A novel serine/threonine protein phosphatase with EF-hand motif, which belongs to PPEF family was partially cloned from rat brain cDNA by employing RT-PCR method. The size of the amplified clone was 1.6kbp. The amplified DNA was subcloned into pGEM-T-Easy vector and the resulting plasmid was maned as pGEM-rPPEF2. The nucleuotide sequence is shared by 88% with that of mouse PPEF-2 cDNA, and the deduced amino acid sequence reveal 92% homology with that of mouse PPEF-2 cDNA. The N-terminal region of the cloned rat brain PPEF contains a putative phosphatase catalytic domain (PP domain) and the C-terminal region contains multiple $Ca^{2+}$ binding sites (EF region). The putative catalytic domin (PP) and the EF-hand motif (EF) regions were subcloned into pGEX4T-1 and were overexpressed in E. coli DH5 as glutathione-S-transferase (GST) fusion proteins. Expression of the desired fusion protein was identified by SDS-PAGE and also by immunoblot analysis using monoclonal antibody against GST. The recombinant proteins were purified by glutathione-agarose chromatography. This report is first to demonstrate the cloning of PPEF family from rat brain tissues. The clone reported here would be invaluable for the investigation of the role of this new type-phosphatase in rat brain.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.9
no.2
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pp.187-191
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2004
Actin is a ubiquitous and highly conserved protein found in eukaryotic organisms. In this study, we describe the cDNA cloning and mRNA expression of an actin gene from the mulberry longicorn beetle, Apriona germari. The A. germari actin cDNA is 1524 bp containing a complete 1128 bp open reading frame that encodes a polypeptide of 376 amino acid residues with a predicted molecular weight of about 41.5 kDa. The deduced amino acid sequence of the A.germari actin cDNA showed 99% protein sequence identity to Homalodisca coagulata actin, differing at only two amino acid positions, and 92-98% protein sequence identity to known insect species actins. The predicted three-dimensional structure of A. germari actin revealed the four residue hydrophobic pulg loop characteristic of the actin family. Northern blot analysis showed that A. germari actin is highly expressed in epidermis and muscle, and less strongly in midgut, but not in the fat body of A. germari larva.
Escherichia coli O157 is an important pathogenic organism which causes diarrhea, haemorrhagic colitis, and haemolytic ureamic syndrome (HUS) in human. E. coli O157 KNIH317 was isolated form patients suffering with HUS in Korea. We designed a primer set for cloning shiga-like toxin (slt) gene. The amplified PCR product was used to Southern and colony hybridization as a probe. As a result, we cloned 4.5-kb KpnI fragment containing the slt gene encoding shiga-like toxin from chromosomal DNA of E. coli O157 KNIH317. This recombinant plasmid was named pOVT45. E. coli XL1-Blue harboring pOVT45 showed cytotoxicity in Vero cells. We sequenced the slt gene of this strain. The A-subunit gene of the slt was composed of 960 base pairs with ATG initiation codon and TAA terminationcodon. The B-subunit was composed of 270 base paris with ATG initiation codon and TGA termination codon. Nucleotide sequence comparison of the slt gene exhibited 100%, 98.4%, 93.7%, and 93.7% identity with that of shiga-like toxin type II (sltII) of E. coli bacteriophage 933W, variant slt of E. coli, slt of E. coli, and variant sltII of E. coli, respectively. From these results, it was concluded that the cloned slt gene belongs to SltII family and that the strain used in this study may be a lysogeny of E. coli bcteriphage 933W.
Complementation cloning of the argC, E, B, D, F, and G genes in Corynebacterium glutamicum was done by transforming the genomic DNA library into the corresponding arginine auxotrophs fo Escherichia coli. Recombinant plasmids containing 6.7 kb and 4.8kb fragments complementing the E. coli argB mutant were also able to complement the E. coli argC, E, A, D, and F mutants, indicating the clustered organization of the arginine biosynthetic genes within the cloned DNA fragments. The insert DNA fragments in the recombinant plasmids, named pRB1 AND pRB2, were physically mapped with several restriction enzymes. By further subcloning the entire DNA fragment containing the functions and by complementation analysis, we located the arg genes in the order of ACEBDF on the restriction map. We also determined the DNA nucleotide sequence of the fragment and report here the sequence of the argB gene. When compared to that with the mutant strain, higher enzyme activity of N-acetylglutamate kinase was detected in the extract of the mutant carrying the plasmid containing the putative argB gene, indicating that the plasmid contains a functional argB gene. Deduced amino acid sequence of the argB gene shows 45%, 38%, and 25% identity to that from Bacillus strearothermophilus, Bacillus substilus, and E. coli respectively. Our long term goal is genetically engineering C. glutamicum which produces more arginine than a wild type strain does.
Kim, Seong-Ryul;Yoon, Hyung-Joo;Park, Nam-Sook;Lee, Sang-Mong;Moon, Jae-Yu;Jin, Byung-Rae;Sohn, Hung-Dae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.4
no.1
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pp.63-68
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2002
A cDNA encoding a putative member of cathepsin B of the thiol pretense superfamily was cloned from a cDNA library of the mulberry longicorn beetle, Apriona germari. Sequence analysis of the cDNA encoding the cathepsin B of A. germari (AgCatB) revealed that the 972 bp cDNA has an open reading frame of 324 amino acid residues. The deduced protein sequence of the AgCatB showed high homology with cathepsin B of the insects, Bombyx mori (47.3% amino acid identity), Helicoverpa armigera (46.6%) and Sarcophaga peregrina (45.6%), and the lowest homology with Aedes aegypti (33.2%). The AgCatB contains six disulfate bonds typical for cysteine pretenses. The three amino acid positions Cys-109, His-267, and Asn-287 which are conserved, active sites characteristic for cathepsin B, were also found. Phylogenetic analysis further confirmed that the AgCatB has a close relationship with that of B. mori, H. armigera and S. peregrina.
Kim, Seong-Ryul;Lee, Kwang-Sik;Kim, Iksoo;Kang, Seok-Woo;Nho, Si-Kab;Sohn, Hung-Dae;Jin, Byung-Rae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.6
no.1
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pp.93-97
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2003
We describe here the cloning of a cDNA encoding putative calreticulin (CRT) from the silkworm, Bombyx mori. The CRT cDNA comprised of 1,194 bp encoding 398 amino acid residues. B. mori. CRT has a HDEL sequence at the end of the C-domain. The B. morl, CRT showed 88% protein sequence identity to the G. mellonella CRT, 71 % to A. aegypti CRT, and 63% to H. sapiens CRT, Phylogenetic analysis revealed that the deduced amino acid sequences of the B. mori CRT formed a highly inclusive subgroup with other insect CRTs. Northern blot analysis exhibited an expression of the B. mori CRT gene in the fat body, evidencing the fat body as a major site for CRT synthesis.
Kim, Hyun-Jin;Yang, Ji-Young;Lee, Hyeon-Gye;Cha, Jae-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.11
no.4
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pp.693-699
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2001
An intracellular levansucrase gene, lscR from Rahnella aquatilis ATCC 15552, was cloned and its nucleotide sequence was determined. Nucleotide sequence analysis of this gene revealed a 1,238 bp open reading frame coding for a protein of 415 amino acids. The levansucrase was expressed by using a T7 promoter in Escherichia coli BL21 (DE3) and the enzyme activity was detected in the cytoplasmic fraction. The optimum pH and temperature of this enzyme for levan formation was pH 6 and $30^{\circ}C$, respectively. The deduced amino acid sequence of the lscR gene showed a high sequence similarity (59-89%) with Gram-negative levansucrses, while the level of similarity with Gram-positive enzymes was less than 42%. Multiple alignments of levansucrase sequences reported from Gram-negative and Gram-positive bacteria revealed seven conserved regions. A comparison of the catalytic properties and deduced amino acid sequence of lscR with those of other bacterial levansucrases strongly suggest that Gram-negative and Gram-positive levansucrases have an overall different structure, but they have a similar structure at the active site.
Kim, Jong-Geuk;Kim, Ha-Ryong;Park, Yong-Joo;Chung, Kyu-Hyuck;Oh, Seung-Min
Environmental Analysis Health and Toxicology
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v.26
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pp.5.1-5.11
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2011
Objectives: In order to identify the possibility of slender bitterling (SB) (Acheilognathus yamatsutae) being used as a test species for estrogenic endocrine disrupting chemicals (EEDCs), we carried out the cloning and sequence characterization of the estrogen receptor (ER). Methods: The ER from a slender bitterling was obtained by reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR), 5'- and 3'-rapid amplification of cDNA ends (5'-RACE and 3'-RACE) and T-vector cloning. The expression of ER mRNA was also analyzed in six tissues (brain, liver, kidney, gill, gonad, and intestines) by real-time PCR. Results: We obtained an ER from the slender bitterling. The SB ER cDNA was 2189 base pairs (bp) in length and contained a 1707 bp open reading frame that encoded 568 amino acid residues. The SB ER amino acid sequence clustered in a monophyletic group with the $ER{\alpha}$ of other fish, and was more closely related to zebrafish $ER{\alpha}$(88% identity) than to the $ER{\alpha}$ of other fish. The SB ER cDNA was divided into A/B, C, D, E and F domains. The SB ER has conserved important sequences for ER functions, such as the DNA binding domain (D domain), which are consistent with those of other teleosts. Conclusions: The ER of the slender bitterling could provide basic information in toxicological studies of EEDCs in the slender bitterling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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