The need for obtaining treated wastewater that meets high quality standards for discharge or reuse necessitates the use of highly efficient wastewater treatment techniques. In the present study, experiments have been carried out to reduce the concentration level of biological oxygen demand (BOD), chemical oxygen demand (COD), and total dissolved solids (TDS) from the wastewater sample. Treatment of sample of a real municipal wastewater collected from a sewage treatment plant (STP) was carried out in an electrochemical membrane bioreactor (EMBR). The EMBR was operated continuously for five days, and readings were taken at regular intervals. This paper has experimental results conducted in EMBR that indicate reduction of BOD, COD, and TDS levels of up to 32.25%, 29.25%, and 31.93%, respectively. Further, it was observed that a current of magnitude of 0.00752 mA was generated due to the metabolic activities of bacteria present in municipal wastewater, which gradually decreased day by day due to the decay of bacteria.
Consumption of herbal tea [flower buds of Cleistocalyx operculatus (Roxb.) Merr. et Perry (Myrtaceae)] is associated with health beneficial effects against multiple diseases including diabetes, asthma, and inflammatory bowel disease. Emerging evidences have reported that High mobility group box 1 (HMGB1) is considered as a key "late" proinflammatory factor by its unique secretion pattern in aforementioned diseases. Dimethyl cardamonin (2',4'-dihydroxy-6'-methoxy-3',5'-dimethylchalcone, DMC) is a major ingredient of C. operculatus flower buds. In this study, the anti-inflammatory effects of DMC and its underlying molecular mechanisms were investigated on lipopolysaccharide (LPS)-induced macrophages. DMC notably suppressed the mRNA expressions of TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6, and HMGB1, and also markedly decreased their productions in a time- and dose-dependent manner. Intriguingly, DMC could notably reduce LPS-stimulated HMGB1 secretion and its nucleo-cytoplasmic translocation. Furthermore, DMC dose-dependently inhibited the activation of phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K), phosphoinositide-dependent kinase 1 (PDK1), and protein kinase C alpha (PKC${\alpha}$). All these data demonstrated that DMC had anti-inflammatory effects through reducing both early (TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, and IL-6) and late (HMGB1) cytokines expressions via interfering with the PI3K-PDK1-PKC${\alpha}$ signaling pathway.
The regulation of protein tyrosine phosphorylation is mediated by protein tyrosine kinases (PTKs) and protein tyrosine phosphatases (PTPs) and is essential for cellular homeostasis. Co-expression of PTKs with PTPs in Pichia pastoris was used to facilitate the expression of active PTKs by neutralizing their apparent toxicity to cells. In this study, the gene encoding phosphatase PTP1B with or without a blue fluorescent protein or peroxisomal targeting signal 1 was cloned into the expression vector pAG32 to produce four vectors. These vectors were subsequently transformed into P. pastoris GS115. The tyrosine kinases EGFR-2 and $PDGFR{\beta}$ were expressed from vector pPIC3.5K and were fused with a His-tag and green fluorescent protein at the N-terminus. The two plasmids were transformed into P. pastoris with or without PTP1B, resulting in 10 strains. The EGFR-2 and $PDGFR{\beta}$ fusion proteins were purified by $Ni^{2+}$ affinity chromatography. In the recombinant P. pastoris, the PTKs co-expressed with PTP1B exhibited higher kinase catalytic activity than did those expressing the PTKs alone. The highest activities were achieved by targeting the PTKs and PTP1B into peroxisomes. Therefore, the EGFR-2 and $PDGFR{\beta}$ fusion proteins expressed in P. pastoris may be attractive drug screening targets for anticancer therapeutics.
Edwardsiella tarda is a gram-negative pathogenic bacterium in aquaculture that can cause hemorrhagic septicemia in fish. Many secreted proteins have already been identified as virulent factors of E. tarda. Moreover, since virulent phenotypes are based on the expression regulation of virulent genes, understanding the expression profile of virulent genes is important. A quantitative RT-PCR is one of the preferred methods for determining different gene expressions. However, this requires the selection of a stable reference gene in E. tarda, which has not yet been systematically studied. Accordingly, this study evaluated nine candidate reference genes (recA, uup, rpoB, rho, topA, gyrA, groEL, rpoD, and 16S rRNA) using the Excel-based programs BestKeeper, GeNorm, and NormFinder under different culture conditions. The results showed that 16S rRNA was more stable than the other genes at different culture growth phases. However, at the same culture time, topA was identified as the reference gene under the conditions of different strains, different culture media, and infection, whereas gyrA was identified under the condition of different temperatures. Thus, in experiments, the expression of gapA and fbaA in E. tarda was analyzed by RT-qPCR using 16S rRNA, recA, and uup as the reference genes. The results showed that 16S rRNA was the most suitable reference gene in this analysis, and that using unsuitable reference genes resulted in inaccurate results.
The filamentous fungus Aspergillus oryzae is a well-known expression host used to express homologous and heterologous proteins in a number of industrial applications. To facilitate higher yields of proteins of interest, we constructed the pAsOP vector to express heterologous proteins in A. oryzae. pAsOP carries a selectable marker, pyrG, derived from Aspergillus nidulans, and a strong promoter and a terminator of the amyB gene derived from A. oryzae. pAsOP transformed A. oryzae efficiently via the PEG-CaCl2-mediated transformation method. As proof of concept, green fluorescent protein (GFP) was successfully expressed in A. oryzae transformed by pAsOP-GFP. Additionally, we identified a novel fungal α-amylase (PcAmy) gene from Penicillium sp. and cloned the gene into the vector. After transformation by pAsOPPcAmy, the α-amylase PcAmy from Penicillium sp. was successfully expressed in a heterologous host system for the first time. The α-amylase activity in the A. oryzae transformant was increased by 62.3% compared with the untransformed A. oryzae control. The PcAmy protein produced in the system had an optimum pH of 5.0 and optimum temperature of 30oC. As a cold-adapted enzyme, PcAmy shows potential value in industrial applications because of its high catalytic activity at low temperature. Furthermore, the expression vector reported in this study provides promising utility for further scientific research and biotechnological applications.
Chaetominine is a quinazoline alkaloid originating from the endophytic fungus Aspergillus fumigatus CY018. In this study, we showed evidence that chaetominine has cytotoxic and apoptotic effects on human leukemia K562 cells and investigated the pathway involved in chaetominine-induced apoptosis in detail. Chaetominine inhibited K562 cell growth, with an $IC_{50}$ value of 35 nM, but showed little inhibitory effect on the growth of human peripheral blood mononuclear cells. The high apoptosis rates, morphological apoptotic features, and DNA fragmentation caused by chaetominine indicated that the cytotoxicity was partially caused by its pro-apoptotic effect. Under chaetominine treatment, the Bax/Bcl-2 ratio was upregulated (from 0.3 to 8), which was followed by a decrease in mitochondrial membrane potential, release of cytochrome c from mitochondria into the cytosol, and stimulation of Apaf-1. Furthermore, activation of caspase-9 and caspase-3, which are the main executers of the apoptotic process, was observed. These results demonstrated that chaetominine induced cell apoptosis via the mitochondrial pathway. Chaetominine inhibited K562 cell growth and induced apoptotic cell death through the intrinsic pathway, which suggests that chaetominine might be a promising therapeutic for leukemia.
Kim, Chong-Woo;Park, Jin-Su;Cho, Sung-Ki;Oh, Kwang-Joong;Kim, Young-Sik;Kim, Dong-Uk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.13
no.2
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pp.301-304
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2003
In this study, hydrogen sulfide ($H_2S$), ammonia ($NH_3$), and benzene, which represent the major odor from a natural leather process plant, were removed using a fluidized bed bioreactor and biofilter including Thiobacillus sp. IW and a MY microbial consortium. The critical removal rate was $12g m^{-3}h^{-1}\;for\;H_2S,\;11g m^{-3}h^{-1}\;for\;NH_3\;and\;28 g m^{-3}h^{-1}$ for benzene by the fluidized bed bioreactor, and $8.5g m^{-3}h^{-1}\;for\;H_2S\;7g m^{-3}h^{-1}\;for\;NH_3,\;and\;25 g m^{-3}h^{-1}$ for benzene in the biofilter. The average removal efficiency of $H_2S$, $NH_3$, and benzene by continuous operation for over 30 days with the fluidized bed bioreactor was $95{\pm}3\%,\;99{\pm}1\%,\;and\;98{\pm}5\%$, respectively, whereas that with the biofilter was $96{\pm}4\%,\;95{\pm}4\%,\;and\;97{\pm}3\%$, respectively. Therefore, the critical removal rate of $H_2S$, $NH_3$, and benzene was higher in the fluidized bed bioreactor, whereas the removal efficiency on the continuous operation was similar in both bioreactors.
To determine the role of pyruvate dehydrogenase complex (PDHC) in Klebsiella pneumoniae, the growth and metabolism of PDHC-deficient mutant in glycerol-based medium were analyzed and compared with those of other strains. Under aerobic conditions, the PDHC activity was fourfold higher than that of pyruvate formate lyase (PFL), and blocking of PDHC caused severe growth defect and pyruvate accumulation, indicating that the carbon flux through pyruvate to acetyl coenzyme A mainly depended on PDHC. Under anaerobic conditions, although the PDHC activity was only 50% of that of PFL, blocking of PDHC resulted in more growth defect than blocking of PFL. Subsequently, combined with the requirement of CO2 and intracellular redox status, it was presumed that the critical role of PDHC was to provide NADH for the anaerobic growth of K. pneumoniae. This presumption was confirmed in the PDHC-deficient mutant by further blocking one of the formate dehydrogenases, FdnGHI. Besides, based on our data, it can also be suggested that an improvement in the carbon flux in the PFL-deficient mutant could be an effective strategy to construct high-yielding 1,3-propanediol-producing K. pneumoniae strain.
Ma Xingyuan;Zheng Wenyun;Wang Tianwen;Wei Dongzhi;Ma Yushu
Journal of Microbiology
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v.44
no.3
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pp.293-300
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2006
The Escherichia coli heat-labile enterotoxin B subunit (HLT-B) is one of the most powerful mucosal immunogens and known mucosal adjuvants. However, the induction of high levels of HLT-B expression in E. coli has proven a difficult proposition. Therefore, in this study, the HLT-B gene was cloned from pathogenic E. coli and expressed as a fusion protein with GST (glutathion S-transferase) in E. coli BL2l (DE3), in an attempt to harvest a large quantity of soluble HLT-B. The culture conditions, including the culture media used, temperature, pH and the presence of lactose as an inducer, were all optimized in order to obtain an increase in the expression of soluble GST-rHLT-B. The biological activity of the purified rHLT-B was assayed in a series of GMI-ELISA experiments. The findings of these trials indicated that the yield of soluble recombinant GST-rHLT-B could be increased by up to 3-fold, as compared with that seen prior to the optimization, and that lactose was a more efficient alternative inducer than IPTG. The production of rHLT-B, at 92 % purity, reached an optimal level of 96 mg/l in a 3.7 L fermentor. The specific GM1 binding ability of the purified rHLT-B was determined to be almost identical to that of standard CTB.
A cell-free extract of Saccharomyces cerevisiae containing the angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitory peptide was treated in a successive simulated gastric-intestinal bioreactor (step 1: amylase digestion, step 2: gastric fluid digestion, step 3: intestinal fluid digestion) to illustrate the absorption pattern of antihypertensive ACE inhibitory peptide, and the ACE inhibitory activities of each step were determined. Total ACE inhibitory activities of step 1, step 2, and step 3 were 55.96%, 80.09%, and 76.77%, respectively. The peptide sequence of each steps was analyzed by MS/MS spectrophotometry. Eleven kinds of representative peptide sequences were conserved in each step, and representative new peptides including RLPTESVPEPK were identified in step 3.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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