There are many different approaches to healing of acute and chronic ulcer and large skin defect, such as burn. Currently available wound covers fall into two categories. Permanent covering, such as autografts, and temporary ones, such as allograft including de-epidermized cadaver skin, bioartificial skin, xenografts, and synthetic dressings. Autologous skin grafting in the form of split- or full-thickness skin is still the good standard. Following on from developments in the 1980s involving the use of cultured keratinocyte grafts in wound healing, the last decade has been great progress in the fabrication of composite bioartificial skin grafts. However, two bottleneck on producing cultured bioartificial skin, whether of the simple epithelial cell sheet type, or the more complex composite type, continue to be the generation of sufficient keratinocytes cheaply and quickly and develop biocompatible dermal scaffolds. This article covers the development, clinical application, and current research directions associated with bioartificial skin.
It is difficult to obtain sufficient healthy skin for coverage of a wide area of skin wound. In the skin, an additional population of living epithelial cells is located in the outer root sheath (ORS) of hair $follicles.^{1),2)}$ ORS cells should be a good source of epithelium because they are easily obtainable and patients do not have to suffer from scar formation at donor sites. We modified ordinary primary culture technique for the purpose of solving such problem that epithelial cells have a low propagation and easy aging during culture periods. First of all, we improved primary cultivation methods. In the ordinary primary culture, average yield of human ORS cells was $2\;{\times}\;10^3$ cells/follicle by direct incubation with trypsin (0.1%)/EDTA (0.02%) solution for 15 min at $37^{\circ}C$ but we could obtain about $6.5\;{\times}\;10^3$ cells/follicle by two step enzyme digestion method with dispase (1.2 U/ml) and trypsin (0.1%)/EDTA (0.02%) solution. So we could achieve three times higher primary cultured ORS cell yield. Secondly, we could obtain total $2\;{\times}\;10^7$ cells in serum free medium and even more total $6\;{\times}\;10^7$ cells in modified E-medium with mitomycin C-treated feeder cells during 17 days. Using the cultured ORS cells, and we could make bioartificial skin equivalent in vitro and concluded that ORS cells were progenitor cells for skin epithelial cell.
In this study. an efficacy study of Portulaca Extract (PE) and ${\beta}$ -glucan. candidates for cosmetic additives. was pedormed using artificial skin model (AS). The AS consists of collagen gel matrix populated by ATCC human skin fibroblast cell line that is overlaid with epidermal human skin keratinocyte cell line. Cytotoxicity and anti - inflammatory activity of PE and ${\beta}$ -glucan were assessed using monolayer and AS models by measuring cell viability and the secretion of interleukin -1 ${\alpha}$.
Obtaining a sufficient amount of healthy keratinocytes from a small tissue is difficult. However, ORS cells can be a good source of epithelium since they are easily obtainable and patients do not have to suffer from scar formation at donor sites. Accordingly, the current study modified the conventional primary culture technique to overcome the low propagation and easy aging of epithelial cells during culturing. In a conventional primary culture, the average yield of human ORS tells is 2.↑ $\times$ 10$^3$cells/follicle based on direct incubation in a trypsin (0.1%)/EDTA(0.02%) solution for 15 min at 37$^{\circ}C$, however, our modified method was able to obtain about 6.9 $\times$ 10$^3$cel1s/follicle using a two-step enzyme digestion method involving dispase (1.2 U/mL) and a trypsin (0.1%)/EDTA (0.02%) solution. Thus, the yield of primary cultured ORS cells could be increasd three times higher. Furthermore, a total of 2.0 $\times$ 10$^{7}$ cells was obtained in a serum-free medium. while a modified E-medium with mitomycin C-treated feeder tells produced a total of 6.3 $\times$ 10$^{7}$ Cel1s over 17 days When Starting With 7.5 $\times$ 10$^4$cells. Finally, We Confirmed the effectiveness of our ORS tell isolation method by presenting their ability for reconstructing the bioartificial skin epithelium in vitro
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.26
no.1
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pp.17-40
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2000
Cytotoxicity assays using artificial skins have been proposed as in vitro alternatives to minimize animal ocular and dermal irritation testing. Accordingly, the responses of artificial skins to the well-characterized chemical irritants toluene, glutaraldehyde, and sodium lauryl sulfate (SLS), and the nonirritant polyethylene glycol were studied. The evaluation of the irritating and non-irritating test chemicals was also compared with the responses observed in human dermal fibroblasts and human epidermal keratinocytes grown in a monolayer culture. The responses monitored included an MTT mitochondrial functionality assay. In order to better understand the local mechanisms involved in skin damage and repair, the production of several mitogenic proinflammatory mediators, interleukin-l$\alpha$, 12-HETE, and 15-HETE, was also investigated. Dose-dependent increases in the levels of かIn and the HETEs were observed in the underlying medium of the skin systems exposed to the two skin irritants, glutaraldehyde and SLS. The results of the present study show that both human artificial skins can be used as efficient in vitro testing models for the evaluation of skin toxicity and for screening contact skin irritancy.
Seo, Young-Kwon;Song, Kye-Yong;Seo, Seong-Jun;Kim, Young-Jin;Park, Jung-Keug
한국생물공학회:학술대회논문집
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2003.10a
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pp.369-371
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2003
젤형 인공피부의 약한 물성을 보완하기 위해 스폰지형 인공피부가 개발되었으나 다공성 표면구조 때문에 세포의 배양이 어려운 문제점이 남아 있었다. 이 다공성 구조를 섬유모세포의 장기 배양으로 ECM으로 채우기 위해서는 3주이상의 긴 시간이 필요하며 그 위에 상피층 배양하기 위해서는 2주 이상의 시간이 추가로 소요되기 때문에 환자에게 이식할 적절한 시기를 놓칠수가 있다. 따라서 본 연구결과로 단기일 내에 전층 인공피부를 배양함으로서 적절한 이식시기를 맞출수가 있으며 이러한 기저막이 부착된 스폰지구조는 물성도 향상되어 이식시 조작이 쉽고 볼합이 가능한 장점이 있다.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.31
no.2
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pp.143-149
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2005
Objects : With the advancement of tissue engineering techniques, the effort to develop bioartificial mucosa have been actively delivered. The problem we met with this technique is the lack of mechanical strength between kerationocyte layer and dermal layer, where in the normal skin and mucosa, they are tightly bound with rete ridge structure. The purpose of this study is to understand the 2D and 3D structure of rete ridge of mucosa and skin paddle for rendering more biomimetic structure to the artificial mucosa. Materials and Methods : Oral mucosa and skin from the patients who received the oral surgery and maxillofacial reconstruction were harvested. The epidermis was separated from the dermis after treating with dispase for 12-16 hours. H&E staining was performed for 2D(dimensional) structure study and confocal LASER and SEM study were performed for 3D structure. Mean height(Sc) and arithmetic mean deviation(Sa) of all surface height were calculated. Results : The average height of rete ridge of skin flap was between $67.14{\mu}m$ and $194.55{\mu}m$. That of oral mucosa was between $146.26{\mu}m$ and $167.51{\mu}m$. Pressure bearing area and attached gingiva of oral mucosa showed deeper rete ridges. Conclusion : To obtain the adequate strength of artificially cultured keratinocyte skin and mucosa flap, it is necessary to imitate the original skin and mucosa structure, especially rete ridge. Through this study, 2D and 3D rete ridge structure of normal mucosa and skin was obtained. These results can be used as basis for substrate morphology for keratinocytes culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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