Receptor activator of NF-${\kappa}B$ ligand (RANKL) triggers the differentiation of bone marrow-derived monocyte/macrophage precursor cells (BMMs) of hematopoietic origin into osteoclasts through the activation of mitogen-activated protein (MAP) kinases and transcription factors. Recently, reactive oxygen species (ROS) and antioxidant enzymes were shown to be closely associated with RANKL-mediated osteoclast differentiation. Although glutaredoxin2 (Glrx2) plays a role in cellular redox homeostasis, its role in RANKL-mediated osteoclastogenesis is unclear. We found that Glrx2 isoform b (Glrx2b) expression is induced during RANKLmediated osteoclastogenesis. Over-expression of Glrx2b strongly enhanced RANKL- mediated osteoclastogenesis. In addition, Glrx2b-transduced BMMs enhanced the expression of key transcription factors c-Fos and NFATc1, but pre-treatment with SB203580, a p38-specific inhibitor, completely blocked this enhancement. Conversely, down-regulation of Glrx2b decreased RANKL- mediated osteoclastogenesis and the expression of c-Fos and NFATc1 proteins. Also, Glrx2b down-regulation attenuated the RANKL-induced activation of p38. Taken together, these results suggest that Glrx2b enhances RANKL-induced osteoclastogenesis via p38 activation.
Background: Adipose tissues were initially introduced as energy storages, but recently they have become famous as an endocrine organ which produces and secretes various kinds of molecules to make physiologic and metabolic changes in human body. It has been studied that these molecules are secreted in abundance as the adipose tissue becomes bigger along with obesity. Furthermore, it has been found that they are mediating systemic inflammation and generation of metabolic diseases such as type 2 diabetes and atherosclerosis. On the basis of these, we studied previous papers which have been researched about the interaction between preadipocytes and macrophages, adipose tissues and lymph nodes, and adipose tissue secreting molecules. Results: Firstly, preadipocytes and macrophages are expressing similar transcriptomes and proteins, and preadipocytes can be converted to mature macrophages which have phagocytic activity. Moreover, the monocytes, which initially located in the bone marrow, are filtrated to the adipose tissue by monocyte chemotatic protein-1 and are matured to macrophages by colony stimulating factor-1. Secondly, adipose tissues and their associated lymph nodes are interacting each other in terms of energy efficiency. Lymph nodes promote lipolysis in adipose tissues, and polyunsaturated fatty acids in adipocytes become energy sources for dendritic cells. Lastly, adipose tissues produce and secrete proinflammatory molecules such as leptin, adiponectin, TNF-${\alpha}$, IL-6, and acute phase proteins, which induce the inflammation and potentially generate metabolic diseases. Conclusion: According to these, we can link adipose tissues to inflammation, but we need to affirm the actual levels and roles of adipose tissue-derived proinflammatory molecules in human body.
Silwal, Prashanta;Lim, Kyu;Heo, Jun-Young;Park, Jong IL;Namgung, Uk;Park, Seung-Kiel
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.22
no.4
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pp.379-389
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2018
A nucleobase adenine is a fundamental component of nucleic acids and adenine nucleotides. Various biological roles of adenine have been discovered. It is not produced from degradation of adenine nucleotides in mammals but produced mainly during polyamine synthesis by dividing cells. Anti-inflammatory roles of adenine have been supported in IgE-mediated allergic reactions, immunological functions of lymphocytes and dextran sodium sulfate-induced colitis. However adenine effects on Toll-like receptor 4 (TLR4)-mediated inflammation by lipopolysaccharide (LPS), a cell wall component of Gram negative bacteria, is not examined. Here we investigated anti-inflammatory roles of adenine in LPS-stimulated immune cells, including a macrophage cell line RAW264.7 and bone marrow derived mast cells (BMMCs) and peritoneal cells in mice. In RAW264.7 cells stimulated with LPS, adenine inhibited production of pro-inflammatory cytokines $TNF-{\alpha}$ and IL-6 and inflammatory lipid mediators, prostaglandin $E_2$ and leukotriene $B_4$. Adenine impeded signaling pathways eliciting production of these inflammatory mediators. It suppressed $I{\kappa}B$ phosphorylation, nuclear translocation of nuclear factor ${\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$), phosphorylation of Akt and mitogen activated protein kinases (MAPKs) JNK and ERK. Although adenine raised cellular AMP which could activate AMP-dependent protein kinase (AMPK), the enzyme activity was not enhanced. In BMMCs, adenine inhibited the LPS-induced production of $TNF-{\alpha}$, IL-6 and IL-13 and also hindered phosphorylation of $NF-{\kappa}B$ and Akt. In peritoneal cavity, adenine suppressed the LPS-induced production of $TNF-{\alpha}$ and IL-6 by peritoneal cells in mice. These results show that adenine attenuates the LPS-induced inflammatory reactions.
We have cloned the mouse neurotensin/neuromedin N (NT/N) gene from the murine mast cell line Cl.MC/C57.1 for the first time. The murine NT/N cDNA clone consisted of 765 nucleotides and coded for 169 peptide residues with an N-terminal signal peptide, and the C-terminal region contained of one copy of neurotensin (NT) and one copy of neuromedin N (NN). Total of four Lys-Arg dibasic motifs were present; one each at the middle of the open reading frame, at the N-terminal of NN, at the C-terminal of NT, and between NN and NT. Amino acid sequence analysis of the mouse NT/N revealed 90% homology to that of the rat NT/N gene. NT/N is expressed in murine mast cell lines (Cl.MC/C57.1 and P815), but not in murine bone marrow-derived mast cells (BMMCs), murine macrophage cell line (RAW 264.7), nor in murine T cell line (EL-4). NT/N mRNA in C1.MC/C57.1 is highly inducible by IgE cross-linking, phorbol myristate acetate, neurotensin, and substance P. Following the treatment of demethylating agent, 5-azacytidine (5-azaC), the NT/N gene was induced in BMMCs in response to IgE cross-linking. 5-azaC-treated BMMCs did not express the NT/N gene without additional stimuli. These findings suggested that the regulation of NT/N gene expression was dependent on the effects of not only gene methylation but also enhancer and/or repressor proteins acting on the NT/N promoter.
Kim, Ki-Hye;Yang, Chul-Su;Shin, A-Rum;Jeon, So-Ra;Park, Jeong-Kyu;Kim, Hwa-Jung;Jo, Eun-Kyeong
IMMUNE NETWORK
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v.11
no.2
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pp.123-133
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2011
Background: Mycobacterium tuberculosis (Mtb) heparin binding hemagglutinin (HBHA) is an Ag known to evoke effective host immune responses during tuberculosis infection. However, the molecular basis of the host immune response to HBHA has not been fully characterized. In this study, we examined the molecular mechanisms by which HBHA can induce the expression of proinflammatory cytokines in macrophages. Methods: HBHA-induced mRNA and protein levels of proinflammatory cytokines were determined in bone marrow-derived macrophages (BMDMs) using RT-PCR and ELISA analysis. The roles of intracellular signaling pathways for NF-${\kappa}B$, PI3-K/Akt, and MAPKs were investigated in macrophage proinflammatory responses after stimulation with HBHA. Results: HBHA robustly activated the expression of mRNA and protein of both TNF-${\alpha}$ and IL-6, and induced phosphorylation of NF-${\kappa}B$, Akt, and MAPKs in BMDMs. Both TNF-${\alpha}$ and IL-6 production by HBHA was regulated by the NF-${\kappa}B$, PI3-K, and MAPK pathways. Furthermore, PI3-K activity was required for the HBHA-induced activation of ERK1/2 and p38 MAPK, but not JNK, pathways. Conclusion: These data suggest that mycobacterial HBHA significantly induces proinflammatory responses through crosstalk between the PI3-K and MAPK pathways in macrophages.
In addition to inducing apoptosis, caspase inhibition contributes to necroptosis and/or autophagy depending on the cell type and cellular context. In macrophages, necroptosis can be induced by co-treatment with Toll-like receptor (TLR) ligands (lipopolysaccharide [LPS] for TLR4 and polyinosinic-polycytidylic acid [poly I:C] for TLR3) and a cell-permeable pan-caspase inhibitor zVAD. Here, we elucidated the signaling pathways and molecular mechanisms of cell death. We showed that LPS/zVAD- and poly I:C/zVAD-induced cell death in bone marrow-derived macrophages (BMDMs) was inhibited by receptor-interacting protein kinase 1 (RIP1) inhibitor necrostatin-1 and autophagy inhibitor 3-methyladenine. Electron microscopic images displayed autophagosome/autolysosomes, and immunoblotting data revealed increased LC3II expression. Although zVAD did not affect LPS- or poly I:C-induced activation of IKK, JNK, and p38, it enhanced IRF3 and STAT1 activation as well as type I interferon (IFN) expression. In addition, zVAD inhibited ERK and Akt phosphorylation induced by LPS and poly I:C. Of note, zVAD-induced enhancement of the IRF3/IFN/STAT1 axis was abolished by necrostatin-1, while zVAD-induced inhibition of ERK and Akt was not. Our data further support the involvement of autocrine IFNs action in reactive oxygen species (ROS)-dependent necroptosis, LPS/zVAD-elicited ROS production was inhibited by necrostatin-1, neutralizing antibody of IFN receptor (IFNR) and JAK inhibitor AZD1480. Accordingly, both cell death and ROS production induced by TLR ligands plus zVAD were abrogated in STAT1 knockout macrophages. We conclude that enhanced TRIF-RIP1-dependent autocrine action of IFNβ, rather than inhibition of ERK or Akt, is involved in TLRs/zVAD-induced autophagic and necroptotic cell death via the JAK/STAT1/ROS pathway.
Probiotics are currently considered as one of tools to modulate immune responses under specific clinical conditions. The purpose of this study was to evaluate whether oral administration of three different probiotics (Lactiplantibacillus plantarum CJLP243, CJW55-10, and CJLP475) could evoke a cell-mediated immunity in immunodeficient mice. Before conducting in vivo experiments, we examined the in vitro potency of these probiotics for macrophage activation. After co-culture with these probiotics, bone marrow derived macrophages (BMDMs) produced significant amounts of proinflammatory cytokines including interleukin-6 (IL-6), IL-12, and tumor necrosis factor-α (TNF-α). Levels of inducible nitric oxide synthase (inos) and co-stimulatory molecules (CD80 and CD86) were also upregulated in BMDMs after treatment with some of these probiotics. To establish an immunocompromised animal model, we intraperitoneally injected mice with cyclophosphamide on day 0 and again on day 2. Starting day 3, we orally administered probiotics every day for the last 15 d. After sacrificing experimental mice on day 18, splenocytes were isolated and co-cultured with these probiotics for 3 d to measure levels of several cytokines and immune cell proliferation. Results clearly indicated that the consumption of all three probiotic strains promoted secretion of interferon-γ (IFN-γ), IL-1β, IL-6, IL-12, and TNF-α. NK cell cytotoxicity and proliferation of immune cells were also increased. Taken together, our data strongly suggest that consumption of some probiotics might induce cell-mediated immune responses in immunocompromised mice.
Kim, Si-Na;Kim, Hee-Seok;Nam, Gyeong-Sug;Hwang, Sung-Wan;Hwang, Sung-Yeoun
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.35
no.1
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pp.28-34
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2006
The ethanol extracts of Puerariae Radix inhibited cyclooxygenase-2 (COX-2) activity in bone marrow derived mast cells (BMMC). COX-2 is responsible for the production of large amounts of proinflammatory prostaglandins (PGs) at the inflammatory site. We have investigated the anti-inflammatory effect of ethyl acetate fraction from $70\%$ ethanol extract of Puerariae Radix (EPR), and attempted acetic acid induced writhing to verify the analgesic effect. Inflammation was induced by interleukin-1 (IL-1), tumor necrosis factor-a (TNF-a), $inteferon-\gamma$$(IFN-\gamma)$ and lipopolysaccharide (LPS). EPR showed strong inhibitory efficacy against cytokine-induced proteoglycan degradation, prostaglandin $E_2\;(PGE_2)$ production, nitric oxide (NO) production, and matrix-metalloproteinases (MMPs) expression in mouse macrophage and rabbit articular chondrocyte. In the writhing test, EPR $(200\~400\;mg/kg)$ exhibited a dose-dependent inhibition of writhing. The results indicate that EPR have anti-inflammatory and analgesic activities, and could be a good herbal medicine candidate for treating of osteoarthritis (OA).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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