Cyclic AMP receptor proteins(CRP) activate many genes in Escherichia coli by binding of cAMP with not fully known mechanism. CRP existed as apo-CRP in the absence of cAMP, $CRP;(cAMP)_2$$_2$ at low(micromolar) cAMP concentration, or $CRP;(cAMP)_4$ at high(millimolar) concentration of cAMP. This study is designed to measure the thermal stability of S83G CRP, which substituted glycine for serine at amino acid 83 position, with CD spectrapolarimeter at 222nm by the constant elevation of temperature from $20^{\circ]C\; to\; 90^{\circ}C\; at\; 1^{\circ}C/min$. The non-linear regression analysis showed that melting temperatures were 68.4, 72.0, and $82.3^{\circ}C$ for no cAMP, 0.1mM cAMP, and 5mM cAMP, respectively. Result showed the strong thermal stability of CRP by binding of additional cAMP molecules to region between the hinge region and helix-turn-helix(HTH) motif at 5mM cAMP concentration.
To assess the role of cAMP on the growth and proliferation of Toxoplasma in HL-60 cells we tested the effect of exogenous cAMP and cAMP analogues to the co-culture system of Toxoplasma and HL-60 cells. cAMP, dbcAMP, and br-cAMP stimulated the growth of Texoplasma at a specific concentration, i.e., 100 mM, l00 mM, and 10-1 mM, respectively. There were differences in growth induction kinetics and in the rate of promotion. These results were further verified by treating the co-culture with adenylate cyclase activator, pNHppG, cAMP phosphodiesterase activators, imidasole and A23187, and cAMP phosphodiesterase inhibitors, IBMX, compound 48/80, and theophylline, separately. When the cytosolic cAMP levels increased by the reagents mentioned above, Toxoplasma in the cytoplasm of HL-60 cells stimulated to proliferate more rapidly with concentration-dependent modes compared to the control, and vice versa. It is suggested that some mechanisms are activated by the high levels of cAMP in the cytoplasm, which result in the stimulation of Toxoplasma proliferation.
We previously showed that transient exposure of Rana dybowskii follicles to exogenous cAMP in vitro could induce meiotic maturation. The present experiments were carried out to acertain whether the exogenous cAMP penetrate into the follicles. Isolated follicles were precultured in the medium containing cAMP (2.5 mM) for 6 hours and then cultured further in plain medium for 18 hours. The change of intrafollicular cAMP levels during the culture period were examined by utilizing cAMP radioimmunoassay (RIA). The intrafollicular levels of cAMP increased about thirty times of the basal level (about 3 p mole/follicle) in two hours and reached a peak in six hours (170 p mole/follicle) during the preculture period. However, when the follicles were transferred to plain medium, the levels decreased markedly in six hours to very low levels (about 10 p mole/ follicle), and kept the same levels thereafter. But the levels did not decrease to the basal levels. The increase and decrease of the intrafollicular cAMP was not affected by the presence of isobutyl methylxanthine (IBMX) or progesterone. The data suggest that exogenous cAMP pene-trate into the follicles and the cAMP accumulated by the follicles are degraded very rapidly.
The effect of adenosine 3', 5'-cyclic monophosphate on the ATPase activity and on the active transport of Ca of the sarcoplasmic reticulum fragments of the rabbit skeletal muscle was studied. Cyclic AMP (cAMP) had no effect on the ATPase activity of the fragments (8,000 ~ 20,000 $\times$ G and 20,000 ~ 36,000 $\times$ G fractions). $N^6$, O^{2'} -Dibutyryl cAMP (DBcAMP) had either no effect on the activity. On the other hand, theophylline (1 mM) increased the activity by about 20%. The active uptake of Ca by the sarcoplasmic reticulum fragments was inhibited by the presence of 1$\times$$10^{-6}$ ~ 1 $\times$$10^{-3}$M of cAMP. The presence of DBcAMP or theophylline also inhibited the uptake. It is, therefore, concluded that the Ca uptake of the sarcoplasmic reticulum seems to be controlled by cAMP.
In this study, we have examined the role of cAMP in gap junctional communication (GJC) in preimplantation mouse embryos. GJC was monitored by Lucifer Yellow (LY) injected into one blastomere of compacted embryos. The speed of GJC was defined as the time taken for the last blastomere of the embryo to become visibly fluorescent. The median time for 8-cell embrvos (140 sec) was similar to that for 16-cell (135 sec). To determine whether cAMP and cAMP-dependent protein kinase (PKA) are involved in the regulation of GJC, the effects of PKA inhibitor (H8) and cAMP analogues (Rp-cAMP and 8-Br-cAMP) on dye transfer between blastomeres of compacted embryos were examined. Some of the embryos treated with either H8 or Rp-cAMP failed to transfer LY to all blastomeres within 10 min. In contrast, 8-Br-cAMP speeded up fluorescent dye transfer. The median time to fill all blastomeres with LY was 140 sec in untreated controls and 90 sec in siblings treated with 8-Br-cAMP. Inhibition of PKA by H8 or Rp-cAMP induced delay or arrest in embryo development after compaction, but the increase of intracellular cAMP showed no effect. These findings suggest that GJC in preimplantation mouse embryos is regulated by cAMP-PKA pathway and transient interference by PKA inhibitors induces the developmental delay beyond compaction.
The cyclic AMP (cAMP) pathway plays a major role in growth, sexual differentiation, and virulence factor synthesis of pathogenic fungi. In Cryptococcus neoformans, perturbation of the cAMP pathway, such as a deletion in the gene encoding adenylyl cyclase (CAC1), causes defects in the production of virulence factors, including capsule and melanin production, as well as mating. Previously, we performed a comparative transcriptome analysis of the Ras- and cAMP- pathway mutants, which revealed 163 potential cAMP-regulated genes (38 genes at a 2-fold cutoff). The present study characterized the role of one of the cAMP pathway-dependent genes (serotype A identification number CNAG_ 06576.2). The expression patterns were confirmed by Northern blot analysis and the gene was designated cAMP-regulated gene 1 (CAR1). Interestingly, deletion of CAR1 did not affect biosynthesis of any virulence factors and the mating process, unlike the cAMP-signaling deficient cac1$\Delta$ mutant. Furthermore, the car1$\Delta$ mutant exhibited wild-type levels of the stress-response phenotype against diverse environmental cues, indicating that Car1, albeit regulated by the cAMP-pathway, is not essential to confer a cAMP-dependent phenotype in C. neoformans.
The purpose of the present experiment is to make certain the exsistence of cAMP phosphodiesterase (PDE) in mouse oocytes and confirm its possible role on meiotic resumption. The results showed two types of cAMP in the oocytes with different Michaelis constants (Km) with specific maximum (Vmax); The Km and Vmax of one of two types of PDE were estimated at $0.14 \\pm 0.01 \\muM$ and $0.42 \\pm 0.07$ fmol cAMP hydrolyzed/oocyte/minute, and the other at $14.5 \\pm 2.0 \\muM$ and $2.2 \\pm 0.5$ fmol cAMP hydrolyzed/oocyte/minute. cAMP hydrolysis by PDE was reversibly inhibited in vitro by presence of theophylline or isobutyl-methyl-xanthine (IBMX), which is well known as an inhibitor of oocyte maturation. Consequently, it can be assumed that maturation of oocyte is affected by the high level of intracellular cAMP, and its level is well maintained by presence of PDE inhibitor, such as theophylline and IBMX.
Dibutyryl-cyclic AMP (db-cAMP) and forskolin were used to investigate vasodilating mechanism of cAMP in rabbit aorta. Db-cAMP and forskolin inhibited the development of contractile tension induced by norepinephrine (NE) concentration-dependently. However, high $K{^+}-induced$ contractile tension was inhibited less effectively by db-cAMP and forskolin. Db-cAMP and forskolin inhibited $^{45}Ca^{2+}$ uptake increased by NE. Forskolin seemed to inhibit $^{45}Ca^{2+}$ uptake increased by high $K{^+}$, but this inhibition was not significant statistically. Db-cAMP inhibited $Ca^{2+}-transient$ contraction by NE in $Ca^{2+}-free$ solution. In conclusion, it seems that cAMP blocks $Ca^{2+}$ influx through receptor operated $Ca^{2+}$ channels (ROCs), but that the effect of cAMP on $Ca^{2+}$ influx through voltage gated $Ca^{2+}$ channels (VGCs) is not clear in this experiment. Furthermore, cAMP is likely to inhibit calcium release from the intracellular stores.
It has been well known that ovarian steroids, estradiol and progesterone play an important role in the endometrial preparation for the implantation process. The present investigation was undertaken to correlate function of ovarian steroids with cAMP concentrations in uterine tissues of rat during the various stages of the preimplantation period. Rats ovariectomized on day 2 were treated with estradiol or/and progesterone on day 3 or on day 4 and cAMP concentrations in uterine tissues were determined by competitive protein - binding assay in control - and steroid treated - ovariectomized rats. The results obtained are as follows; 1. In control rats, cAMP concentrations in uterine tissues were decreased with preimplantation period proceeded whereas cAMP concentrations were increased and showed the highest levels on day 6 in ovariectomized rats. 2. In rats treated with progesterone only or progesterone with estradiol after ovariectomy, cAMP concentrations on day 6 were lower than those of ovariectomized control but higher than those of intact control rats while estradiol only treatment decreased cAMP concentrations on day 3 and day 6, compared with those from intact- and ovariectomized-controls. It is, therefore, concluded that the concentrations of cAMP in uterine tissues were lower in estrogen-treated rats than in ovariectomized rats, suggesting the involvement of cAMP in the regulation of uterine tissue differentiation.
This study demonstrated that upregulation of gene expression of endoplasmic reticulum (ER) stress chaperones (Bip, ERp29, calnexin, and PDI), ER stress sensors (PERK, ATF6, and Ire1), and cAMP phosphodiesterase 7A1 (cAMP PDE7A1) was induced by ER stresses in FRTL5 cells. While removing A23187 from the culture medium restored upregulation of cAMP PDE7A1 gene expression, removal of thapsigargin did not recover its expression. In addition, cAMP PDE7A1 gene expression was strongly inhibited by treatment with A23187 combined with thyroid stimulating hormone (TSH). The results are the first to show that ER stress induces cAMP PDE7A1 gene expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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