Lee, Ji Yoon;Kim, MyungJoo;Heo, Hye-Ryeon;Ha, Kwon-Soo;Han, Eun-Taek;Park, Won Sun;Yang, Se-Ran;Hong, Seok-Ho
Molecules and Cells
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v.41
no.11
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pp.971-978
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2018
The stem cell factor (SCF)/c-KIT axis plays an important role in the hematopoietic differentiation of human pluripotent stem cells (hPSCs), but its regulatory mechanisms involving microRNAs (miRs) are not fully elucidated. Here, we demonstrated that supplementation with SCF increases the hematopoietic differentiation of hPSCs via the interaction with its receptor tyrosine kinase c-KIT, which is modulated by miR-221 and miR-222. c-KIT is comparably expressed in undifferentiated human embryonic and induced pluripotent stem cells. The inhibition of SCF signaling via treatment with a c-KIT antagonist (imatinib) during hPSC-derived hematopoiesis resulted in reductions in the yield and multi-lineage potential of hematopoietic progenitors. We found that the transcript levels of miR-221 and miR-222 targeting c-KIT were significantly lower in the pluripotent state than they were in terminally differentiated somatic cells. Furthermore, suppression of miR-221 and miR-222 in undifferentiated hPSC cultures induced more hematopoiesis by increasing c-KIT expression. Collectively, our data implied that the modulation of c-KIT by miRs may provide further potential strategies to expedite the generation of functional blood cells for therapeutic approaches and the study of the cellular machinery related to hematologic malignant diseases such as leukemia.
In the previous paper (Choi et al., 1992), we found that a large but transient elevation in intracellular cGMP levels occur concomitant with the myoblast fusion. To establish the physiological significance of the elevation of cGMP levels, the change in guanylate cyclase activity dudng myoblast fusion and the correlation hetween various chemicals that may affect guanylate cyclase adivity and myoblast fusion were examined. Sodium nitroprusside, a nitric oxide-forming compound, induced a precocious fusion and increased guanylate cyclase activity compared to the control. Furthermore, L-NG-monomethyl arginine, specific inhibitor of L-arginine: nitric oxide synthase, inhibited the cell fusion in a dose-dependent manner, without affecting biochemical differentiation. On the basis of our present findings, we propose that the onset of myoblast fusion is somehow correlated with the rise in cellular cGMP levels that is regulated by the activation or inhibItIon of soluble guanylate cyclase, via as yet undefined mechanism but possibly through L-arginine: nitric oxide pathway.
Park, Minsik;Kim, Ji Yoon;Kim, Joohwan;Lee, Jeong-Hyung;Kwon, Young-Guen;Kim, Young-Myeong
BMB Reports
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v.54
no.9
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pp.470-475
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2021
Low-dose metronomic chemotherapy has been introduced as a less toxic and effective strategy to inhibit tumor angiogenesis, but its anti-angiogenic mechanism on endothelial progenitor cells (EPCs) has not been fully elucidated. Here, we investigated the functional role of regulated in development and DNA damage response 1 (REDD1), an endogenous inhibitor of mTORC1, in low-dose doxorubicin (DOX)-mediated dysregulation of EPC functions. DOX treatment induced REDD1 expression in bone marrow mononuclear cells (BMMNCs) and subsequently reduced mTORC1-dependent translation of endothelial growth factor (VEGF) receptor (Vegfr)-2 mRNA, but not that of the mRNA transcripts for Vegfr-1, epidermal growth factor receptor, and insulin-like growth factor-1 receptor. This selective event was a risk factor for the inhibition of BMMNC differentiation into EPCs and their angiogenic responses to VEGF-A, but was not observed in Redd1-deficient BMMNCs. Low-dose metronomic DOX treatment reduced the mobilization of circulating EPCs in B16 melanoma-bearing wild-type but not Redd1-deficient mice. However, REDD1 overexpression inhibited the differentiation and mobilization of EPCs in both wild-type and Redd1-deficient mice. These data suggest that REDD1 is crucial for metronomic DOX-mediated EPC dysfunction through the translational repression of Vegfr-2 transcript, providing REDD1 as a potential therapeutic target for the inhibition of tumor angiogenesis and tumor progression.
The principal objective of this study was to evaluate the chemopreventive and therapeutic effects of a combination of all-trans-retinoic acid (RA) and knockdown of delta-like 1 homologue (Drosophila) (DLK1) on neuroblastoma, the most common malignant disease in children. As unfavorable neuroblastoma is poorly differentiated, neuroblastoma cell was induced differentiation by RA or DLK1 knockdown. Neuroblastoma cells showed elongated neurite growth, a hallmark of neuronal differentiation at various doses of RA, as well as by DLK1 knockdown. In order to determine whether or not a combination of RA and DLK1 knockdown exerts a greater chemotherapeutic effect on neuroblastoma, cells were incubated at 10 nM RA after being transfected with SiRNA-DLK1. Neuronal differentiation was increased more by a combination of RA and DLK1 knockdown than by single treatment. Additionally, in order to assess the signal pathway of neuroblastoma differentiation induced by RA and DLK1 knockdown, treatment with the specific MEK/ERK inhibitors, U0126 and PD 98059, was applied to differentiated neuroblastoma cells. Differentiation induced by RA and DLK1 knockdown increased ERK phosphorylation. The MEK/ERK inhibitor U0126 completely inhibited neuronal differentiation induced by both RA and DLK1 knockdown, whereas PD98059 partially blocked neuronal differentiation. After the withdrawal of inhibitors, cellular differentiation was fully recovered. This study is, to the best of our knowledge, the first to demonstrate that the specific inhibitors of the MEK/ERK pathway, U0126 and PD98059, exert differential effects on the ERK phosphorylation induced by RA or DLK1 knockdown. Based on the observations of this study, it can be concluded that a combination of RA and DLK1 knockdown increases neuronal differentiation for the control of the malignant growth of human neuroblastomas, and also that both MEK1 and MEK2 are required for the differentiation induced by RA and DLK1 knockdown.
Dovitinib (TKI258) is a small molecule multi-kinase inhibitor currently in clinical phase I/II/III development for the treatment of various types of cancers. This drug has a safe and effective pharmacokinetic/pharmacodynamic profile. Although dovitinib can bind several kinases at nanomolar concentrations, there are no reports relating to osteoporosis or osteoblast differentiation. Herein, we investigated the effect of dovitinib on human recombinant bone morphogenetic protein (BMP)-2-induced osteoblast differentiation in a cell culture model. Dovitinib enhanced the BMP-2-induced alkaline phosphatase (ALP) induction, which is a representative marker of osteoblast differentiation. Dovitinib also stimulated the translocation of phosphorylated Smad1/5/8 into the nucleus and phosphorylation of mitogen-activated protein kinases, including ERK1/2 and p38. In addition, the mRNA expression of BMP-4, BMP-7, ALP, and OCN increased with dovitinib treatment. Our results suggest that dovitinib has a potent stimulating effect on BMP-2-induced osteoblast differentiation and this existing drug has potential for repositioning in the treatment of bone-related disorders.
Kim, Hong-Hee;Kim, Hyun-Man;Kwack, Kyu-Bum;Kim, Si-Wouk;Lee, Zang-Hee
BMB Reports
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v.34
no.5
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pp.421-427
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2001
Osteoclasts, cells primarily involved in bone resorption, originate from the hematopoietic precursor cells of the monocyte/macrophage lineage and differentiate into multinucleated mature forms. We developed an in vitro osteoclast culture system using embryonic chicken bone marrow cells. This culture system can be utilized in studies on the differentiation and function of osteoclasts. Phosphatidylinositol 3-kinase (PI3-kinase) and mitogen-activated protein kinases (MAPKs) have been implicated in diverse cellular functions including proliferation, migration, and survival. Using the developed avian osteoclast culture system, we examined the involvement of these kinases in osteoclast differentiation by employing specific inhibitors of the kinases. We Found that the inhibition of the PI 3-kinase, p38, or ERK interfered with osteoclast formation, suggesting that the signaling pathways that involve these molecules participate in the process of chicken osteoclast differentiation.
Setdb1, an H3-K9 specific histone methyltransferase, is associated with transcriptional silencing of euchromatic genes through chromatin modification. Functions of Setdb1 during development have been extensively studied in embryonic and mesenchymal stem cells as well as neurogenic progenitor cells. But the role of Sedtdb1 in myogenic differentiation remains unknown. In this study, we report that Setdb1 is required for myogenic potential of C2C12 myoblast cells through maintaining the expressions of MyoD and muscle-specific genes. We find that reduced Setdb1 expression in C2C12 myoblast cells severely delayed differentiation of C2C12 myoblast cells, whereas exogenous Setdb1 expression had little effect on. Gene expression profiling analysis using oligonucleotide microarray and RNA-Seq technologies demonstrated that depletion of Setdb1 results in downregulation of MyoD as well as the components of muscle fiber in proliferating C2C12 cells. In addition, exogenous expression of MyoD reversed transcriptional repression of MyoD promoter-driven luciferase reporter by Setdb1 shRNA and rescued myogenic differentiation of C2C12 myoblast cells depleted of endogenous Setdb1. Taken together, these results provide new insights into how levels of key myogenic regulators are maintained prior to induction of differentiation.
Park, Jin Woo;Cho, Hana;Oh, Hyein;Kim, Ji-Young;Seo, Sang-Beom
Molecules and Cells
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v.41
no.5
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pp.444-453
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2018
Aberrations in histone modifications are being studied in mixed-lineage leukemia (MLL)-AF9-driven acute myeloid leukemia (AML). In this study, we focused on the regulation of the differentiation of the MLL-AF9 type AML cell line THP-1. We observed that, upon phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) treatment, THP-1 cells differentiated into monocytes by down-regulating Aurora kinase A (AURKA), resulting in a reduction in H3S10 phosphorylation. We revealed that the AURKA inhibitor alisertib accelerates the expression of the H3K27 demethylase KDM6B, thereby dissociating AURKA and YY1 from the KDM6B promoter region. Using Flow cytometry, we found that alisertib induces THP-1 differentiation into monocytes. Furthermore, we found that treatment with the KDM6B inhibitor GSK-J4 perturbed the PMA-mediated differentiation of THP-1 cells. Thus, we discovered the mechanism of AURKA-KDM6B signaling that controls the differentiation of THP-1 cells, which has implications for biotherapy for leukemia.
Recently, it has been suggested that $p27^{Kip1}$, the cell cycle regulatory protein, plays a pivotal role in the progression of normal differentiation in murine embryonic stem (mES) cells. In the current study, we investigated the role of $p27^{Kip1}$ in the regulation of differentiation and apoptotic induction using Western blotting, quantitative real-time RT-PCR, and small interfering RNA (siRNA) assays and confocal laser scanning microscopic analysis of H9 human ES (hES) cells and H9-derived embryoid bodies (EBs) grown for 10 ($EB_{10}$) and 20 days ($EB_{20}$). Our results demonstrate that the proteins $p27^{Kip1}$ and cyclin D3 are strongly associated with cellular differentiation, and, for the first time, show that up-regulation of $p27^{Kip1}$ protects hES cells from inducing differentiation-associated and caspase 3-dependent apoptosis.
In the developing limb, chondrogenesis is an important prerequisite for the formation of cartilage whose template is required for bone formation. Chondrogenesis is a tightly regulated multi-step process, including mesenchymal cell recruitment/migration, prechondrogenic condensation of the mesenchymal cells, commitment to the chondrogenic lineage, and differentiation into chondrocytes. This process is controlled exquisitely by cellular interactions with the surrounding matrix and regulating factors that initiate or suppress cellular signaling pathways and transcription of specific genes in a temporal-spatial manner. Understanding the cellular and molecular mechanisms of chondrogenesis is important not only in the context of establishing basic principle of developmental biology but also in providing research direction toward preventive and/or regenerative medicine. Here, I will overview the current understanding of cellular and molecular mechanisms contributing to prechondrogenic condensation processes, the crucial steps for chondrogenesis, focusing on cell-cell and cell-matrix interactions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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