Kim, Ji-Hun;Yi, Jong-Jae;Won, Hyung-Sik;Son, Woo Sung
한국자기공명학회논문지
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제22권4호
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pp.139-143
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2018
Short antimicrobial peptide, A4W, have been studied by molecular dynamics (MD) simulation in an explicit dodecylphosphocholine (DPC) micelle. Peptide was aligned with DPC micelle and transferred new peptide-micelle coordinates within the same solvent box using specific micelle topology parameters. After initial energy minimization and equilibration, the conformation and orientation of the peptide were analyzed from trajectories obtained from the RMD (restrained molecular dynamics) or the subsequent free MD. Also, the information of solvation in the backbone and the side chain of the peptide, hydrogen bonding, and the properties of the dynamics were obtained. The results showed that the backbone residues of peptide are either solvated using water or in other case, they relate to hydrogen bonding. These properties could be a critical factor against the insertion mode of interaction. Most of the peptide-micelle interactions come from the hydrophobic interaction between the side chains of peptide and the structural interior of micelle system. The interaction of peptide-micelle, electrostatic potential and hydrogen bonding, between the terminal residues of peptide and the headgroups in micelle were observed. These interactions could be effect on the structure and flexibility of the peptide terminus.
The temperature dependence of the partition coefficients of a neuropeptide, substance P (SP), in isotropic acidic bicelles was investigated by using a pulsed field gradient nuclear magnetic resonance diffusion technique. The addition of negatively charged dimyristoylphosphatidylserine to the neutral bicelle changed the SP partitioning a little, which implies that the hydrophobic interaction between the hydrophobic residues of SP and the acyl chains of lipid molecules is the major interaction while the electrostatic interaction is minor in SP binding in a lipid membrane. From the temperature dependence of the partition coefficients, thermodynamic functions were calculated. The partitioning of SP into the acidic bicelles is enthalpy-driven, as it is for small unilamellar vesicles and dodecylphosphocholine micelles, while peptide partitioning into a large unilamellar vesicle is entropy-driven. This may mean that the size of lipid membranes is a more important factor for peptide binding than the surface curvature and surface charge density.
A linear undecapeptide, Substance P (SP) is involved in a wide variety of physiological processes such as pain, inflammation, salivation, and hypertension. Tertiary structure of SP in dodecylphosphocholine (DPC) micelles has been investigated by CD, NMR spectroscopy, and DGII calculation. CD spectrum of SP in the presence of 7.5 mM DPC micelles does not show any favorable secondary structure. The tertiary structure determined by NMR spectroscopy and DGII calculation shows that the Phe7-Phr8-Gly9-Leu10 region adopts a turn structure, while the N-terminal region is quite flexible. Both prolines in SP exist preferentially as the trans isoforms and the aromatic ring of Phe7 protrudes outward. Conformation of SP may be restrained by the contact of the Phe7 aromatic ring with the hydrophobic side chains of the DPC micelles and this interaction induces a turn structure. Structure of SP in aqueous solution in the presence of DPC micelles can represent a good model to study the conformation recognized by the receptor near neutral membrane.
Refinement of NMR structures by molecular dynamics (MD) simulations with a solvent model has improved the structural quality. In this study, we applied MD refinement with the generalized Born (GB) implicit solvent model to protein structure determined under membrane-like environments. Despite popularity of the GB model, its applications to the refinement of NMR structures of hydrophobic proteins, in which detergents or organic solvents enclose proteins, are limited, and there is little information on the use of another GB parameter for these cases. We carried out MD refinement of crambin NMR structure in dodecylphosphocholine (DPC) micelles (Ahn et al., J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 4398-4404) with GB/Surface area model and two different surface tension coefficients, one for aquatic and the other for hydrophobic conditions. Our data show that, of two structures by MD refinement with GB model, the one refined with the parameter to consider hydrophobic condition had the better qualities in terms of precision and solvent accessibility.
Water-soluble mutant of intrinsically insoluble protein, crambin, was produced by mutagenesis based on the sequence analysis with homologous proteins. Thr1, Phe13, and Lys33 of crambin were substituted for Lys, Tyr, and Lys, respectively. The resultant mutant was soluble in aqueous buffer as well as in dodecylphosphocholine (DPC) micelle solution. The $^1H-^{15}N$ spectrum of the mutant crambin showed spectral similarity to that of the wild-type protein except for local regions proximal to the sites of mutation. Solution structure of water-soluble mutant crambin was determined in aqueous buffer by NMR spectroscopy. The structure was almost identical to the wild-type structure determined in non-aqueous solvent. Subtle difference in structure was very local and related to the change of the intra- and inter-protein hydrophobic interaction of crambin. The structural details for the enhanced solubility of crambin in aqueous solvent by the mutation were provided and discussed.
The conformation of a neuropeptide, substance P (SP), in isotropic (q = 0.5) acidic bicelles was investigated using two-dimensional NMR techniques. By the nuclear Overhauser effect (NOE) cross peaks between SP and long-chain lipid molecules SP was probed to bind on the flat surface of the disc-like bicelles. Structural analysis of NMR data indicated that the helical conformation of SP extended to the C-terminal region of Leu10 as well as in the mid-region from Pro4 to Phe8. As compared with the conformations of SP bound on the sodium dodecylsulfate (SDS) or the dodecylphosphocholine (DPC) micelles with curved surfaces, the surface curvature of the membrane mimics was found to be one of the major factors inducing the biologically relevant conformation of SP. The negative surface charge of the membrane is also a key factor inducing both the binding of SP on the membrane and its biologically active structure.
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