Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein A2/B1 (hnRNPA2/B1) is an N6-methyladenosine (m6A) RNA modification regulator and a key determinant of prem-RNA processing, mRNA metabolism and transportation in cells. Currently, m6A reader proteins such as hnRNPA2/B1 and YTHDF2 has functional roles in mice embryo. However, the role of hnRNPA2/B1 in porcine embryogenic development are unclear. Here, we investigated the developmental competence and mRNA expression levels in porcine parthenogenetic embryos after hnRNPA2/B1 knock-down. HhnRNPA2/B1 was localized in the nucleus during subsequent embryonic development since zygote stage. After hnRNPA2/B1 knock-down using double stranded RNA injection, blastocyst formation rate decreased than that in the control group. Moreover, hnRNPA2/B1 knock-down embryos show developmental delay after compaction. In blastocyste stage, total cell number was decreased. Interestingly, gene expression patterns revealed that transcription of Pou5f1, Sox2, TRFP2C, Cdx2 and PARD6B decreased without changing the junction protein, ZO1, OCLN, and CDH1. Thus, hnRNPA2/B1 is necessary for porcine early embryo development by regulating gene expression through epigenetic RNA modification.
RNA interference (RNAi) is a process of sequence-specific gene silencing, which is initiated by double-stranded RNA (dsRNA). RNAi may also serve as an antiviral system in vertebrates. This study describes the inhibition of herpesvirus-6B (HHV-6B) replication by short interference RNAs (siRNAs) that are targeted to the U38 sequence that encodes DNA polymerase. When virus-infected SupT1 cells were treated by siRNA, these cells blocked the cytopathic effect (CPE) and detected the HHV-6B antibody-negative in indirect immunofluorescence assays (IFA). Our result suggests that RNAi can efficiently block Herpesvirus-6B replication.
RNA interference (RNAi) was performed on several essential genes in the pinewood nematode Bursaphelenchus xylophilus, which causes pine wilt disease. Double-stranded RNA (dsRNA) was delivered to larvae or adult worms by soaking, electroporation, or microinjection. Soaking and electroporation of L2-L3 stage worms in solutions containing dsRNA for essential genes induced over 25% lethality after 5 days, and gene-specific phenotypes were observed. This lethality agreed with significant reductions of the targeted transcripts, as assayed by reverse-transcription coupled with real time PCR. Microinjection was the most efficient route as measured by the hatching rate of F1 embryos, which was reduced by 46%. When adult worms were soaked in dsRNA, lethality was induced in the F1 larvae, revealing the persistence of knockdown phenotypes. The penetrance of the RNAi phenotypes for essential genes was relatively low but consistent, indicating that RNAi should be useful for studying the in vivo functions of B. xylophilus gene products.
A double-stranded RNA (dsRNA) mycovirus was detected in malformed fruiting bodies of Pleurotus ostreatus strain ASI2792, one of bottle cultivated commercial strains of the edible oyster mushroom. The partial RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) gene of the P. ostreatus ASI2792 mycovirus (PoV-ASI2792) was cloned, and a cDNA sequences alignment revealed that the sequence was identical to the RdRp gene of a known PoSV found in the P. ostreatus strain. To investigate the symptoms of PoV-ASI2792 infection by comparing the isogenic virus-free P. ostreatus strains with a virus-infected strain, isogenic virus-cured P. ostreatus strains were obtained by the mycelial fragmentation method for virus curing. The absence of virus was verified with gel electrophoresis after dsRNA-specific virus purification and Northern blot analysis using a partial RdRp cDNA of PoV-ASI2792. The growth rate and mycelial dry weight of virus-infected P. ostreatus strain with PoV-ASI2792 mycovirus were compared to those of three virus-free isogenic strains on 10 different media. The virus-cured strains showed distinctly higher mycelial growth rates and dry weights on all kinds of experimental culture media, with at least a 2.2-fold higher mycelial growth rate on mushroom complete media (MCM) and Hamada media, and a 2.7-fold higher mycelial dry weight on MCM and yeast-malt-glucose agar media than those of the virus-infected strain. These results suggest that the infection of PoV mycovirus has a deleterious effect on the vegetative growth of P. ostreatus.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.79.1-79
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2003
Two pathogen-induced hot pepper transcription factors (CaNACl and CapIfl) were introduced into‘MicroTom’tomato by Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. We used to nptII containing kanamycin resistance gene as a selection marker. Both transformed and non-transformed plants were transferred to pot after rooting test in vitro. To approximate the levels of caNACl transcript in leaves of wild-type and transgenic plants, RNA blots were hybridized with double-stranded full-length CaNACl probe at moderate stringency, Although the relative signal strength for hybridization fluctuated among the samples on different blots, transgenic plant lines N-1, N-2 and N-3 consistently displayed increased levels of CaNACl transcript relative to other transgenic lines and wild-type plants. Of all the transgenic lines examined, line N-7 had the least amount of CaNACl transcript. Role of these transcription factors in pathogen defense will be examined by overexpression in tomato.
A double - stranded cDNA fragment (436bp) encoding coat protein of tobacco mosaic virus(TMV) was derived from the total 480nucleotides gene after reverse transcription of TMV RNA, and subclorled into a plant expression vector pBl 121, resulting in pBL 430. The plasmid DNA containing this chimeric gene was moved from E. cofi to Agrobacterium tumefaciens strain A28l, and was introduced in시 the tobacco plant by the Agrobocterium Ti - mediated transformtion system. The transformants were selected on a selection media containing kanamycin. The shoots add roots could be differentiated from the explants and whole plants were obtained. From Southern blot hybridization analysis, DNA extracted from transformants, it could be conformed that the chimeric gene fragment was inserted into the genomic DNA of tobacco plant.
The larger segment of double stranded RNA genome from a new serotype of Infectious Pancreatic Necrosis Virus (IPNV), DRT, has been partially cloned at Sma I site in pUC19 and compared with the restriction maps of VR-299 and Sp. Restrction sites found in DRT was distinct and hence a new serotype. The cDNA clones of DRT were about 800, 850, and 1, 400 bp long each and do not share any common restiction site. It is not clear yet if there exist any overlapping sequences among them. This partial cloning, however, was sufficient for the comparison of restriction maps with the other serotypes.
Kim, Hyun-Ran;Lee, Sin-Ho;Kim, Jae-Hyun;Yoon, Gum-Ook;Kim, Jeong-Soo
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.138.2-139
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2003
Grapevine leafroll-associated 1 virus (GLRaV-1) and Grapevine leafroll-associated 3 virus (GLRaV-3), member of the genus Ampelovirus, are important viral disease of grapevine in the world. these viruses transmitted only dicotyledonous host by vectors such as mealybugs and there is no suitable herbaceous host for virus. The diseased leaves turn yellowish or reddish depending on cultivars and viruses. Viruses are existed at low concentration and ununiformly distribution in grapevine. Using small-scale double-stranded RNA (dsRNA) extraction method, reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) product of 1Kb long which encoded of coat protein (CP) gene for both viruses was successfully amplified with a specific primers. The RT-PCR product was cloned into the plasmid vector and its nucleotide sequences were determined from selected recombinant cDNA clones. Sequence analysis revealed that the CP of GLRaV-1 consisted of 969 nucleotide, which encoded 323 amino acid residues and CP of GLRaV-3 consisted of 942 nucleotide, which encoded 314 amino acid residues. The CP of GLRaV-1 and GLRaV-3 has 93.8% and 98.7% amino acid sequence identities, respectively.
Peyambari, Mahtab;Habibi, Mina Koohi;Fotouhifar, Khalil-Berdi;Dizadji, Akbar;Roossinck, Marilyn J.
The Plant Pathology Journal
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v.30
no.2
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pp.151-158
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2014
Three double-stranded RNAs (dsRNAs), approximately 1.85, 1.65 and 1.27 kb in size, were detected in an isolate of Cytospora sacchari from Iran. Partial nucleotide sequence revealed a 1,284 bp segment containing one ORF that potentially encodes a 405 aa protein. This protein contains conserved motifs related to RNA dependent RNA polymerases (RdRp) that showed similarity to RdRps of partitiviruses. The results indicate that these dsRNAs represent a novel Partitivirus that we tentatively designate Cytospora sacchari partitivirus (CsPV). Treatment of the fungal strain by cyclohexamide and also hyphal tip culture had no effect on removing the putative virus. Phylogenetic analysis of putative RdRp of CsPV and other partitiviruses places CsPV as a member of the genus Partitivirus in the family Partitiviridae, and clustering with Aspergillus ochraceous virus 1.
As a provirus, polydnavirus has a segmented DNA genome on chromosome(s) of host wasp. It contains several genes in each segment that presumably play critical roles in regulating physiological processes of target insect parasitized by the wasp. A cysteine-rich protein 1 (CRP1) is present in the polydnavirus Cotesia plutellae bracovirus (CpBV) genome, but its expression and physiological function in Plutella xylostella parasitized by the viral host C. plutellae is not known. This CpBV-CRP1 encoding 189 amino acids with a putative signal peptide (20 residues) was persistently expressed in parasitized P. xylostella with gradual decrease at the late parasitization period. Expression of CpBV-CRP1 was tissue-specific in the fat body/epidermis and hemocyte, but not in the gut. Its physiological function was analyzed by inducing transient expression of a CpBV segment containing CpBV-CRP1 and its promoter, which caused significant reduction in hemocyte -spreading and delayed larval development. When the treated larvae were co-injected with double-stranded RNA of CpBV-CRP1, the expression of CpBV-CRP1 disappeared, whereas other genes encoded in the CpBV segment was expressed. These co-injected larvae significantly recovered the hemocyte-spreading capacity and larval development rate. This study reports that CpBV-CRP1 is expressed in P. xylostella parasitized by C. plutellae and its physiological function is to alter the host immune and developmental processes.
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