Gastric smooth muscle of cats was used to investigate the involvement of protein kinase in vanadate-induced contraction. Vanadate caused a contraction of cat gastric smooth muscle in a dose-dependent manner. Vanadate-induced contraction was totally inhibited by 2 mM EGTA and 1.5 mM $LACI_3$ and significantly inhibited by $10\mu$M verapamil and $1\mu$M nifedipine, suggesting that vanadate-induced contraction is dependent on the extracellular $Ca^{2+}$ concentration, and the influx of extracellular $Ca^{2+}$ was mediated through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel. Both protein kinase C inhibitor and tyrosine kinase inhibitor significantly inhibited the vanadate-induced contraction and the combined inhibitory effect of two protein kinase inhibitors was greater than that of each one. But calmodulin antagonists did not have any influence on the vanadate-induced contraction. On the other hand, both forskolin ($1\mu$M) and sodium nitroprusside ($1\mu$M) significantly inhibited vanadate-induced contraction. Therefore, these results suggest that both protein kinase C and tyrosino kinase are involved in the vanadate-induced contraction which required the influx of extracellular $Ca^{2+}$ in cat gastric smooth muscle, and that the contractile mechanism of vanadate may be different from that of agonist binding to its specific receptor.
Objectives : The purpose of this study was to investigate the effects of Carthami flos on pacemaker potentials of small intestinal and colonic Interstitial Cells of Cajal (ICC). Methods : To dissociate the ICC, we used enzymatic digestions from the small intestine and colon in mice. In the ICC, the electrophysiological whole-cell patch-clamp configuration was used to record pacemaker potentials in the cultured ICC. Results : 1. The ICC generated pacemaker potentials in the murine small intestine and colon. 2. Pretreatment with a Ca2+ free solution and thapsigargin, a Ca2+-ATPase inhibitor in the endoplasmic reticulum, stopped the pacemaker potentials. In the case of Ca2+-free solutions, Carthami flos did not induce membrane depolarizations in the murine small intestine and colon. However, when thapsigargin in a bath solution was applied, Carthami flos induced membrane depolarizations only in the murine colon. 3. Pretreatment with 2-APB (transient receptor potential melastatin (TRPM) channel inhibitor) abolished the pacemaker potentials and suppressed Carthami flos-induced effects in the murine small intestine and colon. 4. However, pretreatment with T16Ainh-AO1 (Ca2+ activated Cl- channel; anoctamin 1 (ANO1) inhibitor) did not affect the pacemaker potentials and induced Carthami flos-induced effects only in the murine small intestine. Conclusions : These results suggest that Carthami flos can modulate the pacemaker activity of ICC and the mechanisms underlying pacemaking in ICC might be different in the small intestine and the colon.
Escitalopram is one of selective serotonin reuptake inhibitor antidepressants. As an S-enantiomer of citalopram, it shows better therapeutic outcome in depression and anxiety disorder treatment because it has higher selectivity for serotonin reuptake transporter than citalopram. The objective of this study was to determine the direct inhibitory effect of escitalopram on 5-hydroxytryptamine type 3 ($5-HT_3$) receptor currents and study its blocking mechanism to explore additional pharmacological effects of escitalopram through $5-HT_3$ receptors. Using a wholecell voltage clamp method, we recorded currents of $5-HT_3$ receptors when 5-HT was applied alone or co-applied with escitalopram in cultured NCB-20 neuroblastoma cells known to express $5-HT_3$ receptors. 5-HT induced currents were inhibited by escitalopram in a concentration-dependent manner. $EC_{50}$ of 5-HT on $5-HT_3$ receptor currents was increased by escitalopram while the maximal peak amplitude was reduced by escitalopram. The inhibitory effect of escitalopram was voltage independent. Escitalopram worked more effectively when it was co-applied with 5-HT than pre-application of escitalopram. Moreover, escitalopram showed fast association and dissociation to the open state of $5-HT_3$ receptor channel with accelerating receptor desensitization. Although escitalopram accelerated $5-HT_3$ receptor desensitization, it did not change the time course of desensitization recovery. These results suggest that escitalopram can inhibit $5-HT_3$ receptor currents in a non-competitive manner with the mechanism of open channel blocking.
This study was designed to elucidate high-$K^+$ induced response of circular and longitudinal smooth muscle from human gastric corpus using isometric contraction. Contraction from circular and longitudinal muscle stripes of gastric corpus greater curvature and lesser curvature were compared. Circular smooth muscle from corpus greater curvature showed high $K^+$ (50 mM)-induced tonic contraction. On the contrary, however, longitudinal smooth muscle strips showed high $K^+$ (50 mM)-induced sustained relaxation. To find out the reason for the discrepancy we tested several relaxation mechanisms. Protein kinase blockers like KT5720, PKA inhibitor, and KT5823, PKG inhibitor, did not affect high $K^+$-induced relaxation. $K^+$ channel blockers like tetraethylammonium (TEA), apamin (APA), glibenclamide (Glib) and barium ($Ba^{2+}$) also had no effect. However, N(G)-nitro-L-arginine (L-NNA) and 1H-(1,2,4) oxadiazolo (4,3-A) quinoxalin-1-one (ODQ), an inhibitor of soluble guanylate cyclase (sGC) and 4-AP (4-aminopyridine), voltage-dependent $K^+$ channel (KV) blocker, inhibited high $K^+$ -induced relaxation, hence reversing to tonic contraction. High $K^+$-induced relaxation was observed in gastric corpus of human stomach, but only in the longitudinal muscles from greater curvature not lesser curvature. L-NNA, ODQ and KV channel blocker sensitive high $K^+$-induced relaxation in longitudinal muscle of higher portion of corpus was also observed. These results suggest that longitudinal smooth muscle from greater curvature of gastric corpus produced high $K^+$-induced relaxation which was activated by NO/sGC pathway and by $K_V$ channel dependent mechanism.
Park, Seok;Jung, Se-Yeon;Park, Seong-Hwan;Ko, Sung-Ryong;Hyewon Rhim;Park, Chul-Seung;Nah, Seung-Yeol
Journal of Ginseng Research
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제24권4호
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pp.168-175
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2000
Xenopus oocytes를 이용하여 인삼의 유효 성분으로 알려진 Ginseng total saponin(GTS)의 신호 전달 기작을 two electrode voltage clamp 방법을 이용하여 연구하였다. GTS는 세포 바깥에 처리했을 때 -2OmV보다 더 positive한 voltage에서 커다란 outward current를 유도하였다. 그러나, 세포 안쪽에 GTS를 injection할 경우 아무런 효과가 없는 것으로 나타났다. GTS처리에 의한 outward current유발 효과는 GTS 투여 용량에 의존적인 것으로 나타났다(EC$_{50}$ : 4.4 $\mu\textrm{g}$/ml). GTS의 작용은 $Ca^{2+}$-activated Cl- channel blocker인 niflumic acid에 의하여 차단되었다. 칼슘 chelator인 BAPIA와 IP$_3$ 수용체 길항제인 heparin을 세포내 injection에 의하여 차단되었다. 또한 active phospholipase C inhibitor(PLC)인U-73122를 세포 바깥에 전처리할 경우에도 GTS의 작용이 부분적으로 억제되는 것으로 나타났다. 백일해 독소를 전처리할 경우GTS의 작용은 억제되지 않은 것으로 나타났으나, GTP analog인 GTP${\gamma}$S를 세포내 injection할 경우 GTS의 작용은 억제되는 것으로 나타났다. 이러한 연구 결과는 GTS가 oocytes세포막 성분과 상호 작용에 의하여 $Ca^{2+}$-activated Cl- channel이 열리도록 하고, 이 과정에 PLC활성 및 백일해 독소에 민감하지 않은 G단백질활성 및 IP3에 민감한 세포내 $Ca^{2+}$-activated로부터 칼슘 방출을 유도하는 것으로 나타났다났다
흰쥐의 적출 배뇨근에 대한 수종의 potassium 통로개방제의 작용을 관찰하고, 배뇨근에 존재하는 potassium 통로의 특성을 알아보기 위하여 체중 250~350g의 흰쥐 (Sprague-Dawley)를 단두하여 희생시킨 후 방광을 적출하였다. 적출된 방광으로 부터 $1.5mm{\times}1.5cm$의 배뇨근 수평절편을 만들어 1ml의 Tyrode 영양액을 포함하는 적출근편실험조에 현수하고 등척성장력을 측정하여 polygraph에 묘기하였다. 배뇨근절편은 potassium 통로 개방제인 pinacidil, BRL 38227 및 RP 52891의 누적 농도 첨가에 의하여 그 기본장력이 농도의존적으로 감소하였는데 그 작용강도는 RP 52891, pinacidil 그리고 BRL 38227의 순이었다. 전위 의존성 potassium 통로 봉쇄제인 procaine은 배뇨근 절편의 기본장력에 영향을 미치지 못했으며, pinacidil, BRL 38227 및 RP 52891에 의한 기본장력감소작용에 대해서도 영향을 미치지 못하였다. 칼슘 의존성 potassium 통로봉쇄제인 apamin은 배뇨근의 기본장력에 유의한 변화를 가져오지 못하였고, potassium 통로 개방제들에 대하여는 상경적 길항작용을 나타내지는 않았으나 BRL 38227과 RP 52891의 최고효능을 유의하게 감소시켰다. ATP 의존성 potassium 통로봉쇄제인 glibenclamide는 배뇨근 절편의 기본장력을 증가시키고, pinacidil을 상경적으로 길항하였으며, BRL 38227과 RP 52891을 상경적으로 길항하는 동시에 그 최대효능을 감소시켰다. 췌장의 ${\beta}$-세포에서 ATP 의존성 potassium 통로를 개방시켜 인슐린의 분비를 억제하는 galanin은 흰쥐의 배뇨근을 수축시켰다. 이상의 결과를 종합하면, 흰쥐의 배뇨근에서는 새로운 potassium 통로 개방제인 RP 52891의 배뇨근 이완작용이 pinacidil보다 강한 것으로 관찰되었다. 또 흰쥐 배뇨근에서는 ATP 의존성이며, glibenclamide 반응성인 potassium 통로가 존재 한다고 생각되는데, 이는 췌장의 ${\beta}$-세포에 있는 ATP 의존성 potassium 통로와는 다른 특성을 가진 것으로 추측된다.
$K^+$ channels are involved in the regulation of a variety of physiological functions, including proliferation, apoptosis and differentiation, in mammalian cells. Our previous study demonstrated that the blockage of $K^+$ channels inhibits mouse early embryonic development. This study was designed to identify the effect of $K^+$ channels during bovine embryonic development. $K^+$ channel blockers (tetraethylammonium (TEA), $BaCl_2$, quinine, ruthenium red and fluoxetine) were added to the culture medium during in vitro fertilization (IVF) for 6 h to first identify the short-term effect of these chemicals. Among $K^+$ channel blockers, fluoxetine, which is used as a selective serotonin reuptake inhibitor, significantly increased the blastocyst formation rate by approximately 6% when compared to control. During the in vitro maturation (IVM) of immature oocytes and the in vitro culture (IVC) of embryos, the oocytes and embryos were exposed to fluoxetine for either a short-term (6 h) or a long-term (24 h) to compare the embryonic development in response to exposure time. The 6 h exposure to fluoxetine during IVM did not affect the blastocyst formation rate, but the rate of blastocyst formation was reduced after the 24 h exposure. On the other hand, embryonic development increased approximately 10% in both groups of embryos exposed to fluoxetine for 6 and 24 h during IVC. Taken together, fluoxetine treatment during IVF and IVC, but not IVM, enhances bovine embryonic development. These results suggest that fluoxetine-modulated signals in oocytes and embryos could be an important factor towards enhancing bovine embryonic development.
The functional expression of potassium $(K^+)$ channels has electrophysiologically been studied in bone cells from several species, however, their identity and regulation of gene expressions in bone cells are not well known. In the present study, to investigate how $K^+$ channel expressions are regulated by estrogen, we measured changes of transcript levels of various $Ca^{2+}$-activated ($K_{Ca}$) and ATP-sensitive $K^+$ channels in rat osteoblastic ROS 17/2.8 cells after treatment with estrogen. Application of 17${\beta}$-estradiol $(E_2)$ for 24 h and 48 h increased mRNA and protein expressions of inwardly rectifying $K^+$ channel (Kir) 6.2 and type 2 small conductance $K_{Ca}$ channel (SK2), respectively. Combined treatment of cells with 17${\beta}-E_2$ and ICI 182,780, a pure antiestrogen, suppressed 17${\beta}-E_2$-induced alterations of SK2 and Kir6.2 mRNA levels. In addition, treatment of cells with U0126, a specific inhibitor of extracellular receptor kinases (ERK)1/2, and SP600125, a specific inhibitor of c-jun N-terminal kinase (JNK) blocked the enhancing effects of 17${\beta}-E_2$ on SK2 and Kir6.2 protein expressions. On the other hand, blocking of p38 mitogen-activated protein kinase had no effect. Taken together, these results indicate that 17${\beta}-E_2$ modulates SK2 and Kir6.2 expressions through the estrogen receptor, involving ERK1/2 and JNK activations.
Lee, Hyang Mi;Chai, Ok Hee;Hahn, Sang June;Choi, Bok Hee
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제22권1호
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pp.71-80
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2018
In patients with epilepsy, depression is a common comorbidity but difficult to be treated because many antidepressants cause pro-convulsive effects. Thus, it is important to identify the risk of seizures associated with antidepressants. To determine whether paroxetine, a very potent selective serotonin reuptake inhibitor (SSRI), interacts with ion channels that modulate neuronal excitability, we examined the effects of paroxetine on Kv3.1 potassium channels, which contribute to high-frequency firing of interneurons, using the whole-cell patch-clamp technique. Kv3.1 channels were cloned from rat neurons and expressed in Chinese hamster ovary cells. Paroxetine reversibly reduced the amplitude of Kv3.1 current, with an $IC_{50}$ value of $9.43{\mu}M$ and a Hill coefficient of 1.43, and also accelerated the decay of Kv3.1 current. The paroxetine-induced inhibition of Kv3.1 channels was voltage-dependent even when the channels were fully open. The binding ($k_{+1}$) and unbinding ($k_{-1}$) rate constants for the paroxetine effect were $4.5{\mu}M^{-1}s^{-1}$ and $35.8s^{-1}$, respectively, yielding a calculated $K_D$ value of $7.9{\mu}M$. The analyses of Kv3.1 tail current indicated that paroxetine did not affect ion selectivity and slowed its deactivation time course, resulting in a tail crossover phenomenon. Paroxetine inhibited Kv3.1 channels in a use-dependent manner. Taken together, these results suggest that paroxetine blocks the open state of Kv3.1 channels. Given the role of Kv3.1 in fast spiking of interneurons, our data imply that the blockade of Kv3.1 by paroxetine might elevate epileptic activity of neural networks by interfering with repetitive firing of inhibitory neurons.
The effects of (-)-epigallocatechin gallate (EGCG) on pacemaker activities of cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from murine small intestine were investigated using whole-cell patch-clamp technique at $30^{\circ}C$ and $Ca^{2+}$ image analysis. ICC generated spontaneous pacemaker currents at a holding potential of -70 mV. The treatment of ICC with EGCG resulted in a dose-dependent decrease in the frequency and amplitude of pacemaker currents. SQ-22536, an adenylate cyclase inhibitor, and ODQ, a guanylate cyclase inhibitor, did not inhibit the effects of EGCG. EGCG-induced effects on pacemaker currents were not inhibited by glibenclamide, an ATP-sensitive $K^+$ channel blocker and TEA, a $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel blocker. Also, we found that EGCG inhibited the spontaneous $[Ca^{2+}]_i$ oscillations in cultured ICC. In conclusion, EGCG inhibited the pacemaker activity of ICC and reduced $[Ca^{2+}]_i$ oscillations by cAMP-, cGMP-, ATP-sensitive $K^+$ channel-independent manner.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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