In order to understand the biological role of calmodulin in plants, transgenic plants expressing a mutant calmodulin (VU-4, Iys to ile-115) have been analyzed. We found that tobacco plants expressing VU-4 calmodulin have approximately twofold higher $\gamma$-aminobutyric acid (GABA) levels than the control plants. Cell suspension cultures established from the stem explants of the transgenic tobacco seedlings also have higher levels of GABA than the control cell cultures. Specific activity of glutamate decarboxylase (GAD), which catalyzes the decarboxylation of glutamate to $CO_2$ and GABA, of the transgenic tobacco cell extracts was about twofold higher than the activity of the control cell extracts. Western-blot analysis showed that the GAD is highly expressed in the transgenic tobacco plants. GAD partially purified from tobacco cell extracts showed approximately threefold $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent activation. These data suggest that GABA synthesis in the transgenic tobacco plants is elevated, possibly due to higher levels of the calmodulin-dependent GAD enzyme and/or as a result of enhanced activation due to increased levels of the foreign calmodulin.
This experiment was conducted to observe the changes of composition of atmosphere in storage room by controlled ventilation under normal and sub-atmospheric conditions, and the biochemical changes in apple texture under these conditions. The results were as follows; 1) By controlled ventilation, concentration of carbon dioxide in storage room was optionally regulated and constantly maintained. 2) Among compositions of internal atmosphere of apple, especially, concentration of ethylene was much decreased at apple stored under sub-atmospheric condition than that stored under normal atmospheric condition. 3) Acidity of apple stored under sub-atmospheric condition was much greater than that of apple stored under normal atmospheric condition. 4) Respiratory quotients of apple, which was stored under normal and sub-atmospheric conditions, were shown to be high. But decarboxylation of added pyruvate was found more active in slices prepared from apple stored under sub-atmospheric condition.
Hydrothermal reactions of $Ln(NO_3)_3{\cdot}5H_2O $ (Ln = Eu (1), Sm (2), Ho (3), Dy (4)) with 3,5-pyridinedicarboxylic acid (3,5-pdcH2) in the presence of 4,4'-bipyridine led to the formation of the 3-D Ln(III)-coordination polymers with a formula unit of $[Ln_2(3,5-pdc)_2(C_2O_4)(H_2O)_4]{\cdot}2H_2O$. These polymers contain a bridging oxalate ligand ($C_2O_4\;^2$). On the basis of GCMS study of the mother liquor remaining after the reaction, we proposed that the $C_2O_4\;^2$ formation proceeds in three steps: (1) Ln(III)-mediated decarboxylation of $3,5-pdcH_2$ to give $CO_2$, (2) the reduction of $CO_2$ to $CO_2\;^{\cdot}$ by the Ln(II) species, and (3) the reductive coupling of the two $CO_2\;^{\cdot}$ radicals to the oxalate ($C_2O_4\;^2$) ion. All polymers were structurally characterized by X-ray diffraction.
Hydroxybenzoic acids are the most important intermediates in the degradative pathways of various aromatic compounds. Microorganisms catabolize aromatic compounds by converting them to hydroxylated intermediates and then cleave the benzene nucleus with ring dioxygenases. Hydroxylation of the benzene nucleus of an aromatic compound is an essential step for the initiation and subsequent disintegration of the benzene ring. The incorporation of two hydroxyl groups is essential for the labilization of the benzene nucleus. Monohydroxybenzoic acids such as 2-hydroxybenzoic acid, 3-hydroxybenzoic acid, and 4-hydrosybenzoic acid, opr pyrocattechuic acid that are susceptible for subsequent oxygenative cleavage of the benzene ring. These terminal aromatic intermediates are further degraded to cellular components through ortho-and/or meta-cleavage pathways and finally lead to the formation of constituents of the TCA cycle. Many groups of microorganisms have been isolated as degraders of hydroxybenzoic acids with diverse drgradative routes and specific enzymes involved in their metabolic pahtway. Various microorganisms carry out unusual non-oxidative decarboxylation of aromatic acids and convert them to respective phenols which have been documented. Futher, Pseudomonas and Bacillus spp. are the most ubiquitous microorganisms, being the principal components of microflora of most soil and water enviroments.
Somasundaram, Sivachandiran;Maruthamuthu, Murali Kannan;Ganesh, Irisappan;Eom, Gyeong Tae;Hong, Soon Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제27권9호
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pp.1664-1669
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2017
Gamma-aminobutyric acid is a precursor of nylon-4, which is a promising heat-resistant biopolymer. GABA can be produced from the decarboxylation of glutamate by glutamate decarboxylase. In this study, a synthetic scaffold complex strategy was employed involving the Neurospora crassa glutamate decarboxylase (GadB) and Escherichia coli GABA antiporter (GadC) to improve GABA production. To construct the complex, the SH3 domain was attached to the N. crassa GadB, and the SH3 ligand was attached to the N-terminus, middle, and C-terminus of E. coli GadC. In the C-terminus model, 5.8 g/l of GABA concentration was obtained from 10 g/l glutamate. When a competing pathway engineered strain was used, the final GABA concentration was further increased to 5.94 g/l, which corresponds to 97.5% of GABA yield. With the introduction of the scaffold complex, the GABA productivity increased by 2.9 folds during the initial culture period.
Andreoni, Francesca;Mastrogiacomo, Anna Rita;Serafini, Giordano;Carancini, Gionmattia;Magnani, Mauro
한국미생물·생명공학회지
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제47권1호
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pp.139-147
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2019
Glutamate decarboxylase catalyzes the conversion of glutamate to gamma-aminobutyric acid (GABA), contributing to pH homeostasis through proton consumption. The reaction is the first step toward the GABA shunt. To date, the enzymes involved in the glutamate metabolism of Photobacterium damselae subsp. piscicida have not been elucidated. In this study, an open reading frame of P. damselae subsp. piscicida, showing homology to the glutamate decarboxylase or putative pyridoxal-dependent aspartate 1-decarboxylase genes, was isolated and cloned into an expression vector to produce the recombinant enzyme. Preliminary gas chromatography-mass spectrometry characterization of the purified recombinant enzyme revealed that it catalyzed not only the decarboxylation of glutamate but also the transamination of GABA. This enzyme of P. damselae subsp. piscicida could be bifunctional, combining decarboxylase and transaminase activities in a single polypeptide chain.
The pyruvate dehydrogenase complex (PDC) catalyzes the oxidative decarboxylation of pyruvate with the formation of $CO_2$, acetyl-CoA, NADH, and H+. This complex contains multiple copies of three catalytic components including pyruvate dehydrogenase(E1), dihydrolipoamide acetyltransferase(E2), and dihydrolipoamide dehydrogenase (E3). Two regulatory components (E1-kinase and phospho-E1 phosphatase) and functionally less-understood protein (protein X, E3BP) are also involved in the formation of the complex. In this study, cloning and characterization of a gene for human E3BP have been carried out. A cDNA encoding the human E3BP was isolated by database search and cDNA library screening. The primary structure of E3BP has some similar characteristics with that of E2 in the lipoyl domain and the carboxyl-terminal domain, based on the nucleotide sequence and the deduced amino acid sequence. However, the conserved amino acid moiety including the histidine residue for acetyltransferase activity in E2 is not conserved in the case of human E3BP. The human E3BP was expressed and purified in E. coli. The molecular weight of the protein, excluding the mitochondrial target sequence, was about 50 kDa as determined by SDS-PAGE. Cloning of human E3BP and expression of the recombinant E3BP will facilitate the understanding of the role(s) of E3BP in mammalian PDC.
PVC 핏치를 산소분위기에서 안정화시킬 때 발생되는 화학반응 기구를 열중량 분석 및 FT-IR을 이용하여 규명하였다. PVC 핏치를 안정화시킬 \ulcorner 초기에 가속화현상이 이러나서 핏치내에 반응성이 강한 메칠기(-CH/ sub 3/)나 메칠렌기(-CH$_{2}$-)등이 산소와 반응하여 카보닐기(C=O)를 생성하면서 급격한 무게증가 현상이 발생하였다. 이때의 생성물들은 알데히드(aldehyde), 케톤(ketone), 알코올(alcohol)이며, 물 (H$_{2}$O)이 부산물로 발생된다. 이 가속화 현상에 의해 핏치내의 메칠기와 메칠렌기는 안정화 초기단계에서 대부분 산화되어 없어졌다. 안정화시간이 길어짐에 따라 생성된 알데히드나 일차 알코올의 산화가 발생하여 카르복실산(carboxylic acid)을 생성하고, 에테르 결합도 생성되었다. 이때에도 무게증가 현상이 발생하지만, 초기의 급격한 무게증가와는 달리 그 증가속도가 느리고, 시간이 경과함에 따라 증가속도는 더욱 느려졌다. 그리고, 안정화온도가 높고 안정화시간이 긴경우에는,카르복실산들의 탈수반응으로 인한 방향족 무수화물(aromatic anhydride)이 생성되었다. 29$0^{\circ}C$에서 24시간 안정화시킨 경우, 무게감소가 발생했는데, 이것은 카르복실산의 탈카르복실화(decarboxylation)반응에 의해 CO$_{2}$가 발생되었기 때문이다. 그리고, 안정화 온도가 높을수록 안정화에 무게증가의 최대값과 방향족 무수화물이 발생되는 무게증가 값이 작아지고, 안정화 초기단계에서 나타나는 가속화 현상의 구간도 짧아졌다.
Mammalian pyruvate dehydrogenase complex(PDC) enzyme consists of multiple oopies of three major oligomeric enzymes-El, E2 E3. And protein X is one of the enzymatic constituents which is tightly bound to E2 subunit This complex enzyme is responsible for the oxidative decarboxylation of pyruvate producing of acetyl CoA which is a key intermediate for the entry of carbohydrates into the TCA cycle for its complete metabolic conversion to CO$_2$. And the overall activity of the complex enzyme is regulated via covalent nodification of El subunit by a El specific phosphatase ad kinase. Protein X has lipoyl moiety that undergoes reduction and acetylation during ezymatic reaction and has been known h be involved in the binding of E3 subunit to E2 core and in the regulatory activity of kinase. The purification of protein X has not been achieved majorly because of its tight binding to E2 subunit The E2-protein X subcomplex was obtained by the established methods and the detachment of protein X from E2 was accomplished in the 0.1M borate buffer containing 150mM NaCl. During the storage of the subcomplex in frozen state at -70$^{\circ}C$, the E2 subunit was precipitated and the dissociated protein X was obtained by cntrifegation into the supernatant The verification of protein X was accomplished by (1)the migration on SDS-PAGE, (2)acetylation by 〔2$\^$-l4/C〕 pyruvate, and (3)internal amino acid sequence analysis of tryptic digested enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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