Park, Kyung-Hwa;Yang, Deok-Chun;Jeon, Jae-Heung;Kim, Hyun-Soon;Joung, Young-Hee;Hyouk Joung
Journal of Plant Biotechnology
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v.1
no.2
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pp.85-90
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1999
In order to protect fungal diseases, leaf disc explants of Solanum tuberosum cultivar, Belchip, was infected with an Agrobacterium MP90 strain containing chimeric gene construct, consisting of antibiotic resistance and chitinase gene driven by the CaMV 35S promoter, for transformation. Regenerated multiple shoots were selected on a medium containing kanamycin and carbenicillin after exposure to Agrobacterium. The presence and integration of the npt II and chitinase gene were confirmed by polymerase chain reaction(PCR). Northern blot analysis indicated that the genes coding for the enzyme could be expressed in potato plants. The chitinase activity of transgenic potato plants was higher than the control potato.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.19
no.2
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pp.259-264
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2009
The AvChit gene encodes for a chitinase from the spider, Araneus ventricosus. This spider, A. ventricosus, is an abundant species in Korea. Arabidopsis thaliana plants were transformed with the AvChit gene using Agrobacterium tumefaciens. Thirteen transgenic lines expressing the AvChit gene were obtained. Functional expression of the AvChit gene in transgenic Arabidopsis was confirmed by Southern, northern and western blot analysis. The AvChit cDNA was expressed as a 61 kDa polypeptide in baculovirus-infected insect Sf9 cells. AvChit protein extracted from transgenic Arabidopsis exhibited high levels of chitinase activity. Phytopathological tests showed that two transgenic Arabidopsis lines expressing the AvChit gene displayed high levels of resistance to gray mold disease (Botrytis cinerea).
The chitinase-producing bacterial strain C-1 is one of the key chitinase-producing biocontrol agents used for effective bioformulations for biological control. These bioformulations are mixed cultures of various chitinolytic bacteria. However, the precise identification, biocontrol activity, and the underlying mechanisms of the strain C-1 have not been investigated so far. Therefore, we evaluated in planta biocontrol efficacies of C-1 and determined the draft genome sequence of the strain in this study. The bacterial C-1 strain was identified as a novel Serratia sp. by a phylogenic analysis of its 16S rRNA sequence. The Serratia sp. C-1 bacterial cultures showed strong in planta biocontrol efficacies against some major phytopathogenic fungal diseases. The draft genome sequence of Serratia sp. C-1 indicated that the C-1 strain is a novel strain harboring a subset of genes that may be involved in its biocontrol activities.
A bacterium having strong chitinolytic activity on $0.2\%$ colloidal chitin-containing agar medium was isolated from coastal soil in Korea. Based on the nucleotide sequence of conserved segment of a 165 rRNA gene, the bacterium was identified as Paenibacillus illinoisensis KJA-424. The population of P. illinoisensis KJA-424 and chitinase activity significantly increased for the first 2 days of incubation. On SDS-PACE analysis with $0.01\%$ glycol chitin, three protein bands (63, 54, and 38 kDa) with chitinolytic activity were detected tooted. The effect of P illinoisensis KJA-424 on the egg hatch of root-knot nematode (Meloidogyne incognita) was investigated. After 7 days of incubation with the chitinase-producing P. illinoisensis KJA-424, none of the eggs hatched, whereas a $39.8\%$ egg hatching rate was observed in the water control. Inverted and scanning electron microscopic observations demonstrated that P. illinoisensis KJA-424 deformed and destroyed the eggshell of M. incognita. In conclusion, chitinase-produced by p. illinoisensis KJA-424 caused the lysis of M. incognita eggshell and resulted in the inhibition of egg hatching in vitro.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.30
no.4
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pp.760-763
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2001
Five commercial salt-fermented shrimps contained 29.8~48.3% of salt 3.5%~7.3% of total nitrogen and 0.3~0.7g/100g of amino-nitrogen respectively. The average peptide length(APL) of five commercial salt-fermented shrimps ranged from 10.1 to 15.0. Sample B and E showed longer APL than the others with the values of 15.0 and 14.4 respectively. Protease activity showed the large differences in five samples from 17 unit to 232 unit ; sample C showed the highest protease activity with 232 unit while sample D and E were relatively lower with 17 unit and 18 unit respectively. The chitinase activities which can hydrolyze chitin the one of components on outer layer of shrimp ranged from 14.4 unit to 171 unit. Sample E had the highest chitinase activity as 171 unit but sample B showed the lowest activity with 14.4 unit. Chitooligosaccharides of five commercial salted-fermented shrimps were consisted of monoglucosamine diglucosamine and triglucosamine.
Antifungal Activity and Identification of an Actinomycetes Strain Isolated from Mummified Peaches. Lirn, Tae Heon*, Jung Mok Lee, Tae Hyun Chang, and Byeongjin Chal. *Research Institute of Plant Nutrient, Oaeyu Co, Inc. Kyongsan 712-820, Korea, 1 Department of Agricultural Bi%g'f Chungbul< NatJ"onal Univershy, Cheongju 367-763, Korea - An actinomycetes strain which produced chitinase, urease, and antifungal substances to MoniliniaJhtcticola was isolated from peaches mununified by Moniliniafructicola. The strain TH-04 was identified as Streptomyces sp. based on cultural and lTIOIphological characteristics, cell wall diaminopimelic acid, and sugar patterns ofwhole~cell extracts. Streptomyces sp. TH~04 showed antifungal activity to several fungi including Moniliniafructicola, Colletotrichum gloeosporioides, Magnaponhe grisea, Rhizoctonia solani, Phytophthora capsici, Altemaria kikuchiana, Fusarium solani, and Fusarium O),ysporum. The optimum cultural conditions for the production of antifungal substances were $20^{\circ}C$pH 7, and 7 days.
An antagonistic bacterium Pseudomonas stutzeri YPL-1 liberated extracellular chitinase and $\beta$-1,3-glucanase which are key enzymes in the decomposition of fungal hyphal walls. The lytic enzymes caused abnormal swelling and retreating at the hyphal tips of plant pathogenic fungus Fusarium solani in a dual culture. Scanning electron microscopy revealed the hyphal degradation of F. solani in the regions interacting with P. stutzeri YPL-1. The production of chitinase and properties of a crude preparation of the enzyme from P. stutzeri YPL-1 were investigated. Peak of the chitinase activity was detected after 4 hr of cultivation. The enzyme had optimum temperature and pH of 50$^{\circ}C$ and pH 5.3, respectively. The enzyme was stable in the pH range of 3.5 to 6.0 up to 50$^{\circ}C$. The enzyme was significantly inhibited by metal compounds such as $HgCl_2$, but was stimulated by $CoCl_2$. P. stutzeri YPL-1 produced high levels of the enzyme after 84 hr of incubation. Among the tested carbon sources, chitin was the most effective for the enzyme production, at the concentration level of 3%. As a source of nitrogen, peptone was the best for the enzyme production, at the concentration level of 4%. The maximum amount of enzyme was produced by cultivating the bacterium at a medium of initial pH 6.8.
The strain of Serratia marcescens QM B1466 produces selectively large amount of chitinolytic enzymes (about 1mg/L medium). Enzymatic hydrolysis of chitin to N-acetyl-${\beta}$-D-glucosamine (NAG) was performed with a system consisting of two hydrolases (chitinase and chitobiase) produced by optimization of a microbial host consuming chitin particles. For the development of Large-scale biological process for the production of NAG from chitinaceous waste, the selection and optimization of a microbial host, particle size of crab/shrimp chitin sources and initial induction time using chitin as a sole carbon source on chitinase/chitobiase production and NAG production were examined. Crab-shell chitin(1.5%) treated by dilute acid and , ball-milled with a normal diameter less than 250m gave the highest chitinase activity over a 7 days culture. Crude chitinase/ chitobiase solution obtained in a 10 L fed-batch fermentation showed a maximum activities of 23.6 U/mL and 5.1 U/mL, respectively with a feeding time of 3 hrs, near pH 8.5 at 30$^{\circ}C$.
A chitinase gene of Serratia marcescens ATCC 27117 was cloned and expressed in Escherichiu di. A genomic library of S, marcescens was constructed with pUC 19 and screened using the swollen chitin agar plate for chitinolytic clones. A positive clone showing chitinclearance contains a recombinant pCHI 89, composed of 8.9 Kb chromosomal DNA fragment and pUC 19. Plasmid pCHI 89 produced 58 KD chitinase in E. coli, which was coincided with one of five extracellular chitinases produced by S. nzarccscens. Restriction endonuclease cleavage sites of the 8.9 Kb insert DNA fragment were mapped. E. coli JM109 harboring pCHI 89 inhibits the growth of a plant pathogenic fungus, Fusarium oxysporum.
Ham, Youngseok;Park, Han-Saem;Kim, Yeong-Suk;Kim, Tae-Jong
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.47
no.3
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pp.371-380
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2019
Termites are pests that cause serious economic and cultural damage by digesting wood cellulose. Termites are arthropods and have an epidermis surrounded by a chitin layer. To maintain a healthy epidermis, termites have chitinase (${\beta}$-1,4-poly-N-acetyl glucosamidinase, EC 3.2.1.14), an enzyme that hydrolyzes the ${\beta}$-1,4 bond of chitin. In this study, the amino acid sequence of the gene, which is presumed to be termite chitinolytic enzyme (NCBI accession no. KC477099), was obtained from a transcriptomic analysis of Reticulitermes speratus KMT001 in Bukhan Mountain, Korea. An NCBI protein BLAST search confirmed that the protein is a glycoside hydrolase family 18 (GH18). The highest homology value found was 47%, with a chitinase from Araneus ventricosus. Phylogenetic analysis indicated that the KC477099 protein has the same origins as those of arthropods but has a very low similarity with other arthropod chitinases, resulting in separation at an early stage of evolution. The KC477099 protein contains two conserved motifs, which encode the general enzymatic characteristics of the GH18 group. The amino acid sequences $Asp^{156}-Trp^{157}-Glu^{158}$, which play an important role in the enzymatic activity of the GH18 group, were also present. This study suggests that the termite KC477099 protein is a new type of chitinase, which is evolutionarily distant from other insect chitinases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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