International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.19
no.1
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pp.199-204
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2009
The newly cloned Bacillus thuringiensis cry1-5 gene showed high activity to both Plutella xylostella and Spodoptera exigua, while cry1Ac only showed high activity against P. xylostella but low to S. exigua. Through the alignment of amino acid sequences between Cry1Ac and Cry1-5, we found 12 different residues in domain I (6 residues) and domain II (6 residues). In this study, the modified cry1Ac gene, which is constructed according to a crop-preferring codon usage, was used as a template to construct mutant B. thuringiensis cry1Ac genes based on cry1-5 gene through multi site-directed mutagenesis. Total 63 various mutant cry genes were obtained at 12 positions randomly. Among them, ten mutant cry genes, whose domain I was totally converted and domain II was randomly, were selected to express in baculovirus expression system as a polyhedrin fusion form. The recombinant proteins were 95 kDa in size and were stably activated as 65 kDa by trypsin. The expressed mutant Cry proteins were applied to bioassays against P. xylostella and S. exigua. All mutants showed high insecticidal activity both to P. xylostella and S. exigua similar to cry1-5. These results suggest that these mutant cry genes might be expected of desirable cry genes for introduction to transgenic crops.
We have now constructed a novel recombinant baculovirus producing fusion protein with Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) polyhedrin and Bacillus thuringiensis(Bt) cryIA(c) crystal protein. The fusion protein expressed by the recombinant baculovirus in insect cells was characterized. The N-terminal of cryIA(c) gene of Bt subsp. kurstaki HD-73 was introduced under the control of polyhedrin gene promoter of AcNPV, by fusion in the front of intact polyhedrin gene or by insertion into the HindIII site in polyhedrin gene. The recombinant baculoviruses were named as BtrusI or BtrusII, respectively. Although single transcript from the fusion protein gene was apparently observed. BtrusI was produced the two proteins, 92 kDa fusion protein and only polyhedrin. In addition, fusion protein produced by BtrusI did not form polyhedra. Interestingly, however, the cells infected with BtrusII did not show a 33 kDa polyhedrin band as a cells infected with BtrusI. Cells infected with BtrusII were only produced fusion protein, but the polyhedra formed by fusion protein was not observed. To determine the insecticidal toxicity of fusion protein, therefore, Sf9 cells infected with BtrusI were inoculated to Bombyx mori larvae. Sf9 cells infected with BtrusI that expressed the fusion protein caused larval mortality although the insecticidal toxicity was low. In conclusion, our results clearly demonstrated that the fusion protein with polyhedrin and Bt cryIA(c) crystal protein have a insecticida toxicity.
A novel cry2Ab gene was cloned and sequenced from the indigenous isolate of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki. This gene was designated as cry2Ab25 and its sequence revealed an open reading frame of 1,902 bp encoding a 633 aa protein with calculated molecular mass of 70 kDa and pI value of 8.98. The amino acid sequence of the Cry2Ab25 protein was compared with previously known Cry2Ab toxins, and the phylogenetic relationships among them were determined. The deduced amino acid sequence of the Cry2Ab25 protein showed 99% homology to the known Cry2Ab proteins, except for Cry2Ab10 and Cry2Ab12 with 97% homology, and a variation in one amino acid residue in comparison with all known Cry2Ab proteins. The cry2Ab25 gene was expressed in Escherichia coli BL21(DE3) cells. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) revealed that the Cry2Ab25 protein is about 70 kDa. The toxin expressed in BL21(DE3) exhibited high toxicity against Malacosoma neustria and Rhagoletis cerasi with 73% and 75% mortality after 5 days of treatment, respectively.
The characteristics of parasporal inclusion body from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki KB099 isolate which is high bioactive to the tobacco cutworm, Spodoptera litura, were examined. Parasporal inclusion of B. thuringiensis subsp. kurstaki KB099 isolate showed only 1 band at 130 kDa compared with B. thuringiensis subsp. kurstaki HD-l isolate producing 2 protein bands at 130 kDa and 60 kDa from by SDS-PAGE analysis without any enzyme treatment. Also, we confirmed that gut extract of sensitive S. litura KB099 isolate had digested only 60 kDa ${\delta}$-endotoxin protein. When the digestive enzyme of sensitive insect responsible for parasporal inclusion from KB099 and HD-l isolate was treated to each of them, protein band 60 KDa of KB099 was maintained up to 12 hours but all bands of HD-l were disappeared within 6 hours. In KB099 isolate, 6 genes (Cry1Aa, Cry1Ab, Cry1Ac, Cry1C, Cry1D and Cry1I) were identified by PCR analysis. Also, $Cry^-$ mutant of KB099 isolate was investigated by phase- contrast microscope, SDS-PAGE and PCR.
The cryIB, truncated cryIB$[cryIB({\alpha})]$, cryIA(b), and cytA genes, encoding 135-, 89-, 131-, and 27-kDa proteins, respectively, from Bacillus thuringiensis were cloned into a shuttle vector pBES and expressed in E. coli and Bacillus species. The morphology and solubility in alkaline buffer of the insecticidal crystal proteins were investigated. Transformation of intact cells of E. coli and Bacillus species was achieved by electroporation. High field strength of 11.0 kV/cm and resistance of 129 ohms were required for efficient transformation of E. coli strains and 4.5 kV/cm and 48 ohms for Bacillus species. Strains of recombinant E. coli and Bacillus species produced the insecticidal crystal proteins and accumulated as the same bipyramidal and irregular structures as those of CryIB and IA(b) and CytA of B. thuringiensls, respectively. The insecticidal crystal proteins accumulated in recombinant E. coli wire smaller in size than those in recombinant Bacillus species. The solubility in alkaline buffer of the insecticidal crystal proteins of recombinant E. coli increased gradually as the pH increased, whereas in the case of Bacillus species the solubility increased gradually as the pH increased up to 9 and then the solubility increased greatly up to two times higher than that of E. coli proteins.
Roh Jong Yul;Lee In Hee;Li Ming Shun;Chang Jin Hee;Choi Jae Young;Boo Kyung Saeng;Je Yeon Ho
Journal of Microbiology
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v.42
no.4
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pp.340-345
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2004
To investigate the co-expression and crystallization of a fusion gene between the Bacillus thuringiensis crystal protein and a foreign protein in B. thuringiensis, the expression of the Cry1Ac fused with green fluorescent protein (GFP) genes in a B. thuringiensis $Cry^-B$ strain was examined. The cry1Ac gene was cloned in the B. thuringiensis-E. coli shuttle vector, pHT3101, under the control of the native cry1Ac gene promoter, while the GFP gene was inserted into the XhoI site upstream of the proteolytic cleavage site, in the middle region of the crylAc gene (pProAc-GFP). The B. thuringiensis $Cry^-B$ strain carrying pProAc-GFP (ProAc-GFP/CB) did not produce any inclusion bodies. However, the transformed strain expressed fusion protein forms although the expression level was relatively low. Furthermore, an immunoblot analysis using GFP and Cry1Ac antibodies showed that the fusion protein was not a single species, but rather multiple forms. In addition, the N-terminal fragment of Cry1Ac and a non-fused GFP were also found in the B. thuringiensis $Cry^-B$ strain after autolysis. The sporulated cells before autolysis and the spore-crystal mixture after autolysis of ProAc-GFP/CB exhibited insecticidal activities against Plutella xylostella larvae. Accordingly, the current results suggest that a fusion crystal protein produced by the transfomant, ProAc-GFP/CB, can be functionally expressed but easily degraded in B. thuringiensis.
CHOI, SOO KEUN;BYUNG SIK SHIN;BON TAG KOO;SEUNG HWAN PARK;AND JEONG IL KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.4
no.3
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pp.171-175
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1994
To find new crystal protein genes, we screened 42 Bacillus thuringiensis strains of serovar standards by Southern hybridization with a cryI-specific probe which was amplified from B. thuringiensis subsp. kurstaki HDl by polymerase chain reaction (PCR). Two strains, B. thuringiensis subsp. entomocidus HD9 and subsp. subtoxicus HD109, generated weak signals under the low-stringency hybridization conditions. Further analysis with Southern hybridization revealed that the two strains contained cryIB genes which are slightly different from those of B. thuringiensis subsp. thuringiensis HD2. These results were confirmed by PCR with cryIB-specific primers followed by the restriction analysis of PCR products.
Three-dimensional (3D) models for the 65-kDa activated Cry4A and Cry4B $\delta$-endotoxins from Bacillus thuringiensis subsp. israelensis that are specifically toxic to mosquito-larvae were constructed by homology modeling, based on atomic coordinates of the Cry1Aa and Cry3Aa crystal structures. They were structurally similar to the known structures, both derived 3D models displayed a three-domain organization: the N-terminal domain (I) is a seven-helix bundle, while the middle and C-terminal domains are primarily comprise of anti-parallel $\beta$-sheets. Circular dichroism spectroscopy confirmed the secondary structural contents of the two homology-based Cry4 structures. A structural analysis of both Cry4 models revealed the following: (a) Residues Arg-235 and Arg-203 are located in the interhelical 5/6 loop within the domain I of Cry4A and Cry4B, respectively. Both are solvent exposed. This suggests that they are susceptible to tryptic cleavage. (b) The unique disulphide bond, together with a proline-rich region within the long loop connecting ${\alpha}4$ and ${\alpha}5$ of Cry4A, were identified. This implies their functional significance for membrane insertion. (c) Significant structural differences between both models were found within domain II that may reflect their different activity spectra. Structural insights from this molecular modeling study would therefore increase our understanding of the mechanic aspects of these two closely related mosquito-larvicidal proteins.
To isolate Bacillus thuringiensis toxic to Spodoptera species, we collected soil samples in Korea. In these samples, we characterized 7 B. thuringiensis isolates toxic to spodoptera exigua or S. litura from soil, granary and sericultural farm samples. The 7 isolates were named B. thuringiensis STB-1, STB-2, STB-3, STB-4, STB-5, STB-6 and STB-7, respectively. The bioassay of these isolates against S. exigua and S. litura showed highly insecticidal activity. The serotypes of them were determined by agglutination tests using 33 antisera ; STB-1 an STB-2 are identical to B. thuringiensis subsp. kurastaki, and STB-3, STB-4 and STB-5 are identical to subsp. kenyae. STB-6 and STB-7 did not react with 33 antisera. STB-1 and STB-3 which have different gene types from B. thuringiensis subsp. kurastaki and subsp. kenyae are identified new isolates. STB-6 and STB-7 which show no agglutination in serological tests havd cryIA(a), cryIA(b), cryIC, and cryII genes are also identified new isolates. Molecular weights of parasporal inclusions of all isolates were determined approximately 130 kDa by SDS-polyacrylamide gel elctrophoresis.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.8
no.1
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pp.89-93
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2004
Expression of a fusion protein between B. thuringiensis crystal protein, Cry1Ac1 and a scorpion insect toxin (AaIT, Androctonus australis Hector insect toxin) in acrystalliferous B. thuringiensis strain (Cry-B strain) was examined. The cry 1Ac1 gene was cloned in B. thuringiensis-E coli shuttle vector, pHT3101, under the control of the native cry 1Ac1 gene promoter (pProAc) and a gene encoding AaIT was inserted in XhoI site in the middle of the cry 1Ac1 gene (pProAc-ScoR). B. thuringiensis Cry-B strain carrying pProAc-ScoR (PyoAc-ScoR/CB) produced an inclusion body of irregular shape and the expressed fusion protein is approximately 65 kDa in size. Sporulated cells and spore-crystal mixtures of ProAc-ScoR/CB had insecticidal activity against Plutella xylostella larvae, showing $LT_50$ of ProAc-ScoR/CB (22.59 hrs) lower than that of ProAc/CB (30.06 hrs) at $1{\times}{10^7} {CEU/cm^2}$. These results suggest that the fusion protein including a B. thuringiensis crystal protein and an AaIT may be functionally expressed in B. thupingiensis. Moreover, we verified the additive toxicity of AaIT, which is a new feasible candidate for insect control.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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