Physiological agents trigger a signaling process called "inside-out signaling" and activated platelets promote adhesion, granule release, and conformational changes of glycoprotein IIb/IIIa (αIIb/β3). Activated αIIb/β3 interacts with fibrinogen and initiates a second signaling step called "external signaling". These two signaling pathways can cause hemostasis or thrombosis, and thrombosis is a possible medical problem in arterial and venous vessels, and platelet-mediated thrombosis is a major cause of cardiovascular disease (CVD). Therefore, modulating platelet activity is important for platelet-mediated thrombosis and cardiovascular disease. Esculetin is a coumarin-based physiologically active 6,7-dihydroxy derivative known to have pharmacological activity against obesity, diabetes, renal failure and CVD. Although some studies have confirmed the effects of esculetin in human platelet activation and experimental mouse models, it is not clear how esculetin has antiplatelet and antithrombotic effects. We confirmed the effect and mechanism of action of escultein on human platelets induced by collagen. As a result, esculetin decreased Ca2+ recruitment through upregulation of inositol 1, 4, 5-triphosphate receptor. In addition, esculetin upregulates cyclic adenosine monophosphate (cAMP) and cyclic guanosine monophosphate (cGMP)-dependent pathways and inhibits fibrinogen binding and thrombus contraction. Our results demonstrate the antiplatelet effect and antithrombotic effect of esculetin in human platelets. Therefore, we suggest that esculetin could be a potential phytochemical for the prevention of thrombus-mediated CVD.
Meyer J. Friedman;Haram Lee;Young-Chan Kwon;Soohwan Oh
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.12
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pp.1515-1526
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2022
Eukaryotic chromatin is highly organized in the 3D nuclear space and dynamically regulated in response to environmental stimuli. This genomic organization is arranged in a hierarchical fashion to support various cellular functions, including transcriptional regulation of gene expression. Like other host cellular mechanisms, viral pathogens utilize and modulate host chromatin architecture and its regulatory machinery to control features of their life cycle, such as lytic versus latent status. Combined with previous research focusing on individual loci, recent global genomic studies employing conformational assays coupled with high-throughput sequencing technology have informed models for host and, in some cases, viral 3D chromosomal structure re-organization during infection and the contribution of these alterations to virus-mediated diseases. Here, we review recent discoveries and progress in host and viral chromatin structural dynamics during infection, focusing on a subset of DNA (human herpesviruses and HPV) as well as RNA (HIV, influenza virus and SARS-CoV-2) viruses. An understanding of how host and viral genomic structure affect gene expression in both contexts and ultimately viral pathogenesis can facilitate the development of novel therapeutic strategies.
S-modulin in frog or its bovine homologue, recoverin, is a 26 kDa EF-hand $Ca^{2+}$-binding protein found in rod photoreceptors. The $Ca^{2+}$ -bound form of S-modulin binds to rhodopsin kinase (Rk) and inhibits its activity. Through this regulation, S-modulin is believed to modulate the light-sensitivity of a rod. In the present study, we tried to identify the interaction site of the $Ca^{2+}$ -bound form of S-modulin to Rk. First, we mapped roughly the interaction regions by using partial peptides of S-modulin. The result suggested that a specific region near the amino terminus is the interaction site of S- modulin. We then identified the essential amino acid residues in this region by using S-modulin mutant proteins: four amino acid residues were suggested to interact with Rk. These residues are located in a small closed pocket in the $Ca^{2+}$-free, inactive form of S-modulin, but exposed to the surface of the molecules in the $Ca^{2+}$ -bound, active form of S-modulin. Two additional amino acid residues were found to be crucial for the $Ca^{2+}$ -dependent conformational changes of S-modulin. The present study firstly identified the functional site of S-modulin, a member of a neuronal calcium sensor protein family.in family..
Kinetic studies of L-Alanine dehydrogenase from Bacillus subtilis-catalyzed reactions in the presence of $Zn^{2+}$ were carried out. The substrate (L-alanine) saturation curve is hyperbolic in the absence of the metal ion but it becomes sigmoidal when $Zn^{2+}$ is added to the reaction mixture indicating the positive cooperative binding of the substrate in the presence of zinc ion. The cooperativity of substrate binding depends on the xinc ion concentration: the Hill coefficients ($n_H$) varied from 1.0 to 1.95 when the zinc ion concentration varied from 0 to $60\;{\mu}m$. The inhibition of AlaDH by $Zn^{2+}$ is reversible and noncompetitive with respect to $NAD^+$ ($K_i\;=\;5.28{\times}10^{-5}\;M$). $Zn^{2+}$ itself binds to AlaDH with positive cooperativity and the cooperativity is independent of substrate concentration. The Hill coefficients of substrate biding in the presence of $Zn^{2+}$ are not affected by the enzyme concentration indicating that $Zn^{2+}$ binding does not change the polymerization-depolymerization equilibria of the enzyme. Among other metal ions, $Zn^{2+}$ appears to be a specific reversible inhibitor inducing conformational change through the intersubunit interaction. These results indicate that $Zn^{2+}$ is an allosteric competitive inhibitor and substrate being a non-cooperative per se, excludes the $Zn^{2+}$ from its binding site and thus exhibits positive cooperativity. The allosteric mechanism of AlaDh from Bacillus subtilis is consistent with both MWC and Koshland's allosteric model.
Cyclic AMP receptor protein (CRP) is involved in the transcriptional regulation of more than 100 genes in E. coli. CRP dimer is converted into active form via the sequential conformation change of cAMP binding pocket, hinge region and HTH DNA binding motif by binding of cAMP. The temperature gradient gel electrophoresis (TGGE) was applied to CRP protein to know whether it was an efficient technique to study the conformational transitions and the thermal stability. TGGE showed the unfolding process of wild-type and S83G CRP proteins with the temperature gradient set from 29 to 71$^{\circ}C$ on nondenaturing polyacrylamide gel. Melting temperature (Tm) was 57$\pm$1 and 55$\pm$1$^{\circ}C$ for wild-type and S83G CRP, respectively in acidic buffer[89.8 mM Glycine and 24 mM Boric acid (pH 5.8)].
Kim, Min-Gab;Su'udi, Mukhamad;Park, Sang-Ryeol;Hwang, Duk-Ju;Bae, Shin-Chul
Journal of Life Science
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v.20
no.12
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pp.1777-1783
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2010
Plants generate reactive oxygen species (ROS) as a by-product of normal aerobic metabolism or when exposed to a variety of stress conditions, which can cause widespread damage to biological macromolecules. To protect themselves from oxidative stress, plant cells are equipped with a wide range of antioxidant proteins. However, the detailed reaction mechanisms of these are still unknown. Peroxiredoxins (Prxs) are ubiquitous thiol-containing antioxidants that reduce hydrogen peroxide with an N-terminal cysteine. The active-site cysteine of peroxiredoxins is selectively oxidized to cysteine sulfinic acid during catalysis, which leads to inactivation of peroxidase activity. This oxidation was thought to be irreversible. Recently identified small protein sulphiredoxin (Srx1), which is conserved in higher eukaryotes, reduces cysteine.sulphinic acid in yeast peroxiredoxin. Srx1 is highly induced by $H_2O_2$-treatment and the deletion of its gene causes decreased yeast tolerance to $H_2O_2$, which suggest its involvement in the metabolism of oxidants. Moreover, Srx1 is required for heat shock and oxidative stress induced functional, as well as conformational switch of yeast cytosolic peroxiredoxins. This change enhances protein stability and peroxidase activity, indicating that Srx1 plays a crucial role in peroxiredoxin stability and its regulation mechanism. Thus, the understanding of the molecular basis of Srx1 and its regulation is critical for revealing the mechanism of peroxiredoxin action. We postulate here that Srx1 is involved in dealing with oxidative stress via controlling peroxiredoxin recycling in Arabidopsis. This review article thus will be describing the functions of Prxs and Srx in Arabidopsis thaliana. There will be a special focus on the possible role of Srx1 in interacting with and reducing hyperoxidized Cys-sulphenic acid of Prxs.
Nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs) play important roles in nervous system functions and are involved in a variety of diseases. We previously demonstrated that ginsenosides, the active ingredients of Panax ginseng, inhibit subsets of nAChR channel currents, but not ${\alpha}7$, expressed in Xenopus laevis oocytes. Mutation of the highly conserved Leu247 to Thr247 in the transmembrane domain 2 (TM2) channel pore region of ${\alpha}7$ nAChR induces alterations in channel gating properties and converts ${\alpha}7$ nAChR antagonists into agonists. In the present study, we assessed how point mutations in the Leu247 residue leading to various amino acids affect 20(S)-ginsenoside $Rg_3$ ($Rg_3$) activity against the ${\alpha}7$ nAChR. Mutation of L247 to L247A, L247D, L247E, L247I, L247S, and L247T, but not L247K, rendered mutant receptors sensitive to $Rg_3$. We further characterized $Rg_3$ regulation of L247T receptors. We found that $Rg_3$ inhibition of mutant ${\alpha}7$ nAChR channel currents was reversible and concentration-dependent. $Rg_3$ inhibition was strongly voltage-dependent and noncompetitive manner. These results indicate that the interaction between $Rg_3$ and mutant receptors might differ from its interaction with the wild-type receptor. To identify differences in $Rg_3$ interactions between wild-type and L247T receptors, we utilized docked modeling. This modeling revealed that $Rg_3$ forms hydrogen bonds with amino acids, such as Ser240 of subunit I and Thr244 of subunit II and V at the channel pore, whereas $Rg_3$ localizes at the interface of the two wild-type receptor subunits. These results indicate that mutation of Leu247 to Thr247 induces conformational changes in the wild-type receptor and provides a binding pocket for $Rg_3$ at the channel pore.
Peroxiredoxins (Prxs) are ubiquitously distributed and play important functions in diverse cellular signaling systems. The proteins are largely classified into three groups, such as typical 2-Cys Prx, atypical 2-Cys Prx, and 1-Cys Prx, that are distinguished by their catalytic mechanisms and number of Cys residues. From the three classes of Prxs, the typical 2-Cys Prx containing the two-conserved Cys residues at its N-terminus and C-terminus catalyzes $H_2O_2$ with the use of thioredoxin (Trx) as an electron donor. During the catalytic cycle, the N-terminal Cys residue undergoes a peroxide-dependent oxidation to sulfenic acid, which can be further oxidized to sulfinic acid at the presence of high concentrations of $H_2O_2$ and a Trx system containing Trx, Trx reductase, and NADPH. The sulfinic acid form of 2-Cys Prx is reduced by the action of sulfiredoxin which requires ATP as an energy source. Under the strong oxidative or heat shock stress conditions, 2-Cys Prx in eukaryotes rapidly switches its protein structure from low-molecular-weight species to high-molecular-weight protein structures. In accordance with its structural changes, the protein concomitantly triggers functional switching from a peroxidase to a molecular chaperone, which can protect its substrate denaturation from external stress. In addition to its N-terminal active site, the C-terminal domain including 'YF-motif' of 2-Cys Prx plays a critical role in the structural changes. Therefore, the C-terminal truncated 2-Cys Prxs are not able to regulate their protein structures and highly resistant to $H_2O_2$-dependent hyperoxidation, suggesting that the reaction is guided by the peroxidatic Cys residue. Based on the results, it may be concluded that the peroxidatic Cys of 2-Cys Prx acts as an '$H_2O_2$-sensor' in the cells. The oxidative stress-dependent regulation of 2-Cys Prx provides a means of defense systems in cells to adapt stress conditions by activating intracellular defense signaling pathways. Particularly, 2-Cys Prxs in plants are localized in chloroplasts with a dynamic protein structure. The protein undergoes conformational changes again oxidative stress. Depending on a redox-potential of the chloroplasts, the plant 2-Cys Prx forms super-molecular weight protein structures, which attach to the thylakoid membranes in a reversible manner.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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