The coat protein gene of Korean isolate of Ricer stripe virus (RSV-Kr) was cloned and its nucleotide sequence was determined. Total RNA was extracted from infected leaves and RSV viral RNA was detected by using RT-PCR with specific primer of coat protein gene. The result of RT-PCR showed a specific band. Purified RT-PCR products of coat protein gene were ligated into the pGEM-T Easy plasmid vector and cloned cDNA was obtained for nucleotide sequence determination. Coat protein gene of RSV-Kr consisted of 969 bp long encoding a protein of 322 amino acids. RSV-Kr showed 94%-99% sequence identities to that of Japanese- and Chinese isolates.
Park, Won-Mok;Lee, Sang-Seon;Park, Sun-Hee;Ju;Ryu, Ki-Hyun
The Plant Pathology Journal
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제16권1호
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pp.36-42
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2000
The coat protein gene of iris severe mosaic potyvirus, which was isolated in Korea, ISMV-K, from iris plant was cloned and its nucleotide sequence was determined. The coat protein of the virus contained 252 amino acid residues, including five potential N-glyxosylation site motifs. The coat protein of ISMV-K has 99.1% and 98.4% sequence identities with those of the Netherlands isolate of ISMV (ISMV-Ne) form crocus for the nucleotide and amino acids, respectively. The coat protein of ISMV-K has 50.4% to 60.3% nucleotide sequence identities and 47.3% to 55.7% amino acid identities with those of other 21 potyviruses, indicating ISMV to be a distinct species of the genus. The coat protein of ISMV-K was closely related with bean yellow mosaic virus and clover yellow vein virus in the phylogenetic tree analysis among the potyviruses analyzed. ISMV was easily and reliably detected from virus-infected iris leaves by RT-PCR with a set of the virus-specific primers.
genomics의 정보해석이나 신경전달물질 또는 약의 전달체계에서 아주 중요한 역할을 담당하는 막단백질의 구조연구는 기존의 X-ray나 용액상 핵자기공명분광법으로 수행하기 어려우나 지방질 이분자층이나 여러분자층에서 움직이지 않게 정렬시킨 단백질시료를 이용하여 특이하게 고안된 home-built solid-state NMR probe를 이용하면 구조를 연구할 수 있다. 이 논문에서는 박테리오파지인 pf1의 growth, 분리, 정제 및 pf1에서의 coat protein의 분리, 정제과정과 최종적으로 분리 정제된 pf1의 coat protein의 인산지방질 이분자층에서의 구조를 고체상 핵자기공명 분광법을 이용하여 연구하고자 한다.
Papaya ringspot virus (PRSV) causes the most widespread and devastating disease in papaya. Isolates of PRSV originating from different geographical regions in south India were collected and maintained on natural host papaya. The entire coat protein (CP) gene of Papaya ringspot virus-P biotype (PRSV-P) was amplified by RTPCR. The amplicon was inserted into pGEM-T vector, sequenced and sub cloned into a bacterial expression vector pRSET-A using a directional cloning strategy. The PRSV coat protein was over-expressed as a fusion protein in Escherichia coli. SDS-PAGE gel revealed that CP expressed as a ~40 kDa protein. The recombinant coat protein (rCP) fused with 6x His-tag was purified from E.coli using Ni-NTA resin. The antigenicity of the fusion protein was determined by western blot analysis using antibodies raised against purified PRSV. The purified rCP was used as an antigen to produce high titer PRSV specific polyclonal antiserum. The resulting antiserum was used to develop an immunocapture reverse transcription-polymerase chain reaction (IC-RT-PCR) assay and compared its sensitivity levels with ELISA based assays for detection of PRSV isolates. IC-RT-PCR was shown to be the most sensitive test followed by dot-blot immunobinding assay (DBIA) and plate trapped ELISA.
Lily mottle virus (LMoV) causes flower quality reduction in Lilium spp. The coat protein gene was RT-PCR-amplified from total RNA extracted from infected lily leaves and the amplified fragment was cloned into the pRSET expression vector tagged with a His-MBP. The plasmid of recombinant coat protein was used to transform an Escherichia coli strain pLysS and was expressed. The coat protein was purified by affinity chromatography using a Ni-NTA resin. The identity of the purified protein was confirmed by SDS-PAGE. The in vitro-expressed protein was used for immunization of mice. The polyclonal and monoclonal antibodies reacted specifically for the detection of LMoV in lily extracts in Western blot. Moreover the monoclonal antibodies reacted with lily extracts in DAS-ELISA with no unspecific or heterologous reactions against other non-serologically related viruses, but the polyclonal antibodies revealed a weak reaction against both infected lily and healthy control.
Raquel, Helena;Lourenco, Tiago;Moita, Catarina;Oliveira, M. Margarida
Plant Biotechnology Reports
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제2권1호
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pp.75-85
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2008
Prune dwarf virus (PDV) is an Ilarvirus systemically infecting almond trees and other Prunus species and spreading through pollen, among other means. We have studied strategies based on coat protein (cp) gene to block PDV replication in host plant cells. A Portuguese isolate of PDV was obtained from infected almond leaves and used to produce the cDNA of the cp gene. Various constructs were prepared based on this sequence, aiming for the transgenic expression of the original or modified PDV coat protein (cpPDVSense and cpPDVMutated) or for the expression of cpPDV RNA (cpPDVAntisense and cpPDVwithout start codon). All constructs were tested in a PDV host model, Nicotiana benthamiana, and extensive molecular characterization and controlled infections were performed on transformants and their progenies. Transgenic plants expressing the coat protein RNA were able to block the proliferation of a PDV isolate sharing only 91% homology with the isolate used for cpPDV cloning, as evaluated by DAS-ELISA on newly developed leaves. With cp expression, the blockage of PDV proliferation in newly developed leaves was only achieved with the construct cpPDV Mutated, where the coat protein has a substitution in the 14th aa residue, with arginine replaced by alanine. This result points to a possible role of the mutated amino acid in the virus ability to replicate and proliferate. This work reveals the possibility of achieving protection against PDV through either coat protein RNA or mutated cp sequence.
Using the reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), a rapid and sensitive assay method for the detection and identification of barley yellow mosaic virus (BaYMV) and barley mild mosaic virus (BaMMV) was adapted. Two units of primers from each virus were selected and used for the determination of two different viruses. PCR fragments of BaYMV (ca. 0.9kb) and BaMMV (ca. 0.8kb) were obtained from the designed method for the assay of BaYMV and BaMMV coat protein. PT-PCR fragments were cloned using vector pT7 Blue and the sequences of the selected clones were analyzed. coat protein of BaYMV and that of BaMMV consisted of 297 amino acids (891 nucleotides) and 251 amino acids (753 nucleotides), respectively. The snalysis of coat protein genes from these two viruses showed that 45.6% of nucleotides sequence ad 34.9% of amino acid in BaYMV were homologous to those in BaMMV.
The coat protein mediated resistance to potato virus Y is assessed here in transgenic potato plants (Solanum tuberosum L., cv Claustar). Therefore, the corresponding cDNA from tunisian isolate of the virus was cloned into Agrobacterium tumefaciens binary vector. The transgenic lines were subsequently analysed for the presence and expression of the transgene. The CP cDNA copy number was determined for kanamycin resistant plants. Three selected transgenic lines and their S1 progeny resulting from tuber germination showed a high protection level against the virus. These data appear to support the hypothesis that the virus resistance is mediated by the translated viral coat protein expressed in transgenic potato lines.
Tobacco mosaic virus (TMV) tomato strain was isolated from tomato "Seo-Kwang" in Korea. The virion was purified by density gradient centrifugation, and total viral RNA was isolated from the purified particles. Coat protein (CP) cDNA of the virus was synthesized by RT-PCR, and the purified cDNA fragment was subcloned to pBluescript II SK-. The analysis of nucleotide sequence showed that this cDNA was 693 nucleotides long from the insert of clone p1571 and p1572 which contain complete codons of the viral coat protein gene (474 nucleotides) and 3' untranslated region. The nucleotides of coat protein encoding cDNA of the strain were 6 nucleotides less than that of TMV common strain isolated from tobacco plant in Korea. The CP gene showed 70% maximum homology with that of the common strain in the nucleotide level and 86% maximum homology in amino acid level.cid level.
Tobacco mosaic virus(TMV) 외피단백질 유전자를 연초(Nicotiana tabacm cv. NC82)에 형질전환하고 형질전환 식물체 후세대에서 TMV 저항성인 연초를 선발하여, 선발된 TMV 저항성 제5세대 형질전환 식물체의 도입된 유전자발현 및 고온에서의 특성 등을 조사하였다. TMV 저항성 식물체의 염색체 DNA에 TMV 외피 단백질 유전자가 안정되게 존재하고 있음을 genomic PCR을 수행하여 확인하였다. 또한 형질전환 식물체내에서 TMV 외피 단백질 발현은 Immunoblot hybridization 방법으로 확인하였다. TMV 저항성 형질전환 연초식물체에서 발현된 단백질의 양은 매우 적었으며 특히 본엽에는 병징이 나타나지 않았으나 수확기 마지막 액아에 TMV의 반점이 나타난 병징발현 지연형의 형질전환 식물체의 경우에도 발현된 단백질의 양은 정상 NC 82에 TMV가 감염되었을 때와 비교하여 현저히 적었다. TMV 저항성 형질전환 식물체 내에서 발현되는 TMV 외피단백질의 양은 총 단백질에 대비하여 0.01% 이하이였다. TMV 병징 발현 지연형인 형질전환 식물체에 TMV를 인공접종한 후 고온처리상태에서 외피 단백질 유전자의 전사 및 발현을 RT-PCR과 Immune blot hybridization 통하여 확인하였으며, 이때 TMV의 증식도 억제되었으므로 개량멀칭시 나타나는 고온조건하에서도 저항성이 안정적으로 발현될 수 있음을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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