Park, Young-Il;Kim, Jae-Hun;Lee, Jae-Deok;Kim, Yong-Woo;Kim, In-Soo
BMB Reports
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제31권3호
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pp.221-226
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1998
Phosphorylation of phytochrome may play important functional roles to control plant photomorphogenesis. Many attempts have failed to identify the protein kinase that phosphorylates phytochrome in vivo. It has been reported that a polycation-stimulated protein kinase activity was associated with the purified phytochrome. However, it is not known if the kinase activity is an intrinsic property of phytochrome or whether it comes from a contaminant of the purified phytochrome. In the present study, three protein kinases that phosphorylate phytochrome have been identified from etiolated oat seedlings. A polycationstimulated protein kinase that had very similar enzymatic properties with that associated with the purified phytochrome was identified in the cytosolic extract. It phosphorylated several contaminant proteins in the kinase preparation as well as phytochrome and had a broad substrate specificity. A CK II-type protein kinase phosphorylated phytochrome and the exogenously added casein. It is likely that this kinase may not be a feasible candidate for the kinase phosphorylating phytochrome in vivo since the content of the kinase seemed to well exceed the content of phytochrome in the etiolated oat seedlings. Another protein kinase that had unique enzymatic properties phosphorylated phytochrome very specifically and seemed to be present in a small quantity in the etiohlted seedlings. It is expected that one of three kinases may be responsible for the phytochrome phosphorylation in vivo.
An inositol monophosphatase (IMPase) was purified to homogeneity from rat duodenal mucosa for the first time and its enzymatic properties were investigated. Rat duodenal mucosa peculiarly exhibited the highest IMPase activity among various rat tissues examined. By means of ammonium sulfate precipitation, followed by Q-Sepharose, polylysine agarose, reactive-red agarose column chromatography, Uno-Q FPLC, and Bio-Silect FPLC, duodenal IMPase was purified 223-fold to a specific activity of 13.6 U/mg protein. The molecular mass of the native enzyme was estimated to be 48,000 Da on gel filtration. The subunit molecular mass was determined by SDS-PAGE to be 24,000 Da. These results indicate that duodenal IMPase is a dime ric protein made up of identical subunits. Rat duodenal IMPase has distinct properties from brain IMPase. It has a broad spectrum of substrate specificity and is insensitive to $Li^+$. Duodenal IMPase does not absolutely require $Mg^{2+}$ for its catalytic activity. Furthermore, duodenal IMPase is less stable to heat than brain enzyme. It is suggested that the rat duodenal mucosa needs a large amount of IMPase whose properties are quite different from that of the brain enzyme.
The baculovirus expression system is a powerful method for producing large amounts of the human erythrocyte-type glucose transport protein, heterologously. Characterization of the expressed protein is expected to show its ability to transport sugars directly. To achieve this, it is a prerequisite to know the properties of the endogenous sugar transport system in Spodoptera frugiperda Clone 21 (Sf21) cells, which are commonly employed as a host permissive cell line to support the baculovirus replication. The Sf21 cells can grow well on TC-100 medium that contains 0.1% D-glucose as the major carbon source, strongly suggesting the presence of endogenous glucose transport system. However, unlike the human glucose transport protein that has a broad substrate and inhibitor specificity, very little is known about the nature of the endogenous sugar transport system in Sf21 cells. In order to characterize further the inhibitor recognition properties of the Sf21 cell transporter, the ability of phloretin, cytochalasin B and D-fructose to inhibit 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) transport was examined by measuring inhibition constants $(K_i)$. The $K_i's$ for reversible inhibitors were determined from plots of uptake versus inhibitor concentration. The 2dGlc transport in the Sf21 cells was very potently inhibited by phloretin, the aglucone of phlorizin with a $K_i$ similar to the value of about $2{\mu}M$ reported for inhibition of glucose transport in human erythrocytes. However, the Sf21 cell transport system was found to differ from the human transport protein in being much less sensitive to inhibition by cytochalasin B (apparent $K_i$ approximately $10\;{\mu}M$). In contrast, It is reported that the inhibitor binds the human erythrocyte counterpart with a $K_d$ of approximately $0.12\;{\mu}M$. Interestingly, the Sf21 glucose transport system also appeared to have high affinity for D-fructose with a $K_i$ of approximately 5mM, contrasting the reported $K_m$ of the human erythrocyte transport protein for the ketose of 1.5M.
The disaccharide trehalose ($\alpha$-D-glucopyranosyl-$\alpha$-D-glucopyranoside) is found in variety of organ-isms that are able to withstand almost complete desiccation. In order to identify the function of trehalose in plants, we isolated Arabidopsis trehalase (AtTRE) gene that encodes the enzyme able to hydrolyze trehalose to glucose, and trehalose-6-phosphate synthase isolog, TPS3 gene by RT-PCR. The AtTRE had the substrate specificity to hydrolyze only trehalose, and a broad pH range of enzyme activity. The AtTRE promoter/GUS reporter gene was expressed in cotyledons, mature leaf tissues including guard cells, and developing siliques. The GUS expression driven by AtTPS3 promoter was significant in root tissues, and the level of GUS activity was much higher than that of the pBll 21 control seedlings. The knockout of AtTPS3 gene in Arabidopsis resulted in the retarded root development, whereas the overexpression of AtTPS3 increased the root elongation in the presence of sucrose in MS medium. Possible functions of AtTRE and AtTPS3 in plant will be discussed. In addition, ectopic expression of yeast TPS1 driven by the inducible promoters in tobacco and potato conferred the plants on the drought and freezing tolerances.
Flavin adenine dinucleotide-dependent glucose dehydrogenase (FAD-GDH) can utilize a variety of external electron acceptors and also has stricter substrate specificity than any other glucose oxidoreductases, which makes it the ideal diagnostic enzyme in the field of glucose biosensors. A gene coding for a hypothetical protein, similar to glucose oxidase and derived from Aspergillus terreus NIH2624, was overexpressed in Pichia pastoris GS115 under the control of an AOX1 promoter with a level of 260,000 U/l in the culture supernatant after fed-batch cultivation for 84 h. After a three-step purification protocol that included isopropanol precipitation, affinity chromatography, and a second isopropanol precipitation, recombinant FAD-GDH was purified with a recovery of 65%. This is the first time that isopropanol precipitation has been used to concentrate a fermentation supernatant and exchange buffers after affinity chromatography purification. The purified FAD-GDH exhibited a broad and diffuse band between 83 and 150 kDa. The recombinant FAD-GDH was stable across a wide pH range (3.5 to 9.0) with maximum activity at pH 7.5 and $55^{\circ}C$. In addition, it displayed very high thermal stability, with a half-life of 82 min at $60^{\circ}C$. These characteristics indicate that FAD-GDH will be useful in the field of glucose biosensors.
식중독 병원균인 장염비브리오균 (V. parahaemolyticus)의 세포외 분비 효소 중 콜라겐분해효소를 발현벡터인 pET-29b에 클로닝시키고 대장균에서 발현시킨 다음, 부분정제하여 그 특성을 조사하였다. V. parahaemolyticus collagenase는 $(NH_4)_2So_4$침전, affinity adsorption, 그리고 Sephacryl S-100 gel filtration 과정을 통하여 부분정제 되었다. 이 collagenase는 73%의 회수율과 43.7의 정제도를 나타내었으며, 전기영동시 분자량은 약 35 kDa로 나타났다. 이 효소의 최적 pH 및 온도는 6~12와 $35^{\circ}C$이었고, 온도안정성 조사에서 $55^{\circ}C$까지는 90% 잔존 찬성을 유지하였으나 $60^{\circ}C$이상에서는 급격하게 효소활성이 실활되었다. 기질특이성조사에서 type I collagen과 콜라겐분해효소의 합성기질로 알려진 Z-GPGGPA에서 gelatin과 casein에 비해 높은 활성을 보이는 것으로 보아 이 효소가 진정한 콜라겐분해효소라는 것을 알 수 있었다.
Chattopadhyay Soumen;Krishnan Natraj;Maji Manas D.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제12권1호
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pp.21-28
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2006
Peroxidase activity was measured in brown leaf spot pathogen (Myrothecium roridum) inoculated potted mulberry (Morus alba) during pre-symptomatic to various symptom development stages and compared with corresponding healthy leaf tissues. The enzyme showed a pH optimum of 7.0 and the activity was linearly increased up to 15 min of incubation. The peroxidase had a broad substrate specificity and the rates of oxidation were in the rank of pyrogallol> guaiacol> ascorbate at pH 7.0. Catechol at 10 mM inhibited 89% of guaiacol-peroxidase and 76% pyrogallol-peroxidase activities, indicated higher non-specific peroxidation in pyrogallol dependent assay system in mulberry than guaiacol. The optimum requirement for the guaiacol dependent assay was 0.2 ml (${\approx}40-60{\mu}g$ equivalent of protein) of crude enzyme source. Excepting the 8th leaf from the apex, the peroxidase activity did not vary appreciably in different leaf positions. In pre-symptomatic phases, an initial (1 to 5 min) rise of peroxidase activity was noticed in inoculated leaves, and then maintained a plateau up to 300 min. In contrary, non-infected tissue showed a slightly increased trend of enzyme level up to 420 min. In infected tissue, a sharp transient increase (3.1 fold) of peroxidase activity appeared between 300 - 420 min post infections. Afterwards, significantly different but steady maintenance of enzyme levels were observed in two treatments. On the other hand, during symptom development, a sharp increase in peroxidase activity was noticed up to 4th grade of lesion appearance (25.1 % to 50% of leaf area infection), and then declined slightly. However, in non-infected but same age healthy leaves, such huge fluctuations of enzyme level did not apparent. A high positive correlation $(R^2=0.92)$ between peroxidase activity and leaf spot development grades was also marked. The result implies that pre-symptomatic burst (between 1 - 5 and 300 - 420 min) and subsequent increased trend of guaiacol peroxidase activity may require for the symptomatic manifestation of Myrothecium leaf spot in mulberry.
Kim, Do Young;Shin, Dong-Ha;Jung, Sora;Kim, Hyangmi;Lee, Jong Suk;Cho, Han-Young;Bae, Kyung Sook;Sung, Chang-Keun;Rhee, Young Ha;Son, Kwang-Hee;Park, Ho-Yong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제24권7호
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pp.943-953
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2014
The XylH gene (1,167-bp) encoding a novel hemicellulase (41,584 Da) was identified from the genome of Microbacterium trichothecenolyticum HY-17, a gastrointestinal bacterium of Gryllotalpa orientalis. The enzyme consisted of a single catalytic domain, which is 74% identical to that of an endo-${\beta}$-1,4-xylanase (GH10) from Isoptericola variabilis 225. Unlike other endo-${\beta}$-1,4-xylanases from invertebrate-symbiotic bacteria, rXylH was an alkali-tolerant multifunctional enzyme possessing endo-${\beta}$-1,4-xylanase activity together with ${\beta}$-1,3/${\beta}$-1,4-glucanase activity, which exhibited its highest xylanolytic activity at pH 9.0 and 60oC, and was relatively stable within a broad pH range of 5.0-10.0. The susceptibilities of different xylosebased polysaccharides to the XylH were assessed to be as follows: oat spelts xylan > beechwood xylan > birchwood xylan > wheat arabinoxylan. rXylH was also able to readily cleave p-nitrophenyl (pNP) cellobioside and pNP-xylopyranoside, but did not hydrolyze other pNP-sugar derivatives, xylobiose, or hexose-based materials. Enzymatic hydrolysis of birchwood xylan resulted in the product composition of xylobiose (71.2%) and xylotriose (28.8%) as end products.
Zhao, Yanyu;Meng, Kun;Luo, Huiying;Yang, Peilong;Shi, Pengjun;Huang, Huoqing;Bai, Yingguo;Yao, Bin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제21권8호
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pp.861-868
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2011
A xylanase gene, xyn7c, was cloned from Paenibacillus sp. 12-11, an alkalophilic strain isolated from the alkaline wastewater sludge of a paper mill, and expressed in Escherichia coli. The full-length gene consists of 1,296 bp and encodes a mature protein of 400 residues (excluding the putative signal peptide) that belongs to the glycoside hydrolase family 10. The optimal pH of the purified recombinant XYN7C was found to be 8.0, and the enzyme had good pH adaptability at 6.5-8.5 and stability over a broad pH range of 5.0-11.0. XYN7C exhibited maximum activity at $55^{\circ}C$ and was thermostable at $50^{\circ}C$ and below. Using wheat arabinoxylan as the substrate, XYN7C had a high specific activity of 1,886 U/mg, and the apparent $K_m$ and $V_{max}$ values were 1.18 mg/ml and 1,961 ${\mu}mol$/mg/min, respectively. XYN7C also had substrate specificity towards various xylans, and was highly resistant to neutral proteases. The main hydrolysis products of xylans were xylose and xylobiose. These properties make XYN7C a promising candidate to be used in biobleaching, baking, and cotton scouring processes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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