Significant progress has recently been made concerning the engineering of deoxysugar biosynthesis. The biosynthetic gene clusters of several deoxysugars from various polyketides and aminoglycosides-producing microorganisms have been cloned and studied. This review introduces the biosynthetic pathways of several deoxysugars and the generation of novel hybrid macrolide antibiotics via the coexpression of deoxysugar biosynthetic gene cassettes and the substrate-flexible glycosyltransferases in a host organism as well as the production of TDP-deoxysugar derivatives via one-pot enzymatic reactions with the identified enzymes. These recent developments in the engineering of deoxysugars biosynthesis may pave the way to create novel secondary metabolites with potential biological activities.
A novel biomaterial capable of incorporating biotinylated biomolecule has been synthesized. Our strategy is to biotinylate one-dimensional electroactive polymers and use a bridging streptavidin protein on Langmuir-Blodgett (LB) organized films. These copolymers are derivatized with long alkyl chains and biotin moieties to bind, respectively, to the hydrophobic surface and the biotinylated species, through the biotin and streptavidin complexation. We utilize the polymer assembly approach to attach a signal transducing biomolecule biotinylated phycoerythrin (B-PE) into this novel biomaterial by binding the unoccupied biotin binding sites on the bound streptavidin (4 sites total). The pressure-area isotherm of the protein injected monolayer showed area expansion. A characteristic fluorescent emission peak at 576nm was detected from the monolayer transferred onto a solid substrate. These observations demonstrated the promise of the organized thin polymer assemblies for their application to the sensor system.
Journal of the Korean Society for Precision Engineering
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v.23
no.3
s.180
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pp.179-186
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2006
Single-walled carbon nanotubes (SWNT) exhibit strong Raman signals as well as fluorescence emissions in the near infrared regions where most biomolecules are transparent. Such signals do not blink or photobleach under prolonged excitation. which is advantageous to optical nano-bio marker applications. In this paper, single walled carbon nanotubes are conjugated with specific types of single-stranded DNA in order to detect oligonucleotides of corresponding complimentary sequences. Dot blotting experiments and comparative Raman spectroscopy observations demonstrated excellent sensitivity and specificity of carbon nanotube-DNA probes. The results show the possibility of using SWNT as generic nano-bio markers for the precise detection of specific kinds of genes.
From the sequence alignment of various non-ribosomal peptide synthetases, several motifs of highly conserved sequences have been identified within each domain of peptide synthetases. We designed PCR primers based on the highly conserved nucleotide sequences to amplify and isolate a ∼7.2-kb DNA fragment of the Bacillus subtilis 713 which was isolated and reported to produce an antifungal peptide compound. Nucleotide sequence analysis of 4.8 kb of the predicted amino acids revealed significant homology to various peptide synthetases over the whole sequence and also revealed two amino acid-activating domains with highly conserved Core 1 to Core 6 and spacer motif. This suggests that the isolated DNA fragment is part of a peptide synthetase gene for antifungal peptide.
Cytochrome P450 enzymes which require the supply of electrons from NAD(P)H have a great biotechnological impact as they catalyze valuable reactions on a vast variety of substrates. However, very limited biotechnological application has been reported so far due to their functional complexity, limited stability (instability) and, in most cases, low catalytic activity. In this present review, we introduce some possibilities for improving their defect by exploring electron transport system and substrate flexibility in field of Streptomyces cytochrome P450.
Glycosylation is a key mechanism in determining diversity of natural products, and influencing their bioactivities. This approach requires a core set of glycosyltransferase that synthesizes the diverse sugar structures observed in nature. Recently, the researchers have begun to alter the sugar moiety and glycosylation patterns of natural products both in vivo E. coli system and in vitro for their glycodiversification. This review highlights new glycosylation tools using microbialproduced deoxysugar and a flexible glycosyltransferase on natural plant-flavonoids to generate novel glycoforms with useful biological activity.
Improvements in the dissolution of proteins in two-dimensional gel electrophoresis have greatly advanced the ability to analyze the proteomes of microorganisms under a wide variety of physiological conditions. This study examined the effect of various combinations of chaotropic agents, a reducing agent, and a detergent on the dissolution of the Streptomyces peucetius cytosolic proteins. The use of urea alone in a rehydration buffer as a chaotropic agent gave the proteome a higher solubility than any of the urea and thiourea combinations, and produced the highest resolution and clearest background in two-dimensional gel electrophoresis. Two % CHAPS, as a detergent in a rehydration buffer, improved the protein solubility. After examining the effect of several concentrations of reducing agent, 50 mM DTT in a rehydration buffer was found to be an optimal condition for the proteome analysis of Streptomyces. Using this optimized buffer condition, more than 2,000 distinct and differentially expressed soluble proteins could be resolved using two-dimensional gel electrophoresis with a pI ranging from 4-7. Under this optimized condition, 15 novel small proteins with low-level expression, which could not be analyzed under the non-optimized conditions, were identified. Overall, the optimized condition helped produce a better reference gel for Streptomyces peucetius.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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