Kim, Gi-Young;Morgan, Mark;Ess, Daniel;Hahm, Byoung-Kwon;Kothapalli, Aparna;Bhunia, Arun
Food Science and Biotechnology
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제16권3호
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pp.337-342
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2007
Conventional methods for pathogen detection and identification are labor-intensive and take days to complete. Biosensors have shown great potential for the rapid detection of foodborne pathogens. Fiber-optic biosensors have been used to rapidly detect pathogens because they can be very sensitive and are simple to operate. However, many fiber-optic biosensors rely on manual sensor handling and the sandwich assay, which require more effort and are less sensitive. To increase the simplicity of operation and detection sensitivity, a binding inhibition assay method for detecting Listeria monocytogenes in food samples was developed using an automated, fiber-optic-based immunosensor: RAPTOR (Research International, Monroe, WA, USA). For the assay, fiber-optic biosensors were developed by the immobilization of Listeria antibodies on polystyrene fiber waveguides through a biotin-avidin reaction. Developed fiber-optic biosensors were incorporated into the RAPTOR to evaluate the detection of L. monocytogenes in frankfurter samples. The binding inhibition method combined with RAPTOR was sensitive enough to detect L. monocytogenes ($5.4{\times}10^7\;CFU/mL$) in a frankfurter sample.
Covalent binding of the reactive metabolites of SC_42867 to microsomal proteins has been examined. In the absence of inhibitor of cytochrome oxydase (.alpha.-naphtyl-isothiocyanate) or a radical scavenger (3-terthiobuty-4-hydroxyanisol), up to 4.0% of total redioactivity used in the assay could irreversibly bind to proteins. In the presence of an inhibitor, the highest percentage of covalent binding observed is 0.7% a significant decrease of the metabolism of SC42876 was observed. These results suggest in a cytochrome P-450 dependent generation of SC_42867 metabolites significantly take part in the covalent binding process.
대장균 세포분열 조절에 관여하는 DicA 단백질은 $37^{\circ}C$보다 $25^{\circ}C$에서 DNA에 더욱 잘 결합한다. 그러나 DicA 단백질의 온도의존적 DNA 결합에 대한 분자적 원인은 명확하지 않다. 본 연구에서는 DicA 단백질이 어떻게 DNA에 결합하며, 왜 온도 의존적 결합양상을 보이는지 알아보았다. In vivo DNA 결합 분석 결과 RovA나 SlyA와 같은 DicA의 상동성 단백질과는 달리 DicA는 N 말단에 있는 DNA 결합 도메인을 이용하여 20개의 염기쌍으로 이루어진 dicC 조절자 유전자(Oc)에 결합함을 보여주었다. 또한 in vivo 실험에서 DicA는 $37^{\circ}C$ 보다 $25^{\circ}C$에서 DNA에 더 잘 결합하는 것으로 알려진 Cnu 또는 H-NS의 영향을 받지 않고 자체적으로 Oc에서의 온도 의존적 DNA 결합을 보인다. 하지만 정제된 DicA 단백질을 이용한 in vitro binding 실험에서는 온도 의존적 DNA 결합이 관찰되지 않았다. Crude 단백질을 이용한 실험에서 DicA 단백질의 온도 의존적 DNA 결합이 관찰되는 것으로 보아 DicA의 온도 의존적 DNA (Oc) 결합은 crude 단백질내에 존재하는 아직 알려지지 않은 in vivo factor에 의해 일어난다.
Kim, Min-Soo;Park, Chan-Hee;Lee, Jong-Ho;Myung, Hee-Joon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제18권2호
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pp.328-333
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2008
A series of pep tides binding to the HCV NS5B polymerase was selected from phage display peptide libraries. A conserved motif of Ser-Arg-X-Arg/Leu was identified among the selected peptides, and Pep2 (Trp-Ser-Arg-Pro-Arg-Ser-Leu) was chosen for further characterization. The binding of Pep2 to HCV NS5B in vivo was shown by a yeast two-hybrid assay and by subcellular colocalization analysis using immunofluorescence confocal microscopy. The in vitro interaction was also confirmed by GST pulldown assay. The replication of the HCV 1b subgenomic replicon was efficiently inhibited by the presence of the peptide. By using a subtractive biopanning against Pep2, the binding site of the peptide was mapped at the pocket of Pro388 to Pro391 in the thumb subdomain of the polymerase. A yeast two-hybrid analysis using Pro388Ala and Pro391Ala mutants of NS5B confirmed the binding.
Acanthamoeba spp. are single-celled protozoan organisms that are widely distributed in the environment. In this study, to understand functional roles of a mannose-binding protein (MBP), Acanthamoeba castellanii was treated with methyl-alpha-D-mannopyranoside (mannose), and adhesion and cytotoxicity of the amoeba were analyzed. In addition, to understand the association of MBP for amoeba phagocytosis, phagocytosis assay was analyzed using non-pathogenic bacterium, Escherichia coli K12. Amoebae treated with mannose for 20 cycles exhibited larger vacuoles occupying the most area of the amoebic cytoplasm in comparison with the control group amoebae and glucose-treated amoebae. Mannose-selected amoebae exhibited lower levels of binding to Chinese hamster ovary (CHO) cells. Exogenous mannose inhibited >50% inhibition of amoebae (control group) binding to CHO cells. Moreover, exogenous mannose inhibited amoebae (i.e., man-treated) binding to CHO cells by <15%. Mannose-selected amoebae exhibited significantly decreased cytotoxicity to CHO cells compared with the control group amoebae, 25.1% vs 92.1%. In phagocytic assay, mannose-selected amoebae exhibited significant decreases in bacterial uptake in comparison with the control group, 0.019% vs 0.03% (P<0.05). Taken together, it is suggested that mannose-selected A. castellanii trophozoites should be severely damaged and do not well interact with a target cell via a lectin of MBP.
We performed a basic experiment for the rapid, on-line, real-time measurement of hepatitis B surface antigen using a surface plasmon resonance biosensor. We immobilized antiHBsAg (hepatitis B surface antigen) polyclonal antibody, as a ligand, to the dextran layer on a CM5 chip surface that had previously been activated by N-hydroxysuccinimide. A sample solution containing HBsAg was fed through a microfluidic channel, and the reflecting angle change due to the mass increase from the binding was detected. The binding characteristics between HBsAg and its polyclonal antibody followed the typical monolayer adsorption isotherm. When the entire immobilized antibody had interacted, no additional, non-specific binding occurred, suggesting the immunoreaction was very specific. The bound antigen per unit mass of the antibody was independent of the immobilized ligand density. No significant steric hindrance was observed at an immobilization density of approximately $17.6 ng/mm^2$. The relationship between the HBsAg concentration in the sample solution and the antigen bound to the ligand was linear up to ca. $40{\mu}g$/mL. This linearity was much higher than that of the ELISA method. It appeared the antigen-antibody binding increased as the immobilized ligand density increased. In summary, this study showed the potential of this SPR biosensor-based method as a rapid, simple and multisample on-line assay. Once properly validated, it may serve as a more efficient method for HBsAg quantification for replacing the ELISA.
To construct a competitive ELISA standard curve for the detection of glucose-6-phosphate debydrogenase (G6PD), we used highly purified native G6PD (nG6PD) as both immobilized and soluble antigens and anti-G6PD serum raised against nG6PD as antibody. The polystyrene cuvettes coated with nG6PD were challenged with a mixture of a limiting amount of anti-G6PD serum and various doses of nG6PD as competitors followed by incubation with alkaline phosphatase-anti-IgG conjugate. The competitive ELISA did not exhibit the typical sigmoidal dose-response curve characteristic of competition immunoassays under the optimal concentrations of antigen and antibody. The soluble nG6PD used as competitor failed to effectively inhibit the binding of antibodies to the immobilized nG6PD. The addition of NADP, a cofactor of G6PD enzyme, to coating buffer used for immobilizing nG6PD to the cuvettes and PBS-Tween-BSA buffer for diluting competitors did not improve the inhibition of antibody binding to immobilized nG6PD by soluble n/G6PD. The addition of BSA to coating buffer did not increase inhibition, either. Surprisingly, when partially active G6PD (paG6PD), obtained by repeated freeze-thawing, was used as competitor, the antibody binding to either immobilized nG6PD or immobilized paG6PD was inhibited 49-58%. We conclude that an effective competitive ELISA system with nG6PD enzyme and anti-G6PD serum for the detection of G6PD may not be established due to the poor inhibition of antibody binding to immobilized nG6PD by soluble nG6PD under the present assay conditions and that the inhibition may be improved by using an inactivated enzyme as competitor regardless of the type of immobilized antigen used. These results imply that the immobilized nG6PD may undergo denaturation upon binding to the polystyrene cuvettes and that our anti-G6PD serum may recognize denatured enzyme better than active enzyme.
The present study was designed to develop a new method for the determination of estrogen receptor in porcine uterus using frozen sections. Cryostat sections were incubated with $^3H$-estradiol($^3H$-$E_2$) in the presence or absence of diethylstilbestrol(DES) and the radioactivity of 3H-E2 bound to estrogen receptor(ER) was detected. The level of specific estrogen receptor was determined by Scatchard analysis. The highest ratio of specific binding against total binding was achieved in 3 sec. tions(5mm x 5mm) which was corresponded to lOO${\mu}$/ml protein concentration. Optimal binding was obtained during incubation with $^3H$-$E_2$ for 30 minutes at 23$^{\circ}C$ after treatment of sections with acetone for 20 seconds. Three time-washing of sections was proved to be appropriate for the removal of unbound 3H-E2. 200-fold molar excess of DES was substituted for the binding of $^3H$-$E_2$ to ER sufficiently(binding efficiency of 54.8%). ER was saturated with 4nM of $^3H$-$E_2$ and its dissociation constant was 0.1nM. ER assay using frozen sections(Histological radioreceptor assay, HRRA) was significantly correlated with radioreceptor assay for estradiol(RRA, 0.976 , p
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[게시일 2004년 10월 1일]
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