Pseudomonas syringae pv. actinidiae strains, which cause canker disease in kiwifruit, were collected from kiwifruit orchards in Korea and identified using biochemical and physiological tests. The nucleotide sequences of the 16s rDNA and 16s-23s internally transcribed spacer of the isolates were found to be Identical to those of' the pathotype strain, Kwl 1, of P syringae pv. actinidiae. Remarkably, no coding sequence for phaseolotoxin biosynthesis or phaseolotoxin- resistant ornithine carbamoyltransferase was found by PCR amplification in any of the new Korean isolates of pseudomonas syringae pv. actinidiae, although this was clearly identified in the control pathotype Kwl 1 reference strain. In contrast, three primer sets derived from the coronatine biosynthetic gene cluster and DNA from the Korean strains yielded amplified DNA fragments of the expected size. A sequence analysis of the PCR products revealed that P. syringae pv. actinidiae and the Korean strains of pv. actinidiae contain coronafncate ligase genes (cfl)with identical sequences, whereas their. corR genes exhibited 91% sequence similarity. The production of coronatine, instead of phaseolotoxin, by the Korean strains of P. syringae pv. actinidiae was confirmed by a bioassay using reference pathovars known to produce coronatine and phaseolotoxin. The genes for coronatine biosynthesis in the Korean strains of P. syringae pv. actinidiae were found to be present on plasmids.
Many pathovars of the species Pseudomonas syringae are known to produce different phytotoxins as secondary metabolites. Although phytotoxins generally enhance the virulence of P. syringae, they are not required for pathogenesis. Among the phytotoxins produced by P. syringae, lipodepsipeptides, coronatine, phaseolotoxin, and tabtoxin are the most well-known toxins which have been intensively studied for their structure, mode of action, biosynthesis, and regulation. A polymerase chain reaction (PCR) technique that amplifies a segment of the phytotoxin gene cluster using a primer set has been developed in recent years. This method offers the advantages of speed and sensitivity compared to the approaches based on physiological and biochemical methods. PCR detection of genes involved in the production of toxins could be exploited for early diagnosis of plant diseases caused by P. syringae pathovars.
Pseudomonas syringae pv. actinidiae is the causative agent of bacterial canker in kiwifruit. A nested PCR detection method that uses primers designed from the cfl gene, involved in production of the phytotoxin coronatine, was applied on soil samples. These primers yielded 665 and 310-bp fragments in consecutive PCR amplification step with DNA from soil inoculated with Korean strain of P. syringae pv. actinidiae. This system was applied to survey soil samples from a kiwifruit orchard destroyed by bacterial canker. A specific 310-bp PCR product was obtained from all six samples of soil tested.
Lee, Young Sun;Kim, Gyoung Hee;Koh, Young Jin;Zhuang, Qiguo;Jung, Jae Sung
The Plant Pathology Journal
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v.32
no.2
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pp.162-167
/
2016
Pseudomonas syringae pv. actinidiae, the causal agent of canker in kiwifruit, can be divided into three biovars (biovars 1, 2, and 3). Strains belonging to biovar 1 produce phaseolotoxin and were isolated in Japan and Italy before 2008. Strains of biovar 2 produce coronatine instead of phaseolotoxin and have been isolated only in Korea. Strains belonging to biovar 3 produce neither phaseolotoxin nor coronatine and are responsible for the global outbreak of bacterial canker of kiwifruit in recent years. The biovar 3-specific primer set was developed in a previous work. In this study, two sets of PCR primers specific to strains of biovars 1 and 2, respectively, were developed based on random amplified polymorphic DNA analyses. Primers PsaJ-F and PsaJ-R produced a 481-bp region with genomic DNA of biovar 1 strains, whereas primers PsaK-F and PsaK-R amplified a 413-bp region present only in the genome of biovar 2 strains.
A PCR method that combines biological and enzymatic amplification of PCR targets was developed for the detection of Pseudomonas syringae pv. actinidiae on kiwifruit leaves. A nested PCR was performed with primers designes from the coding sequence of the cfl gene, which is involved in production of the phytotoxin coronatine. The first and second primer sets efficiently amplified expected 665 and 310-bp fragments, respectively. With two successive amplifications, as few as 20 CFU/ml of P. syringae pv. actinidiae could be detected on ethidium bromide-stained agarose gel. Leaf samples were collected from 4 kiwifruit trees showing yellow halo spots on leaves and incubated in pepton-sucrose broth for 12 h at $16^{\circ}$C before PCR amplification. Positive detection was obtained with one sample, which was proved as a diseased plant in the next spring.
Bacterial diseases in soybean are bacterial pustule by Xanthomonas axonopodis pv. glycines, wildfire by Pseudomonas syringae pv. tabaci, bacterial blight by Pseudomonas savastanoi pv. glycines and bacterial brown spot by Pseudomonas syringae pv. syringae in Korea. It is difficult to identify each disease by early symptoms in fields, because the initial symptoms of these diseases are very similar to each other. In this study, we developed multiplex PCR detection method for rapid and accurate diagnosis of bacterial diseases. The glycinecin A of X. axonopodis pv. glycines, the tabtoxin of P. syringae pv. tabaci, the coronatine of P. savastanoi pv. glycines and the syringopeptin of P. syringae pv. syringae have been reported previously. These bacteriocin or phytotoxin producing genes were targeted to design the specific diagnostic primers. The primer pairs for diagnosis of each bacterial diseases were selected without nonspecific reactions. The studies on simultaneous diagnosis method were also conducted with primarily selected 21 primers. As a result, we selected PCR primer sets for multiplex PCR. Sizes of the amplified PCR products using the multiplex PCR primer set consist of 280, 355, 563 and 815 bp, respectively. This multiplex PCR method provides a efficient, sensitive and rapid tool for the diagnosis of the bacterial diseases in soybean.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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