The lambda Integrase (Int) carries out site-specific recombination between the two partner DNA sequences, attachment P (attP) and attachment B (attB). In order to study the recombination mechanism, a large quantity of pure integrase is required. Then, we constructed an int gene inserted recombinant plasmid (pNYL3) by using the pQE31 HIS-Tag vector, and produced the fusion protein, 6xHIS-Int from the E. coli TG1 strain carrying the pNYL3 plasmid. The recombinant protein produced was purified by phosphocellulose and Ni$^{++}$-NTA affinity column chromatographies. The result of the in vitro recombination assay using the standard reaction mixture containing 6xHIS-Int and partially purified integration host factor (IHF) showed that the 6xHIS-Int tagged recombination Integrase had the full recombination activity.
Integrase (Int) carries out the cutting and resealing of attachment (att) site DNA via a covalent Int-DNA intermediate. A family of synthetic substrate DNAs was designed to accumulate Int-DNA intermediate. Int-DNA intermediates accumulated by half substrate was analyzed by SDS- KCI precipitation and restriction digestion. The results showed that Int-half DNA intermediate was circular and contained covalently bound Int molecule. Int-DNA intermediates were also trapped with three other kinds of synthetic substrates.
The incidence of musculoskeletal tuberculosis (TB) is on the rise due to the current Acquired Immunodeficiency Syndrome (AIDS) pandemic. Spine is the most common osseous site, followed by other joints. TB identified in the elbow accounts for 2%-5% of skeletal TB cases, which are secondary to pulmonary TB. Primary elbow TB is rare. We report a case of primary TB of the elbow which had a negative synovial biopsy. A 46-year-old right-hand dominant female patient with chronic pain and disability of the right elbow was diagnosed with chronic non-specific arthritis based on an arthroscopic synovial biopsy. The case was diagnosed retrospectively as active TB from bone cuts post total elbow arthroplasty. Anti-tuberculosis treatment (ATT) was given postoperatively for 12 months. The patient reported good functional outcomes at 3 years of follow-up. Such atypical presentations of osteoarticular TB are challenging to diagnose. Therefore, particularly in endemic areas, clinicians should be careful before excluding such a diagnosis even after a negative biopsy. Further research should investigate whether active TB of small joints such as the elbow can be treated with ATT, and early arthroplasty should be a focus of this research.
Mobile genetic segments, or transposons, are also referred to as jumping genes as they can shift from one position in the genome to another, thus inducing a chromosomal mutation. According to the target site-specificity of the transposon during a transposition event, the result is either the insertion of a gene of interest at a specific chromosomal site, or the creation of knockout mutants. The former situation includes the integration of conjugative transposons via site-specific recombination, several transposons preferring a target site of a conserved AT-rich sequence, and Tn7 being site-specifically inserted at attTn7, the downstream of the essential glmS gene. The latter situation is exploited for random mutagenesis in many prokaryotes, including IS (insertion sequence) elements, mariner, Mu, Tn3 derivatives (Tn4430 and Tn917), Tn5, modified Tn7, Tn10, Tn552, and Ty1, enabling a variety of genetic manipulations. Randomly inserted transposons have been previously employed for a variety of applications such as genetic footprinting, gene transcriptional and translational fusion, signature-tagged mutagenesis (STM), DNA or cDNA sequencing, transposon site hybridization (TraSH), and scanning linker mutagenesis (SLM). Therefore, transposon-mediated genetic engineering is a valuable discipline for the study of bacterial physiology and pathogenesis in living hosts.
A food-grade integration vector based on site-specific recombination was constructed. The 5.7-kb vector, pIMA20, contained an integrase gene and a phage attachment site originating from bacteriophage A2, with the ${\alpha}$-galactosidase gene from Lactobacillus plantarum KCTC 3104 as a selection marker. pIMA20 was also equipped with a controllable promoter of nisA ($P_{nisA}$) and a signal peptide-encoding sequence of usp45 ($SP_{usp45}$) for the production and secretion of foreign proteins. pIMA20 and its derivatives mediated site-specific integration into the attB-like site on the Lactococcus lactis NZ9800 chromosome. The vector-integrated recombinant lactococci were easily detected by the appearance of blue colonies on a medium containing $X-{\alpha}-gal$ and also by their ability to grow on a medium containing melibiose as the sole carbon source. Recombinant lactococci maintained these traits in the absence of selection pressure during 100 generations. The ${\alpha}-amylase$ gene from Bacillus licheniformis, lacking a signal peptide-encoding. sequence, was inserted downstream of $P_{nisA}\;and\;SP_{usp45}$ in pIMA20, and the plasmid was integrated into the L. lactis chromosome. ${\alpha}-Amylase$ was successfully produced and secreted by the recombinant L. lactis, controlled by the addition and concentration of nisin.
Lactic acid bacteria (LAB) are widely used for various food fermentation. With the recent advances in modern biotechnology, a variety of bio-products with the high economic values have been produced using microorganisms. For molecular cloning and expression studies on the gene of interest, E. coli has been widely used mainly because vector systems are fully developed. Most plasmid vectors currently used for E, coli carry antibiotic-resistant markers. As it is generally believed that the antibiotic resistance markers are potentially transferred to other bacteria, application of the plasmid vectors carrying antibiotic resistance genes as selection markers should be avoided, especially for human consump-tion. By contrast, as LAB have some desirable traits such that the they are GRAS(generally recognized as safe), able to secrete gene products out of cell, and their low protease activities, they are regarded as an ideal organism for the genetic manipulation, including cloning and expression of homologous and heterologous genes. However, the vec-tor systems established for LAB are stil insufficient to over-produce gene products, stably, limiting the use of these organisms for industrial applications. For a past decade, the two popular plasmid vectors, pAM$\beta$1 of Streptococcus faecalis and pGK12 theB. subtilis-E. coli shuttle vector derived from pWV01 of Lactococcus lactis ssp. cremoris wg 2, were most widely used to construct efficient chimeric vectors to be stably maintained in many industrial strains of LAB. Currently, non-antibiotic markers such as nisin resistance($Nis^{r}$ ) are explored for selecting recombi-nant clone. In addition, a gene encoding S-layer protein, slp/A, on bacterial cell wall was successfully recombined with the proper LAB vectors LAB vectors for excretion of the heterologous gene product from LAB Many food-grade host vec-tor systems were successfully developed, which allowed stable integration of multiple plasmid copies in the vec-mosome of LAB. More recently, an integration vector system based on the site-specific integration apparatus of temperate lactococcal bacteriophage, containing the integrase gene(int) and phage attachment site(attP), was pub-lished. In conclusion, when various vector system, which are maintain stably and expressed strongly in LAB, are developed, lost of such food products as enzymes, pharmaceuticals, bioactive food ingredients for human consump-tion would be produced at a full scale in LAB.
Chlorambucil is known to alkylate primarily N7 of guanine and N3 of adenine to induce DNA monofunctional adducts and interstrand cross-links (ISC). We have investigated the sequence specificity for DNA ISC induced by chlorambucil using duplex oligomers containing a defined cross-linkable sequences $ 5^{I}-A*TT, 5^{I}-G*TTor5^{I}-G*CC$ under bar which asterisk indicates the potential cross-linking site and underlined base indicates the potential cross-linking site on the opposite strand. An analysis of 20% denaturing polyacrylamide gel electrophoresis showed that chlorambucil was albe to induce DNA ISC in the duplex oligomers containing a sequence $5^I-GCC$. The formation of DNA ISC was not observed in the duplex oligomers containing sequences $5^I-ATT$. or $5^I-GTT$. These results indicate that chlorambucil induces guanine-guanine DNA ISC but not guanine-adenine or adenine-adenine DNA ISC. In addition, we have tested the ability of chlorambucil to induce DNA ISC within $5^I-GNNC$ or $5^I-GNNC$sequences using duplex oligomers containing the sequence$5^I-G^4G^3G^2^C$. The result of DNA strand cleavage assay showed that DNA ISC was formed at the $5^I-GGC$ sequence (an 1,3 cross-link, $G^1-G^3$) but not at $5^I-GGGC$ (an 1,4 cross-link, $G^1-G^4$) or $5^I-GC$ sequence (an 1,2 cross-link, $G^1-G^2$).
We cloned a cDNA (pPRC-1) which was comprised of 841 nucleotides from the cDNA library of a male ICR mouse submandibular gland ($SMG^+$). The nucleotide sequences of pPRC-1 were identical to those of exons 2 and 3 of the mGK-21 gene, a potentially functional glandular kallikrein identified in a Balb/c mouse, except for one nucleotide residue. Although this substitution changes Ile (ATT) in pPRC-1 to Val (GTT) in mGK-21, this difference has been explained by strain polymorphism. From the amino acid sequences predicted from its cDNA, we speculated that mGK-21 gene products/pGK21 consist of 261 amino acids including the $NH_2$-terminal signal peptide (residues 1~17), the short propeptide (residues 17~24), and the active peptide (residues 25~261). Although we did not demonstrate the enzyme activity of pGK21, it was assumed that pGK 21 was involved in the maturation of certain bioactive polypeptide(s) in mouse SMG for the following reasons : (a) mGK-21 gene was apparently expressed in a male ICR mouse SMG: (b) the proposed active site $His^{65}$, $Asp^{120}$, and $Ser^{213}$ residues were completely conserved in pGK21 just like other glandular kallikreins; (c) the cloned cDNA was translated to a predicted 27 kDa polypeptide chain in vitro: (d) the 27 kDa polypeptide chain produced by CHO cells was produced to a putative active form by trypsin.
Aphis gossypii Glover is an important insect pest that functions as a viral vector and mediates approximately 45 different viral diseases. As part of a strategy for control of A. gossypii, we investigated the functions of genes using RNAi. To this end, a cDNA library was constructed for various genes and for selecting appropriate targets for RNAi mediated silencing. The cDNA library was constructed using the Gateway cloning system with site-specific recombination of bacteriophage ${\lambda}$. It was used to carry out single step cloning of A. gossypii cDNAs. As a result, a cDNA library with a titer of $8.4{\times}10^6$ was constructed. Since the sequences in this library carry att sites, they can be cloned into various binary vectors. This library will be of value for various studies. For later screening of selected genes, it is planned to clone the library into virus-induced gene silencing (VIGS) vectors, which makes it possible to analyze gene function and allow subsequent transfection of plants. Such transfection experiments will allow testing of RNAi-induced insecticidal activity or repellent activity to A. gossypii, and result in the identification of target genes. It is also expected that the constructed cDNA library will be useful for analysis of gene functions in A. gossypii.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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