In this study, we developed a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) with hydroxynaphtol blue dye (HNB) for rapid and direct visual detection of porcine circovirus 2 DNA with high sensitivity and specificity. The LAMP was completed in 40 min at $63^{\circ}C$, and the results of the LAMP can be confirmed by naked eye without any detection process. The sensitivity of the LAMP was 10-fold higher than that of the commercial PCR (cPCR) and real time PCR (rPCR) previously reported. In clinical application, the PCV2 detection rate of the LAMP was the same on porcine tissue samples (75.0%, 36/48) between porcine blood samples (75.0%, 39/52). The PCV2 detection rate (75.0%) of LAMP was higher than those of the cPCR and rPCR (67.3%, 35/52) in blood samples. In conclusion, the LAMP developed in the study could be an useful alternative method for the detection of PCV2 in the swine disease diagnostic laboratories.
Porcine circovirus type 2 (PCV2) is a notorious and ubiquitous virus in the swine industry. The susceptibility of the host to PCV2 infection is considered to be one factor associated with the dynamics of PCV2. The objective of this study was to verify the criteria for host susceptibility to PCV2, using blood parameters of post-weaned pigs naturally infected with the virus. The PCV2 DNA viral load, antibody titer, and leukopenia characteristics were measured in the serum extracted from the pigs at the 10th week. We classified the pigs into high (>5.0), intermediate (3.0 to 5.0), and low (<3.0) groups on the basis of the PCV2 viral load (log copies/ml), or as positive (${\leq}0.50$) and negative (>0.50) groups on the basis of antibody titer (sample-to-negative corrected ratio). Moreover, using these two categorized parameters, we suggested the criteria for classification into the susceptible and resistant groups. Statistical analyses revealed that pigs in the susceptible group had a significantly higher viral load (p<0.001) and negative antibody titer (p<0.001), as well as significantly lower leukocyte counts (p=0.018) and lower amounts of several leukocyte components (p<0.05), than pigs in the resistant group. We concluded that the susceptible group could be considered to have PCV2-induced leukopenia. Therefore, we suggest that the combined classifications of viral loads and anti-PCV2 antibodies can be used to determine PCV2-induced leukopenia in the subclinical PCV2 infection of post-weaned pig populations.
This study was carried out to investigate the pathogenesis and pathogenicity of the porcine circovirus type 2 (PCV2) Korean isolate from weaned pigs. Twenty four weaned pigs, PCV2, porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) and porcine parvovirus (PPV) antibodies free, were allocated to 4 groups (n = 6). Six pigs were inoculated intranasally with PCV2 alone, 6 with PCV2 and PRRSV, 6 with the combined PCV2/PRRSV/PPV inoculum, and 6 were remained as a uninoculated negative control. Pigs were killed 3 and 6 weeks after inoculation and tissue samples examined for gross and microscopic lesions and for the presence of PCV2 antigens and nucleic acids. Experimentally inoculated pigs were evaluated for 3 considerations: 1. development of postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS), 2. distribution of viral antigens by immunohistochemistry and polymerase chain reaction (PCR), and 3. cytokine mRNA levels in lymph nodes. Pigs inoculated with PCV2/PRRSV/PPV showed typical clinical signs, gross findings, and histopathologic characteristics of PMWS. In the PCV2/PRRSV/PPV inoculated group, the PCV2 antigen was widely distributed in various parenchymal organs such as brain, spinal cord, tonsil, lymph nodes, lung, heart, liver, kidney, spleen, and peyer's patch. Lymph node mRNA expression of IL-$1{\alpha}$, IL-2R and IL-8 was determined by real-time PCR. The pigs of PCV2/PRRSV and PCV2/PRRSV/PPV inoculation group, the mRNA expression was characterized by a decrease of IL-$1{\alpha}$, IL-2R and IL-8. The decrease of cytokine mRNA represent the state of T cell immuno-suppression in pig, and nicely support the evidence for the impairment of immune system in pigs with PMWS. In conclusion, PCV2 infection and some additional infectious causes such as PRRSV and/or PPV are warranted for the presence of PMWS in weaned pigs in Korea.
Kim, Hye-Ryung;Park, Jonghyun;Park, Ji-Hoon;Kim, Jong-Min;Baek, Ji-Su;Kim, Da-Young;Lyoo, Young S.;Park, Choi-Kyu
Korean Journal of Veterinary Service
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v.45
no.1
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pp.1-11
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2022
A novel porcine circovirus 4 (PCV4) was recently identified in Chinese and Korean pig herds. Although several conventional polymerase chain reaction (cPCR) and real-time PCR (qPCR) assays were used for PCV4 detection, more sensitive and reliable qPCR assay is needed that can simultaneously detect PCV4 and internal positive control (IPC) to avoid false-negative results. In the present study, a duplex qPCR (dqPCR) assay was developed using primers/probe sets targeting the PCV4 Cap gene and pig (glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) GAPDH gene as an IPC. The developed dqPCR assay was specifically detected PCV4 but not other PCVs and porcine pathogens, indicating that the newly designed primers/probe set is specific to the PCV4 Cap gene. Furthermore, GAPDH was stably amplified by the dqPCR in all tested viral and clinical samples containing pig cellular materials, indicating the high reliability of the dqPCR assay. The limit of detection of the assay 5 copies of the target PCV4 genes, but the sensitivity of the assay was higher than that of the previously described assays. The assay demonstrated high repeatability and reproducibility, with coefficients of intra-assay and inter-assay variation of less than 1.0%. Clinical evaluation using 102 diseased pig samples from 18 pig farms showed that PCV4 circulated in the Korean pig population. The detection rate of PCV4 obtained using the newly developed dqPCR was 26.5% (27/102), which was higher than that obtained using the previously described cPCR and TaqMan probe-based qPCR and similar to that obtained using the previously described SYBR Green-based qPCR. The dqPCR assay with IPC is highly specific, sensitive, and reliable for detecting PCV4 from clinical samples, and it will be useful for etiological diagnosis, epidemiological study, and control of the PCV4 infections.
Proceedings of the Korean Society of Veterinary Pathology Conference
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2003.10a
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pp.49-49
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2003
PMWS is characterised by weight loss and dyspnea combined with pathological findings of interstitial pneumonia and generalized enlarged lymph nodes. Typical histological lesions include multifocal granulomatous pneumonia, and lymphocyte depletion and multinucleated giant cell formation in lymph nodes[1,2]. (omitted)
Multiplex PCR and immunohistochemistry were used to detect and differentiate between porcine circovirus (PCV) type-I and the PCV associated with postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS). Unique DNA product to PCV type-II was confirmed the some organs including lymph nodes, tonsil and spleen from eight pigs in Jeju by multiplex PCR. In this study, the samples were tested by a multiplex PCR assay to determine the type of PCV in each case; all cases were PCV type-II positive. PCV type-II was identified not only in typical PMWS cases, but also in field cases submitted with various clinical histories, some of which were not suggestive of PMWS. Immunohistochemically PCV type-II antigen was detected in macrophage-like cells in the tonsil, liver, lymph nodes and spleen, while some hepatocytes and renal tubular epithelial cells were also positive to the virus. This study suggested that PCV type-II is one of the causative agents of PMWS as well as the major type of PCV in the affected pigs in Jeju.
The purpose of this study was to apply a nested-polymerase chain reaction (nPCR) assay to detect and differentiate PCV 2a and PCV 2b. The compared with nPCR and one-step PCR and nPCR showed more sensitive in the detection of PCV-2 from tissue and blood samples. The total of 52 tissue samples was collected from postweanning pigs from 2006 to 2010. All tissue samples showed positive for PCV-2 in one-step PCR and nPCR, followed by the nPCR in order to identify the genotypes of PCV-2. 2 samples (3.8%) showed positive for PCV 2a, and 35 samples were positive for PCV 2b (67.3%), 15 samples (28.9%) were positive the dual genotypes. In addition, 42 blood samples which were collected from the 5 different swine farms were compared figure out the detection rates of nPCR and one-step PCR. The PCV 2 was positive by one-step PCR in 21 samples (50.0%) and nPCR was positive in 37 samples (88.1%). The PCV 2 genotypes in blood samples and 32 samples (76.2%) were positive for PCV 2b and none were positive for PCV 2a, 5 samples (11.9%) were positive for dual genotypes. These results suggest that the nPCR is very efficient for genotyping blood samples and differentiating the genotypes of PCV-2 from field samples.
Porcine circovirus type 2 (PCV2) is the causative agent of postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS) in pigs. Replicase (Rep) proteins are considered essential for viral replication. Capsid (Cap) protein is the primary immunogenic protein that induces protective immunity. Little is known about comparison on the immunogenicity of PCV2 Rep and Cap fusion protein and Cap protein. In the present study, recombinant baculoviruses expressing the Rep-Cap fusion protein (Bac-Rep-Cap) and the Cap protein (Bac-Cap) of PCV2 were constructed and confirmed with western blot and indirect fluorescence assay. Immunogenicities of the two recombinant proteins were tested in mice. The titers of antibodies were determined with a PCV2-specific enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and a serum neutralization assay. The $IFN-{\gamma}$ response of immunized mice was measured by ELISA. The mice immunized with the Bac-Rep-Cap and Bac-Cap successfully produced Cap-specific immunoreaction. The mice immunized with the Bac-Cap developed higher PCV2-specific neutralizing antibody titers than mice injected with the Bac-Rep-Cap. $IFN-{\gamma}$ in the Bac-Rep-Cap group was increased compared to those in the Bac-Cap group. Vaccination of mice with the Bac-Rep-Cap showed significantly decreased protective efficacy compared to the Bac-Cap. Our findings will indubitably not only lead to a better understanding of the immunogenicity of PCV2, but also improved vaccines.
Background: Panax notoginseng saponins (PNS) are bioactive substances extracted from P. notoginseng that are widely used to treat cardiovascular and cerebrovascular diseases and interstitial diseases. PNS have the functions of scavenging free radicals, anti-inflammation, improving blood supply for tissue and so on. Objectives: The aim of this study was to investigate the effects of PNS on the oxidative stress of immune cells induced by porcine circovirus 2 (PCV2) infection in vitro and in vivo. Methods: Using an oxidative stress model of PCV2 infection in a porcine lung cell line (3D4/2 cells) and mice, the levels of nitric oxide (NO), reactive oxygen species (ROS), total glutathione (T-GSH), reduced glutathione (GSH), and oxidized glutathione (GSSG) and the activities of xanthine oxidase (XOD), myeloperoxidase (MPO) and inducible nitric oxide synthetase (iNOS) were determined to evaluate the regulatory effects of PNS on oxidative stress. Results: PNS treatment significantly reduced the levels of NO and ROS, the content of GSSG and the activities of XOD, MPO, and iNOS (p < 0.05), while significantly increasing GSH and the ratio of GSH/GSSG in infected 3D4/2 cells (p < 0.05).Similarly, in the in vivo study, PNS treatment significantly decreased the level of ROS in spleen lymphocytes of infected mice (p < 0.05), increased the levels of GSH and T-GSH (p < 0.05), significantly decreased the GSSG level (p < 0.05), and decreased the activities of XOD, MPO, and iNOS. Conclusions: PNS could regulate the oxidative stress of immune cells induced by PCV2 infection in vitro and in vivo.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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