Bacterial stain 3Y was isolated from a site that was contaminated with diesel for more than 15 years. The strain could grow on various petroleum using hydrocarbons as the sole carbon source. The strain grew not only on aliphatic hydrocarbons but also on aromatic hydrocarbons. 3Y grew on aliphatic petroleum hydrocarbons hexane or hexadecane, and aromatic petroleum hydrocarbons BTEX, phenol, biphenyl, or phenanthrene. The strain showed aromatic ring dioxygenase and meta-cleavage dioxygenase activities as determined by tests using indole and catechol. Aromatic ring dioxygenase is involved in the initial step of biodegradation of aromatic hydrocarbons while meta-cleavage dioxygenase catalyzes the cleavage of the benzene ring. Based on a nucleotide sequence analysis of its 16S rRNA gene, 3Y belongs to the genus Sphingomonas. A phylogenetic tress was constructed based on the nucleotide sequences of closest relatives of 3Y and petroleum hydrocarbon degrading sphingomonads. 3Y was in a cluster that was different from the cluster that contained well-known sphingomonads. The results of this study suggest that 3Y has the potential to cleanup oil-contaminated sites. Further investigation is warranted to optimize conditions to degrade petroleum hydrocarbons by the strain to develop a better bioremediation strategy.
Many bacteria metabolize aromatic compounds via catechol as a catabolic intermediate, and possess multiple genes or clusters encoding catechol-cleavage enzymes. The presence of multiple isozyme-encoding genes is a widespread phenomenon that seems to give the carrying strains a selective advantage in the natural environment over those with only a single copy. In the naphthalene-degrading strain Pseudomonas putida ND6, catechol can be converted into intermediates of the tricarboxylic acid cycle via either the ortho- or meta-cleavage pathways. In this study, we demonstrated that the catechol ortho-cleavage pathway genes (catBICIAI and catBIICIIAII) on the chromosome play an important role. The catI and catII operons are co-transcribed, whereas catAI and catAII are under independent transcriptional regulation. We examined the binding of regulatory proteins to promoters. In the presence of cis-cis-muconate, a well-studied inducer of the cat gene cluster, CatRI and CatRII occupy an additional downstream site, designated as the activation binding site. Notably, CatRI binds to both the catI and catII promoters with high affinity, while CatRII binds weakly. This is likely caused by a T to G mutation in the G/T-N11-A motif. Specifically, we found that CatRI and CatRII regulate catBICIAI and catBIICIIAII in a cooperative manner, which provides new insights into naphthalene degradation.
IciA protein has been shown as an inhibitor for the initiation of E. coli chromosomal DNA replication at oriC. IciA protein binds the AT-rich region in oriC and then blocks the initiation of chromosomal DNA replication. Two binding sites for IciA protein were identified in dnaA gene, encoding the initiator for the E. coli chromosomal replication, promoter region by gel-shift assay and DNase I footprinting, One, named as IciA site I, is located upstream of the dnaA promoter 1P. The other, named as IciA site II, is located downstream of the dnaA promoter 2P. The sequence comparison of the regions protected from the DNase I cleavage did not result in a clear consensus sequence for the binding of IciA protein, suggesting that IciA protein may be a member of multimeric complex dsDNA binding proteins. This study provided information about the binding mode of IciA protein. Even though the IciA site II and IciA binding site in oriC seem to be composed of two IciA binding units, one binding unit is likely enough to cause the binding of IciA protein to the IciA site I. The binding of IciA protein to the dna4 promoter implies that IciA protein may involve not only the control of the initiation of chromosomal DNA replication but also the control of the dna4 gene expression.
Bacillus thuringiensis serovar israelensis 4Q1 contains 8 different covalently closed-circular (CCC) plasmids of molecular weight 204, 267, 109, 103, 16, 7.6, 6.4, and 5.0kb. The three smallest plasmids, designated pBti6, and pBti8 may prove to be useful as cloning vectors because of thier size and ease of isolation. The three plasmids were incubated separately with 9 different restriction enzymes and 7 of the enzymes tested cleaved one or more of the plasmids. Plasmid pBti6 has a single site for Bg1 II, Pst I and Pvu II, two sites for Bc1 I and Eco RI, and five sites for Hind III. Plasmid pBti7 has a single site for Bam HI and Pst I, two sites for Hind III, and three sites for PvuII. Plasmic pBti8 has a single site for Bam HI, BelI and Hind III, two sites for Eco RI, and three sites for Bgl II and Pvu II. Composite restriction enzyme maps for pBti6, pBti7 and pBti8 were constructed. The sites of restriction enzyme cleavage were determined by single, double and partial digests of the plasmid DNA. All the restriction sites were aligned relative to the single Bgl II(pBti6), Pst I(pBti7) or Hind III(pBti8) site, respectively.
Dihydrolipoamide dehydrogenase (E3) catalyzes the reoxidation of dihydrolipoyl moiety of the acyltransferase components of three $\alpha$-keto acid dehydrogenase complexes and of the hydrogen-carrier protein of the glycine cleavage system. His-457 of Pseudomonas putida E3 is suggested to interact with the hydroxyl group of Tyr-18 of the other subunit and with Glu-446, a component in the last helical structure. To examine the importance of the suggested interactions in human E3 function, the corresponding residue of human E3, Asn-473, was substituted to Leu using site-directed mutagenesis. The E3 mutant was expressed in Escherichia coli and highly purified using an affinity column. Its E3 activity was decreased about 37-fold, indicating that Asn-473 residue was important to the efficient catalytic function of human E3. Its slightly altered spectroscopic properties implied that small conformational changes could occur in the E3 mutant.
Dihydrolipoamide dehydrogenase (E3) belongs to the pyridine nucleotide-disulfide oxidoreductase family including glutathione reductase and thioredoxin reductase. It catalyzes the reoxidation of dihydrolipoyl moiety of the acyltransferase components of three $\alpha$-keto acid dehydrogenase complexes and of the hydrogen-carrier protein of the glycine cleavage system. Isoleucine-51 of human E3, located near the active disulfide center Cys residues, is highly conserved in most E3s from several sources. To examine the importance of this highly conserved Ile-51 in human E3 function, it was substituted with Ala using site-directed mutagenesis. The mutant was expressed in Escherichia coli and highly purified using an affinity column. Its E3 activity was decreased about 100-fold, indicating that the conservation of the Ile-51 residue in human E3 was very important to the efficient catalytic function of the enzyme. Its altered spectroscopic properties implied that conformational changes could occur in the mutant.
Whang, Y.;Chae, K. S.;Jang, W. H.;Kim, K. T.;Yoo, O. J.
Korean Journal of Microbiology
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v.24
no.4
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pp.406-410
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1986
The isolation and charateriation of a type II restriction endonuclease from Xanthomonas citri IFO 3835 were described. This enzyme (Xci I endonuclease) is an isoschizomer of Sal I endonuclease recognizing 5'-GTCGAC-3' and cleaving at the site indicated by the arrow. Unlike Sal I endonuclease, Xci I endonuclease requries a NaCl concentration of 50mM for its maximum activity.
Adozelesin and carzelesin are synthetic analogues of the extremely potent antitumor antibiotic CC-1065, which alkylates N3 of adenine in a consensus sequence $5^1$-(A/T)(A/T)$A^*$ ($A^*$ is the site of alkylation). We have investigated the DNA sequence selectivity of adozelesin and carzelesin by thermally ind ced DNA strand cleavage assay using radiolabeled restriction DNA fragments. An analysis of alkylation patterns shows that the consensus sequences for carzelesin and adozelesin have been found to be $5^1$-(A/T)(A/T)$A^*$ and $5^1$-(A/F)(G/C)(A/T)$A^*$. A new consensus sequence, $5^1$-(A/T)(A/T)$CA^*$, has been observed to display an additional alkylation site for adozelesin but not for carzelesin. These results indicate that the pattern of sequence selectivity induced by carzelesin is similar but not identical to those induced by adozelosin.
The esolation and characterization of a new type II restriction endounclease, BamI, from Bacellus macerans ATCC 8244 were described. BmaI endonuclease was partially purified by procedures of ammonium sulfate fractionation, DEAE-cellulose and phosphocellulose chromatographies. This enzume recognized one site on pBR322 DNA, two sites on Bluescribe DNA, three sites on $\lambda$DNA and no site on SV 40 DNA. The same cleavage patterns for vareius DNAs as PvuI indicated that BamI is an isoschisomer of PvuI whose recognition sequence is 5'-CGATCG-3'. The optimal pH for the BmaI endonuclease activity was about 7.0 and optimal NaCl concentration was about 100mM. Manganese ion could partially replace magnesium as a cofactor, but calcium could not at all.
The synthesis and characterization of diastereomeric dodecanucleotides, d[GATCp(S)TCGAGATC], containing recognition sequence of the XhoI restriction endonuclease with a phosphorothioate internucleotidic linkage the cleavage site are described. Rp and Sp form of diastereomerically pure dinucleoside phosphorothioates d[Cp(S)T] were presynthesized and used for the addition to the growing oligonucleotide chain as a block. The stereochemistry of dinucleoside phosphorothioate was assigned by 31P NMR spectroscopy, enzyme digestion, and reverse-phase HPLC. XhoI restriction endonuclease cut only Rp diastereomer d[GATCp(S))TCGAGATC]. The rate of hydrolysis is slower than that of the unmodified dodecamer d[GATCTCGAGATC]. The phosphorothioate nucleotide is using for determination of the stereochemical course of the XhoI catalyzed reaction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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