Park, Cheol-Ho;Yu, Chang-Yeon;Kim, Dong-Wook;Cho, Hye-Kyeong;Park, Kyeong-Suk;Seo, Jeong-Sik;Ahn, Sang-Deuk;Jang, Byeong-Ho
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.2
no.1
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pp.60-66
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1994
This study was conducted to determine the optimum conditions of inducing callus, proliferating callus, forming somatic embryos, and regenerating plantlets via somatic embryogenesis, for the purpose of producing artificial seeds and substantially developing plant factory technologies that can be employed to all seasons production of Bupleurum plants. Callus was efficiently induced from leaf tissues at three leaf stage in the MS medium supplemented with 2, 4-D 2mg /1 and thidiazuron(TDZ) 0.lmg /1. Callus induction from leaf tissues at maturity was mostly effective in the mixture of 2,4- D 2mg /1 and TDZ 1.0mg /1 while that from flower bud tissues was fairly good in the MS medium containing 2,4-D 1 or 2mg /1.Callus was formed in 15 to 20 days after culture initiation in the MS media supplemented with 2, 4- D 1-2mg /1 and TDZ 0.l-1.0mg /1. Such hormones as kinetin 3mg /1, GA 1mg /1, and the mixture of GA 1mg /1 and TDZ 1mg /1 effected markedly to proliferate the callus cells.The optimum temperature and light intensity for callus culture were found to be $25^{\circ}C$ and 3000 Lux, respectively. Direct plant regeneration from cultured callus was fairly made on hormone-free MS or half-strength MS medium. Somatic embryogenesis was most frequently observed in hormone-free media:60 somatic embryos per 20ml in MS medium and 28 somatic embryos per 20ml in half -strength MS medium. There were three stages-globular, heart, and torpedo-in development of somatic embryos, among which globular stage was more frequently observed in MS medium rather than in half-strength MS medium. Somatic embryos induced from suspension culture fairly differentiated a number of shoots and roots on hormone-free and half-strength MS solid medium.
Oldenlandia diffusa is a Chinese medicinal herb with antitumor activity capable of suppressing the growth of some cancer cell lines. Oleanolic acid and ursolic acid are triterpenoid compounds that exist in Oldenlandia diffusa. Recently, these have been noted for anti-inflammatory, anti-cancer, and hepato-protective effects. Application of both plant growth regulators, 2,4-D and kinetin, was found to be essential for the initiation of callus and suspension cells. Leaf blades of Oldenlandia diffusa was transformed into callus on Schenk and Hildebrandt medium supplemented with 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L kinetin, while optimum initiation condition for suspension cells of Oldenlandia diffusa was determined to be 0.75 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L kinetin. Chromatographic separation of oleanolic acid from its derivatives was achieved using Rexchrom S5-100-ODS column. Analytical conditions for oleanolic acid were determined as follows: flow rate at 1.0 mL/min, UV length at 200 nm and mobile phase of $80\%$ acetonitrile and $20\%$ water. Production of secondary metabolites was found to be increased by the treatment with elicitors or signal transducers. The maximum production of oleanolic acid was 99.6 mg/L in cultures with 0.5 mM salicylic acid. It is 1.74 times higher than that of control.
Conditions for efficient organogenesis and plant regeneration from Dianthus gratianopol suspension cultured cells were established. Shoot-forming calli of glossy surface, pale green and knobby type were selected from leaf explant-derived calli and were suspension-subcultured every week in CP liquid medium with 1.0 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L BAP. Combinations of 1.0 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L BAP, and 1.5 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L BAP were effective for the induction of regenerative callus from the suspension cultured cell clusters. Multiple shoot primordia were initiated from the green spots of these regenerative callus and formed shoots on MS medium with 1.0 mg/L TDZ and 0.5 mg/L PAA. Shoot regeneration frequency (calli regenerating at least one shoot) was about 87%. For plant regeneration, proliferated shoots were excised and transferred to MS medium with 0.1 mg/L NAA for root initiation after 9 weeks of culture. The regenerants were potted in soil and formed the flowering buds and petals. Also, adventitious shoots were formed from the excised green shoot primordia of regenerative callus and these shoots proliferated successfully and regenerated to whole plants.
We established an efficient plant regeneration system for Catharanthus roseus L. (G.) Don through somatic embryogenesis. Embryogenic callus was induced from hypocotyl of seed germinated in vitro. Somatic embryogenesis in Catharanthus has been categorized into three distinct stages: (1) initiation and proliferation of embryo; (2) maturation, and; (3) germination or plantlet conversion. Beside plant growth regulators, various stages of embryogenesis were screened for their response to a wide variety of factors (pH, gelrite, light, sugar alcohols, polyethyleneglycol and amino acids), which affect embryogenesis. All of the tested factors had a small to marked influence on embryogeny and eventual conversion to plantlets. The plantlets were acclimatized successfully in a greenhouse. To our knowledge, this is the first report describing a detailed study of various cultural factors which regulate embryogenesis in C. roseus. The results discussed in this paper may be used in mass propagation to produce medicinal raw material, and the embryo precursor cells could be used in genetic modification programmes that aim to improve the alkaloid yield as well.
Callus induction from leaf and stem explants of Arabidopsis thaliana was successfully obtained when leaf explants were cultured on MS medium containing 2.0 mg/L 2,4-D in the dark and also, when stem explants were cultured on CP medium containing 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BAP. Explant-derived sliced calli were suspension-subcultured every week in CP liquid medium with 0.5 mg/L 2,4-D and 0.1 mg/L BAP in the dark, and shoot-forming cell clusters of nodular, pale yellow and knobby type were selected after 7-8 weeks of culture. Shoots were initiated from the green spots of the selected shoot forming calli cultured on MS regeneration medium containing 0.05 mg/L IAA, 7.0 mg/L 2-iP and 30 g/L sucrose under continous illumination for four weeks. Shoot regeneration frequency (calli regenerating at least one shoot) was more than 50%. For plant regeneration, excised shoots were trnasferred to hormone free medium for root initiation after 4 weeks of culture. The regenerants were bolting after 2 weeks of culture and formed in vitro flowering buds within bracts after 4 weeks of culture.
Histidine kinase plays important roles in signal transduction in plant. We characterized the function of Arabidopsis histidine kinase 3 (AHK3) and analyzed the expression patterns of genes and proteins in its mutant ahk3 by trans-zeatin (t-zeatin). The ahk3 exhibited decreased sensitivity to t-zeatin during callus formation, seedling growth, and leaf senescence. From proteomic analysis of ahk3, eukaryotic translation initiation factor 5A-2, auxin binding glutathione S-transferase, and NDPK1 were identified not to be induced by t-zeatin, when compared to the wild-type. In addition, the expression levels of ARR4 and ARR16 among A-type response regulators (ARRs) markedly decreased in ahk3 by t-zeatin treatment. These results suggest that AHK3 plays an important role in cytokinin signaling and the proteins identified from proteomic analysis and specific ARRs, ARR4 and ARR16 may be directly or indirectly associated in AHK3-mediated cytokinin signaling.
The optimal level of growth regulator for callus initiation stem explants was BAP 0.1mg/L combined with 2,4-D 1.0 mg/L in Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 30g/L sucrose and 10g/L agar, and that for cell growth was BAP 0.1+2,4-D 0.5 mg/L in MS liquid medium. The regeneration frequency of P. oleracea cells was significantly increased by subjecting the cells to dessication for 1and 2 h up to 83%, respectively, as compared with untreated control showing 61%. Cell viability and survival rate was inhibited by pretreatment of 0.6% NaCl for 2 days, while regeneration ability was not affected by the treatment. Pretreatment of 100g/L sucrose for 2 days markedly stimulated the regeneration of cells up to 81%. These results suggest that in addition to physiological changes, water stress resulted from dessication and high concentration of sucrose and NaCl is closely related to the regeneration of P. oleracea cultured cells.
Callus cultures of Azadirachta indica flower petals were established on MS medium supplemented with naphthalene acetic acid (1 mg/L), kinetin (0.5 mg/L) and sucrose $(3\%\;w/v)$. Cell cultures of Azadirachta indica were established and studied the growth and production kinetics. Half 85 medium supplemented with dicamba (2 mg/L), kinetin (1 mg/L) and sucrose $(3\%\;w/v)$ was found to be suitable for initiation and maintenance of cell cultures from the calli. MS medium supplemented with naphthalene acetic acid (NAA) (1 mg/L), kinetin (0.5 mg/L) and sucrose $(3\%\;w/v)$ was found to be suitable as production medium. Around $80\%\;(0.05\%\;w/v)$ of azadirachtin was found to be intracellular. The effect of various precursors, elicitors, permeabilizing agents and growth retardants in cell cultures was studied. The addition of precursors sodium acetate (10 mg/L), squalene (10 mg/L), isopentenyl pyrophosphate (1 mg/L) and geranyl pyrophosphate (1 mg/L) to the cell cultures on day 3 has shown significant increase in bioproduction of azadirachtin $(64.94{\pm}4.40\;mg/L,\;72.81{\pm}0.04\;mg/L,\;51.63{\pm}1.26\;mg/L\;and\;30.70{\pm}0.28\;mg/L\;respectively)$ over the control cultures $(4.70{\pm}0.27 mg/L)$. $5\%$ v/v cell extracts of Fusarium solani has shown moderate increase in the content of azadirachtin $(5.71{\pm}0.34\;mg/L)$ when compared to control cultures $(2.40{\pm}0.56\;mg/L)$. The addition of methyl jasmonate $(500\;{\mu}M/L)$ on day 3 has shown $\~4$ fold improvement in bioproduction of azadirachtln $(6.92{\pm}0.11\;mg/L)$ when compared to control cultures $(1.63{\pm}0.02\;mg/L)$. There was no significant effect of the studied growth retardants and permeabilizing agents on bioproduction of azadirachtin. Cells are cultivated in large volumes using the effective precursors.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2003.04a
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pp.61-62
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2003
Clonal propagation of high-value forest trees through somatic embryogenesis (SE) has the potential to rapidly capture the benefits of breeding or genetic engineering programs and to improve raw material uniformity and quality. A major barrier to the commercialization of this technology is the low quality of the resulting embryos. Several factors limit commercialization of SE for Corsican pine, including low initiation rates, low culture survival, culture decline causing low or no embryo production, and inability of somatic embryos to fully mature, resulting in low germination and reduced vigour of somatic seedlings. The objective was to develop a Corsican pine maturation medium that would produce cotyledonary embryos capable of germination. Treatments were arranged in a completely randomized design. Data were analyzed by analysis of variance, and significant differences between treatments determined by multiple range test at P=0.05. Corsican pine (Pinus nigra var. maritima) cultures were initiated on modified !P6 medium. Modifications of the same media were used for culture multiplication and maintenance. Embryogenic cultures were maintained on the same medium semi solidified with 2.5 g/l Gelrite. A maturation medium, capable of promoting the development of Corsican pine somatic embryos that can germinate, is a combination of iP6 modified salts, 2% maltose, 13% polyethylene glycol (PEG), 5 mg!l abscisic acid (ABA), and 2.5 g/l Gelrite. After initiation and once enough tissue developed they were grown in liquid medium. Embryogenic cell suspensions were established by adding 0.951.05 g of 10- to 14-day-old semisolid-grown embryogenic tissue to 9 ml of liquid maintenance media in a 250ml Erlenmeyer flask. Cultures were then incubated in the dark at 2022$^{\circ}$C and rotated at 120 rpm. After 2.53 months on maturation medium, somatic embryos were selected that exhibited normal embryo shape. Ten embryos were placed horizontally on 20 ml of either germination medium ($\frac{2}{1}$strength Murashige and Skoog (1962) salts with 2.5 g/l activated charcoal) or same medium with copper sulphate adjusted to 0.25 mg/1 to compensate for copper adsorption by activated carbon. 2% and 4% maltose was substituted by 7.5% and 13% PEG respectively to improve the yield of the embryos. Substitution of' maltose with PEG was clearly beneficial to embryo development. When 2% of the maltose was replaced with 7.5% PEG, many embryos developed to large bullet-shaped embryos. At latter stages of development most embryos callused and stopped development. A few short, barrel-shaped cotyledonary embryos formed that were covered by callus on the sides and base. When 4% of the maltose was removed and substituted with 13% PEG, the embryos developed further, emerging from the callus and increasing yield slightly. Microscopic examination of the cultures showed differing morphologies, varying from mostly single cells or clumps to well-formed somatic embryos that resembled early zygotic embryos only liquid cultures with organized early-stag. A procedure for converting and acclimating germinants to growth in soil and greenhouse conditions is also tested. Seedling conversion and growth were highly related to the quality of the germinant at the time of planting. Germinants with larger shoots, longer, straighter hypocotyls and longer roots performed best. When mature zygotic embryos germinate the root emerges, before or coincident with the shoot. In contrast, somatic embryos germinate in reverse sequence, with the cotyledons greening first, then shoot emergence and then, much later, if at all, the appearance of the root. Somatic seedlings, produced from the maturation medium, showed 100% survival when planted in a field setting. Somatic seedlings showed normal yearly growth relative to standard seedlings from natural seed.
Calli were induced from leaf base region of germinated rice(Oryza sativa L. cv. Nakdong) with high frequency of up to 65% on LS medium supplemented with $2.5mg/{\ell}2$, 4-D in the dark at $27^{\circ}C$. Embryogenic calli of pale yellow, globular type were selected and used for the initiation of cell suspension cultures in AA2 liquid medium with $2mg/\ell$ 2,4-D, 0.2mg/$\ell$ kinetin arid $0.1mg/\ell$ GA3. Protoplasts were isolated from the embryogenic cell suspensions after 4 months of culture and then were electroporated with 400V/cm for 1 msec. Electroporated protoplasts divided with plating efficiency of 1.1% on PCM liquid medium supplemented with $2.5mg/\ell$ 2, 4-D, $0.1mg/\ell$ kinetin and 10mM proline. The protoplasts-derived microcalli were cultured on $0.2{\mu}m$ membrane fitter placed onto LS2.5 solid medium containing fine suspension cells as a feeder cells, for 2 weeks in the dark at $27^{\circ}C$. After an additional 2 weeks of culture under fluorescent light of $30{\pm}/3{\mu}E$.m^{-2}S^{-1}, yellow calli of 2mm diameter were transferred to regeneration medium. Shoots were produced from the green spot of protoplasts-derived calli and plants were regenerated form protoplast-derived green calli with frequencies of 11∼33%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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