The modulatory effects of total ginseng saponin (TGS) on the 1, 6, and opioid receptor binding in morphine tolerance and dependence were examined in this study. The specific [$^{3}H$]DAGO ([D-$Ala^2$, N-$Mephe^4$, $Glyco^4$] enkephalin) binding was significantly increased in chronic morphine (10 mg/kg, i.p.) treated mouse striatum. The specific [$^{3}H$]DPDPE ([D-$Pen^2$, D-$Pen^5$] enkephalin) binding was ignificantly increased following morphine treatment in the mouse striatum and cortex. Also, an apparent decrease in the affinity of [$^{3}H$]DPN (diprenorphine) was observed after chronic morphine treatment in mouse striatum and cortex. 7GS produced a sleight increase of specific [$^{3}H$]DAGO, [$^{3}H$]DPDPE binding and a significant increase of specific [$^{3}H$]DPN binding in the mouse brain striatum. In cortex, TGS produced an inhibition of specific [$^{3}H$]DAGO and [$^{3}H$]DPDPE binding and increase of the specific [$^{3}H$]DPN binding. The prolonged administration of TGS (25, 50, 100, and 150 mg/kg, i.p., 3 wks) produced an inhibition of increased [$^{3}H$]DAGO specific binding following morphine without significant changes in the agonist binding to and receptors in mouse striatum and cortex. These contracted alterations in $\mu$, $\gamma$ and $\kappa$ opiate receptor binding were dependent in TGS dogs and brain sites.
According to the traditional receptor model, competitive antagonists share with agonists the ability to bind to a common site on receptors, but they are different from agonist in that they cannot trigger the biological response-i.e., they lack intrinsic efficacy. Recent findings extend the model by indicating that not all antagonists display an intrinsic efficacy of zero but that some display 'inverse agonism'. In the present study we studied the inverse agonism at $A_1$ adenosine receptors in membranes prepared from rat cerebral cortex. Eight commercially available $A_1$ adenosine receptor antagonists (CGS-15943, ADPX, CPT, DPCPX, DPX, N-0840, PACPX and 8-PT) were screened for inverse agonism by measuring the extent of $[^{35}S]guanosine-5'-({\gamma}-thio)$ triphosphate $([^{35}S]GTP_{\gamma}S)$ binding to G proteins. The agonist-induced stimulation of $[^{35}S]GTP_{\gamma}S$ bindings was completely blocked in the presence of $A_1$ adenosine receptor antagonists. Under optimal conditions, two types of antagonists could be distinguished. Seven antagonists including DPCPX decreased the basal $[^{35}S]GTP_{\gamma}S$ binding in the absence of agonist, displaying inverse agonist activity. One (CGS-15943) had no effect on the basal bindings. N-ethylmaleimide treatment reduced the basal bindings as well as agonist-mediated stimulation of $[^{35}S]GTP_{\gamma}S$ bindings, indicating that a substantial amount of this binding reflects an activated state of the C proteins. In good agreement with these findings, 0.1 mM GTP decreased the apparent affinity of the receptors for the agonist PIA, increased that for DPCPX, and had no effect on that for CGS-15943.
When casein was hydrolyzed by trypsin, alcalase, neutrase, protamax, and S. aureus type V8, peptides $(100\;{\mu}g/mL)$ which were produced by trypsin and alcalase solubilized $6.42\;and\;2.37\;{\mu}g/mL)$ of added irons at pH 6, respectively, while peptides which were produced by other proteases solubilized less than $1\;{\mu}g/mL$. Peptides produced by trypsin and alcalase were fractionated to 10 fractions on a reverse phase column and each fraction was tested for its iron solubilizing ability at pH 6. Among peptides produced by trypsin, fraction 5 showed the highest iron solubilizing ability $(2.33\;{\mu}g/mL)$. In the case of alcalase, fraction 7 showed the highest iron solubilizing ability $(1.56\;{\mu}g/mL)$. To isolate iron binding peptides from peptides produced by trypsin and alcalase, immobilized iron affinity chromatography which irons were chelated to imino diacetic acids in chelating sepharose fast flow were utilized. Our results showed that immobilized iron affinity chromatography was an effective method to isolate iron binding peptides produced by either trypsin or alcalase from milk casein.
In order to determine the role of the carboxyl terminal amino acid residues of unacetylated ${\alpha}$-tropomyosin in actin affinity two mutant tropomyosins were constructed by site-directed mutagenesis. TM16 was identical to the striated tropomyosin except that three amino acids in the carboxyl terminal end were altered to $^{282}TNM^{284}$ while in TM17 $^{282}TSI^{284}$ of the striated was replaced with$^{282}NSM^{284}$. TM16 and TM17 were overproduced in Escherichia coli and analyzed for actin affinity by comparing actin affinities of the striated and TM11 $^{282}NNM^{284}$). The apparent binding constants (Kapp) of unacetylated tropomyosins to actin were $5.1{\times}10^4M^{-1}$ for the striated, $1.1{\times}10^5M^{-1}$ for TM11, $1.09{\times}10^5M^{-1}$ for TM16, and $1.03{\times}10^5M^{-1}$ for TM17, respectively. Since the actin affinities of TM11, TM16, and TM17 were very similar, this result suggested that amino acid residues 282 and 283 were insignificant for acting affinity of unacetylated $\alpha$-tropomyosin. However, they all exhibited higher actin affinities than that of the striated, suggesting that Met residue at the carboxyl terminus of unacetylated smooth tropomyosin was rather important for actin affinity, presumably due to the nucleophilic nature of sulfur atom in Met residue.
Previous reports indicated that the carboxyl terminal residues, glutamine276-threonine277 in particular, were important for actin affinity of the unacetylated smooth ${\alpha}-tropomyosin$. To determine the role of the glutamine and threonine residues in C-terminal region in actin binding, we constructed mutant striated muscle ${\alpha}-tropomyosin$ (TMs), in which these two residues were individually substituted. These mutant tropomyosins, designated TM18 (HT) and TM19 (QA), were overexpressed in E. coli as an either unacetylated form or Ala-Ser. (AS) dipeptide fusion form, and were analyzed F-actin affinity by cosedimentation. Unacetylated TM19 (QA) bound to actin approximately three times stronger than TM18 (HT) and much stronger than ST (HA). AS/TM19 (QA) showed four times stronger, in actin affinity than AS/ST (HA) while AS/TM14 (QT) bound to actin stronger to some extent than AS/TM18 (HT). These results suggested that the presence of Gln residue at 276 be primarily attributed to higher actin affinity of smooth ${\alpha}-tropomyosin$.
The ${\beta}2$ integrins are cell surface transmembrane proteins regulating leukocyte functions, such as adhesion and migration. Two members of ${\beta}2$ integrin, ${\alpha}M{\beta}2$ and ${\alpha}X{\beta}2$, share the leukocyte distribution profile and integrin ${\alpha}X{\beta}2$ is involved in antigen presentation in dendritic cells and transendothelial migration of monocytes and macrophages to atherosclerotic lesions. ${\underline{R}}eceptor$ for ${\underline{a}}dvanced$${\underline{g}}lycation$${\underline{e}}nd$${\underline{p}}roducts$ (RAGE), a member of cell adhesion molecules, plays an important role in chronic inflammation and atherosclerosis. Although RAGE and ${\alpha}X{\beta}2$ play an important role in inflammatory response and the pathogenesis of atherosclerosis, the nature of their interaction and structure involved in the binding remain poorly defined. In this study, using I-domain as a ligand binding motif of ${\alpha}X{\beta}2$, we characterize the binding nature and the interacting moieties of ${\alpha}X$ I-domain and RAGE. Their binding requires divalent cations ($Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$) and shows an affinity on the sub-micro molar level: the dissociation constant of ${\alpha}X$ I-domains binding to RAGE being $0.49{\mu}M$. Furthermore, the ${\alpha}X$ I-domains recognize the V-domain, but not the C1 and C2-domains of RAGE. The acidic amino acid substitutions on the ligand binding site of ${\alpha}X$ I-domain significantly reduce the I-domain binding activity to soluble RAGE and the alanine substitutions of basic amino acids on the flat surface of the V-domain prevent the V-domain binding to ${\alpha}X$ I-domain. In conclusion, the main mechanism of ${\alpha}X$ I-domain binding to RAGE is a charge interaction, in which the acidic moieties of ${\alpha}X$ I-domains, including E244, and D249, recognize the basic residues on the RAGE V-domain encompassing K39, K43, K44, R104, and K107.
Weakly coordinating anions show little affinity for binding to unfunctionalized iron(II) porphyrins. The electron-deficient 5, 10, 15, 20-tetrakis(pentafluorophenyl)porphinatoiron(II) compound is utilized in this study to demonstrate solution coordination by chloride, bromide and acetate ions. The binding strength of anions to the iron(II) porphyrin is reflected by a systematic change in pyrrole proton chemical shift in $^1H$ NMR spectra; the pyrrole resonance moves downfield when the ${\sigma}$-donor ability of anions is decreased.
Homologated analogues 3a and 3b of potent and selective A3 adenosine receptor ligands, IB-MECA and dimethyl-IB-MECA were synthesized from commercially available 1-O-acetyl-2,3,5-tri-O-benzoyl-${\beta}$-D-ribofuranose (4) via $Co_2(CO)_8$-catalyzed siloxymethylation as a key step. Unfortunately, homologated analogues 3a and 3b did not show significant binding affinities at three subtypes of adenosine receptors, indicating that free rotation, resulting from homologation, induced unfavorable interactions in the binding site of the receptor maybe due to the presence of many conformations.
The respiratory burst oxidase of neutrophils is a multicomponent enzyme, domant in resting cells, that catalyzes the reduction of oxygen to $O_{2}^{-}$ at the expense of NADPH. In the resting neutrophil, some of the components of the oxidase, including proteins p47 and p67, are in the cytosol, while the rest are in the plasma membrane. Recent evidence has suggested that at least some of the cytosolic oxidase components exist as a complex. The cytosolic complex with a molecular weight of ~240 kDa was found to bind to blue-agarose and 2',5'-ADP-agarose, which recognize nucleotide requiring enzymes. In order to identify the nucleotide binding component of the cytosolic complex we purified recombinant p47 and p67 fusion proteins using the pGEX system. Pure recombinant p47 was retained completely on 2',5'-ADP-agarose, whereas pure recombinant p67 did not bind to these affinity beads. On the basis of these results, we infer that p47 may contain the nucleotide binding site.
A mutational alteration in the signal sequence of ribose-binding protein (RBP) of Escherichia coli, rbsB103, completely blocks the export of the protein to the periplasm. Intragenic suppressors for this mutation have been selected on minimal medium with ribose as a sole carbon source. Six suppressor mutations were characterized in detail and were found to have single amino acid wubstitution in the mature portion of RBP, which resulted in the mobility shift of the proteins on SDS polyacrylamide gel. Amino acid changes of these suppressors were localized in several peptides which are packed to form the N terminal domain of typical bilobate conformation of RBP. The involvement of SecB, a molecular chaperone, was investigated in the suppression of signal sequence mutation. Translocation efficency was found to be increased by the presence of SecB for all suppressors. It is likely that the folding characteristics of RBP altered by the suppressor mutations affect the affinity of interaction between SecB and RBP.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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