR-337-3p and miR-216b may induce replicative senescence through $CK2{\alpha}$ downregulation-dependent ROS generation.
Mannosylerythritol lipids (MELs) are glycolipids and have several pharmacological efficacies. MELs also show skin-moisturizing efficacy through a yet-unknown underlying mechanism. Aquaporin-3 (AQP3) is a membrane protein that contributes to the water homeostasis of the epidermis, and decreased AQP3 expression following ultraviolet (UV)-irradiation of the skin is associated with reduced skin moisture. No previous study has examined whether the skin-moisturizing effect of MELs might act through the modulation of AQP3 expression. Here, we report for the first time that MELs ameliorate the UVA-induced downregulation of AQP3 in cultured human epidermal keratinocytes (HaCaT keratinocytes). Our results revealed that UVA irradiation decreases AQP3 expression at the protein and messenger RNA (mRNA) levels, but that MEL treatment significantly ameliorated these effects. Our mitogen-activated protein kinase inhibitor analysis revealed that phosphorylation of c-Jun N-terminal kinase (JNK), but not extracellular signal-regulated kinase or p38, mediates UVA-induced AQP3 downregulation, and that MEL treatment significantly suppressed the UVA-induced phosphorylation of JNK. To explore a possible mechanism, we tested whether MELs could regulate the expression of peroxidase proliferator-activated receptor gamma ($PPAR-{\gamma}$), which acts as a potent transcription factor for AQP3 expression. Interestingly, UVA irradiation significantly inhibited the mRNA expression of $PPAR-{\gamma}$ in HaCaT keratinocytes, whereas a JNK inhibitor and MELs significantly rescued this effect. Taken together, these findings suggest that MELs ameliorate UVA-induced AQP3 downregulation in HaCaT keratinocytes by suppressing JNK activation to block the decrease of $PPAR-{\gamma}$. Collectively, our findings suggest that MELs can be used as a potential ingredient that modulates AQP3 expression to improve skin moisturization following UVA irradiation-induced damage.
Lymphoma is one of the most curable types of cancer. However, drug resistance is the main challenge faced in lymphoma treatment. Peroxisomal acyl-CoA oxidase 1 (ACOX1) is the rate-limiting enzyme in fatty acid ${\beta}$-oxidation. Deregulation of ACOX1 has been linked to peroxisomal disorders and carcinogenesis in the liver. Currently, there is no information about the function of ACOX1 in lymphoma. In this study, we found that upregulation of ACOX1 promoted proliferation in lymphoma cells, while downregulation of ACOX1 inhibited proliferation and induced apoptosis. Additionally, overexpression of ACOX1 increased resistance to doxorubicin, while suppression of ACOX1 expression markedly potentiated doxorubicin-induced apoptosis. Interestingly, downregulation of ACOX1 promoted mitochondrial location of Bad, reduced mitochondrial membrane potential and provoked apoptosis by activating caspase-9 and caspase-3 related apoptotic pathway. Overexpression of ACOX1 alleviated doxorubicin-induced activation of caspase-9 and caspase-3 and decrease of mitochondrial membrane potential. Importantly, downregulation of ACOX1 increased p73, but not p53, expression. p73 expression was critical for apoptosis induction induced by ACOX1 downregulation. Also, overexpression of ACOX1 significantly reduced stability of p73 protein thereby reducing p73 expression. Thus, our study indicated that suppression of ACOX1 could be a novel and effective approach for treatment of lymphoma.
Microtubule acetylation has been shown to regulate actin filament dynamics by modulating signaling pathways that control actin organization, although the precise mechanisms remain unknown. In this study, we found that the downregulation of microtubule acetylation via the disruption ATAT1 (which encodes α-tubulin N-acetyltransferase 1) inhibited the expression of RhoA, a small GTPase involved in regulating the organization of actin filaments and the formation of stress fibers. Analysis of RHOA promoter and chromatin immunoprecipitation assays revealed that C/EBPβ is a major regulator of RHOA expression. Interestingly, the majority of C/EBPβ in ATAT1 knockout (KO) cells was found in the nucleus as a 27-kDa fragment (referred to as C/EBPβp27) lacking the N-terminus of C/EBPβ. Overexpression of a gene encoding a C/EBPβp27-mimicking protein via an N-terminal deletion in C/EBPβ led to competitive binding with wild-type C/EBPβ at the C/EBPβ binding site in the RHOA promoter, resulting in a significant decrease of RHOA expression. We also found that cathepsin L (CTSL), which is overexpressed in ATAT1 KO cells, is responsible for C/EBPβp27 formation in the nucleus. Treatment with a CTSL inhibitor led to the restoration of RHOA expression by downregulation of C/EBPβp27 and the invasive ability of ATAT1 KO MDA-MB-231 breast cancer cells. Collectively, our findings suggest that the downregulation of microtubule acetylation associated with ATAT1 deficiency suppresses RHOA expression by forming C/EBPβp27 in the nucleus through CTSL. We propose that CTSL and C/EBPβp27 may represent a novel therapeutic target for breast cancer treatment.
Silymarin from milk thistle (Silybum marianum) has been reported to show an anti-cancer activity. In previous study, we reported that silymarin induces cyclin D1 proteasomal degradation through NF-${\kappa}B$-mediated threonine-286 phosphorylation. However, mechanism for the inhibition of Wnt signaling by silymarin still remains unanswered. Thus, we investigated whether silymarin affects Wnt signaling in human colorectal cancer cells to elucidate the additional anti-cancer mechanism of silymarin. Transient transfection with a TOP and FOP FLASH luciferase construct indicated that silymarin suppressed the transcriptional activity of ${\beta}$-catenin/TCF. Silymarin treatment resulted in a decrease of intracellular ${\beta}$-catenin protein but not mRNA. The inhibition of proteasome by MG132 and $GSK3{\beta}$ inhibition by SB216763 blocked silymarin-mediated downregulation of ${\beta}$-catenin. In addition, silymarin increased phosphorylation of ${\beta}$-catenin and a point mutation of S33Y attenuated silymarin-mediated ${\beta}$-catenin downregulation. In addition, silymarin decreased TCF4 and increased Axin expression in both protein and mRNA level. From these results, we suggest that silymarin-mediated downregulation of ${\beta}$-catenin and TCF4 may result in the inhibition of Wnt signaling in human colorectal cancer cells.
Costa, Ana S.M.B.;Thomas, D. John I.;Eastwood, Daniel;Cutler, Simon B.;Bailey, Andy M.;Foster, Gary D.;Mills, Peter R.;Challen, Michael P.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.3
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pp.271-276
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2009
Functional gene studies in the cultivated white button mushroom Agaricus bisporus have been constrained by the absence of effective gene-silencing tools. Using two endogenous genes from A. bisporus, we have tested the utility of dsRNA hairpin constructs to mediate downregulation of specific genes. Hairpin constructs for genes encoding orotidine 5'-monophosphate decarboxylase (URA3) and carboxin resistance (CBX) were introduced into A. bisporus using Agrobacteriummediated transfection. Although predicted changes in phenotype were not observed in vitro, quantitative-PCR analyses indicated unambiguously that transcripts in several transformants were substantially reduced compared with the non-transformed controls. Interestingly, some hairpin transformants exhibited increased transcription of target genes. Our observations show that hairpin transgenic sequences can mediate downregulation of A. bisporus endogenous genes and that the technology has the potential to expedite functional genomics of the mushroom.
N-nitroso-N-methylurea (NMU) and N-nitroso-N-ethylurea (NEU), direct alkylating chemical mutagens and carcinogens, are shown to be the upregulators of cellular $NF-{\kappa}B$, regulating various genes that mediate tumorigenesis and carcinogenesis. Nitric oxide (NO), a toxic reactive radical gas, has been known to induce programmed cell death or apoptosis in various cells. Therefore, the assessment of NO production was examined to elucidate the possible contribution of NO release to the chemical carcinogenic potency of NMU and NEU in human skin cells. NMU and NEU did not alter the NO production, but they caused a significant downregulation of the NO generation on lipopolysaccharide (LPS)-induced NO production at concentrations ranging from $2{\sim}5{\mu}M$. The degree of downregulation of NO by NMU and NEU decreased up to 15% and 20%, respectively, compared to the control. These results demonstrate that the LPS-inducible keratinocytes NO synthase is involved in modulating carcinogenic potency by NMU and NEU, and the regulation of the cellular $NF-{\kappa}B$ activity by NMU and NEU is negatively correlated with the level of LPS-induced NO production in human skin cells. The findings of this study suggest the hypothesis that NMU and NEU-induced carcinogenesis may be associated with the downregulation of NO production, and the inducible NO may play an important role in NMU and NEU-induced carcinogenicity in human epidermal keratinocytes.
Purpose: DBC2 (Deleted in Breast Cancer 2) has been indicated to be a tumor suppressor gene in many cancers including lung adenocarcinoma recently. In this study, we aimed to explore the expression status of DBC2 in different subtypes of lung adenocarcinoma (from pre-invasive to invasive lesions), and to determine if downregulation becomes more marked with pathological progression. Methods: We collected 172 tissue samples from different subtypes of lung adenocarcinoma and investigated the frequency of DBC2 loss by immunohistochemistry. Results: Our results indicated that DBC2 downregulation is a relatively frequent event in lung adenocarcinoma. Moreover, as the adenocarcinoma subtype turns to be more invasive, more downregulation occurred. Conclusion: We conclude that loss of DBC2 expression is an early and progressive event in the pathogenesis of lung adenocarcinoma. Positive DBC2 immunohistochemistry may become an indicator for early stage disease and better prognosis of lung adenocarcinomas.
Non-small-cell lung cancer (NSCLC) is commonly caused by a mutation in the epidermal growth factor receptor (EGFR) and subsequent aberrant EGFR signaling with uncontrolled kinase activity. A deletion mutation in EGFR exon 19 is frequently observed in EGFR gene mutations. We designed a DNAzyme to suppress the expression of mutant EGFR by cleaving the mutant EGFR mRNA. The DNAzyme (named Ex19del Dz) specifically cleaved target RNA and decreased cancer cell viability when transfected into gefitinib-resistant lung cancer cells harboring EGFR exon 19 deletions. The DNAzyme decreased EGFR expression and inhibited its downstream signaling pathway. In addition to EGFR downregulation, Ex19del Dz containing CpG sites activated Toll-like receptor 9 (TLR9) and its downstream signaling pathway via p38 kinase, causing an immunostimulatory effect on EGFR-mutated NSCLC cells. Thus, dual effects of this DNAzyme harboring the CpG site, such as TLR9 activation and EGFR downregulation, leads to apoptosis of EGFR-mutated NSCLC cells.
Oxidative stress-induced melanocyte apoptosis is linked to the immune system and plays a critical role in the pathogenesis of vitiligo. Aquaporin-3 (AQP3), which is downregulated in vitiligo keratinocytes, regulates intracellular H2O2 accumulation. However, the role of AQP3 in oxidative stress is uncertain in vitiligo. This study investigated the effect of downregulated AQP3 on oxidative stress in vitiligo using lesional and non-lesional skin specimen sets from vitiligo patients and primary cultured adult normal human epidermal keratinocytes, with or without downregulation and overexpression of AQP3 in the presence or absence of H2O2 treatment. The levels of nuclear factor E2-related factor 2 (NRF2) and/or its main target, NAD(P)H quinone dehydrogenase 1 (NQO-1), were lower in the lesional keratinocytes and cultured keratinocytes with AQP3 knockdown, but were increased in keratinocytes upon AQP3 overexpression. Ratios of NRF2 nuclear translocation and NQO-1 expression levels were further reduced in AQP3-knockdown keratinocytes following H2O2 treatment. The conditioned media from AQP3-knockdown keratinocytes treated with H2O2 contained higher concentrations of reactive oxygen species (ROS). Moreover, the number of viable melanocytes was reduced when the conditioned media were added to the culture media. Overall, AQP3 downregulation in the keratinocytes of patients with vitiligo can induce oxidative stress in neighboring melanocytes, leading to melanocyte death.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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