Apoptotic cell death is a fundamental and highly regulated biological process in which a cell is instructed to actively participate in its own demise. This process of cellular suicide is activated by developmental and environmental cues and normally plays an essential role in eliminating superfluous, damaged, and senescent cells of many tissue types. In recent years, a number of experimental studies have provided evidence of widespread neuronal and glial apoptosis following injury to the central nervous system (CNS). These studies indicate that injury-induced apoptosis can be detected from hours to days following injury and may contribute to neurological dysfunction. Given these findings, understanding the biochemical signaling events controlling apoptosis is a first step towards developing therapeutic agents that target this cell death process. This review will focus on molecular cell death pathways that are responsible for generating the apoptotic phenotype. It will also summarize what is currently known about the apoptotic signals that are activated in the injured CNS, and what potential strategies might be pursued to reduce this cell death process as a means to promote functional recovery.
Bisan El Dakkak;Jalal Taneera;Waseem El-Huneidi;Eman Abu-Gharbieh;Rifat Hamoudi;Mohammad H. Semreen;Nelson C. Soares;Eman Y. Abu-Rish;Mahmoud Y. Alkawareek;Alaaldin M. Alkilany;Yasser Bustanji
Biomolecules & Therapeutics
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v.32
no.3
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pp.267-280
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2024
Apoptosis, programmed cell death pathway, is a vital physiological mechanism that ensures cellular homeostasis and overall cellular well-being. In the context of cancer, where evasion of apoptosis is a hallmark, the overexpression of anti-apoptotic proteins like Bcl2, Bcl-xL and Mcl-1 has been documented. Consequently, these proteins have emerged as promising targets for therapeutic interventions. The BCL-2 protein family is central to apoptosis and plays a significant importance in determining cellular fate serving as a critical determinant in this biological process. This review offers a comprehensive exploration of the BCL-2 protein family, emphasizing its dual nature. Specifically, certain members of this family promote cell survival (known as anti-apoptotic proteins), while others are involved in facilitating cell death (referred to as pro-apoptotic and BH3-only proteins). The potential of directly targeting these proteins is examined, particularly due to their involvement in conferring resistance to traditional cancer therapies. The effectiveness of such targeting strategies is also discussed, considering the tumor's propensity for anti-apoptotic pathways. Furthermore, the review highlights emerging research on combination therapies, where BCL-2 inhibitors are used synergistically with other treatments to enhance therapeutic outcomes. By understanding and manipulating the BCL-2 family and its associated pathways, we open doors to innovative and more effective cancer treatments, offering hope for resistant and aggressive cases.
Apoptosis (programmed cell death) is a cellular self-destruction mechanism that is essential for a variety of biological events, such as developmental sculpturing, tissue homeostasis, and the removal of unwanted cells. Mitochondria play a crucial role in regulating cell death. $Ca^{2+}$ has long been recognized as a participant in apoptotic pathways. Mitochondria are known to modulate and synchronize $Ca^{2+}$ signaling. Massive accumulation of $Ca^{2+}$ in the mitochondria leads to apoptosis. The $Ca^{2+}$ dynamics of ER and mitochondria appear to be modulated by the Bcl-2 family proteins, key factors involved in apoptosis. The number and morphology of mitochondria are precisely controlled through mitochondrial fusion and fission process by numerous mitochondria-shaping proteins. Mitochondrial fission accompanies apoptotic cell death and appears to be important for progression of the apoptotic pathway. Here, we highlight and discuss the role of mitochondrial calcium handling and mitochondrial fusion and fission machinery in apoptosis.
Cryopreservation is an option for the preservation of pre- or post-pubertal female or male fertility. This technique not only is beneficial for human clinical applications, but also plays a crucial role in the breeding of livestock and endangered species. Unfortunately, frozen germ cells, including oocytes, sperm, embryos, and spermatogonial stem cells, are subject to cryoinjury. As a result, various cryoprotective agents and freezing techniques have been developed to mitigate this damage. Despite extensive research aimed at reducing apoptotic cell death during freezing, a low survival rate and impaired cell function are still observed after freeze-thawing. In recent decades, several cell death pathways other than apoptosis have been identified. However, the relationship between these pathways and cryoinjury is not yet fully understood, although necroptosis and autophagy appear to be linked to cryoinjury. Therefore, gaining a deeper understanding of the molecular mechanisms of cryoinjury could aid in the development of new strategies to enhance the effectiveness of the freezing of reproductive tissues. In this review, we focus on the pathways through which cryoinjury leads to cell death and propose novel approaches to enhance freezing efficacy based on signaling molecules.
Objective: To investigate the impact of a Croton tiglium extract on cellular proliferation and apoptosis in a non-small cell lung cancer cell line (A549) in vitro. Methods: A Croton tiglium seed methanol extract was prepare and assessed for effects on A549 cells regarding cellular proliferation, apoptotic rates, and expression of apoptosis related genes and proteins using real-time PCR and immunofluorescence. Results: The tested Croton tiglium extract inhibited A549 cell proliferation in a dose- and time-dependent manner, with significant elevation of apoptotic indexes at various concentrations after 24 h. In addition, rates in both early and late stages were higher in treated than untreated groups, the $100{\mu}g/ml$ dose causing the highest levels of apoptosis. RT-PCR showed that A549 cells treated with $100{\mu}g/ml$ Croton tiglium extract for 24 h has markedly higher Bax mRNA expression levels and obviously lower Bcl-2 expression levels than controls, equivalent results being observed for proteins by immunofluorescence. However, the mRNA expression levels of Fas and caspase-8 were not significantly altered. Conclusion: A Croton tiglium extract can inhibit proliferation of A549 cells and promote apoptosis though Bax/Bcl-2 pathways.
Vascular endothelial cell injury or dysfunction has been implicated in the onset and' progression of cardiovascular diseases including atherosclerosis. A number of previous studies have demonstrated that the pro-oxidative and pro-inflammatory pathways within vascular endothelium play an important role in the initiation and progression of atherosclerosis, Recent evidence has provided compelling evidence to indicate that interleukin-4 (IL-4) can induce proc inflammatory environment via oxidative stress-mediated up-regulation of inflammatory mediators such as cytokine, chemokine, and adhesion molecules in vascular endothelial cells. In addition, apoptotic cell death within vascular endothelium has been hypothesized to be involved in the development of atherosclerosis. Emerging evidence has demonstrated that IL-4 can induce apoptosis of human vascular endothelial cells through the caspase-3-dependent pathway, suggesting that IL-4 can increase endothelial cell turnover by accelerated apoptosis, the event which may cause the dysfunction of the vascular endothelium. These studies will have a high probability of revealing new directions that lead to the development of clinical strategies toward the prevention and/or treatment for individuals with inflammatory vascular diseases including atherosclerosis.
Glutamine and serum are essential for cell survival and proliferation in vitro, yet the signaling pathways that sense glutamine and serum levels in endothelial cells remain uninvestigated. In this study, we examined the effects of glutamine deprivation and serum starvation on the fate of endothelial cells using a human umbilical vein endothelial cell (HUVEC) model. Our data indicated that glutamine deprivation and serum starvation trigger a progressive reduction in cell viability through apoptosis induction in HUVECs as determined by DAPI staining and flow cytometry analysis. Although the apoptotic effects were more predominant in the glutamine deprivation condition, both apoptotic actions were associated with an increase in the Bax/Bcl-2 (or Bcl-xL) ratio, down-regulation of the inhibitor of apoptosis protein (IAP) family proteins, activation of caspase activities, and concomitant degradation of poly (ADP-ribose) polymerases. Moreover, down-regulation of the expression of Bid or up-regulation of truncated Bid (tBid) were observed in cells grown under the same conditions, indicating that glutamine deprivation and serum starvation induce the apoptosis of HUVECs through a signaling cascade involving death-receptor-mediated extrinsic pathways, as well as mitochondria-mediated intrinsic caspase pathways. However, apoptosis was not induced in cells grown in glutamine- and serum-free media when compared with cells exposed to glutamine deprivation or serum starvation alone. Taken together, our data indicate that glutamine deprivation and serum starvation suppress cell viability without apoptosis induction in HUVECs.
Kim, Jeong-Hwan;Choi, Woo-Bong;Lee, Jong-Hwan;Jeon, Sung-Jong;Choi, Yung-Hyun;Kim, Byung-Woo;Chang, Hyo-Ihl;Nam, Soo-Wan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.11
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pp.1355-1363
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2009
In the present study, the neuroprotective effects of astaxanthin on $H_2O_2$-mediated apoptotic cell death, using cultured mouse neural progenitor cells (mNPCs), were investigated. To cause apoptotic cell death, mNPCs were pretreated with astaxanthin for 8 h and followed by treatment of 0.3 mM $H_2O_2$. Pretreatment of mNPCs with astaxanthin significantly inhibited $H_2O_2$-mediated apoptosis and induced cell growth in a dose-dependent manner. In Western blot analysis, astaxanthin-pretreated cells showed the activation of p-Akt, p-MEK, p-ERK, and Bcl-2, and the reduction of p-P38, p-SAPK/JNK, Bax, p-GSK3b, cytochrome c, caspase-3, and PARP. Because $H_2O_2$ triggers caspases activation, this study examined whether astaxanthin can inhibit caspases activation in $H_2O_2$-treated mNPCs. After $H_2O_2$ treatment, caspases activities were prominently increased, but astaxanthin pretreatment significantly inhibited $H_2O_2$-mediated caspases activation. Astaxanthin pretreatment also significantly recovered the ATP production ability of $H_2O_2$-treated cells. These findings indicate that astaxanthin inhibits $H_2O_2$-mediated apoptotic features in mNPCs. Inhibition assays with SB203580 ($10\;{\mu}M$, a specific inhibitor of p38) and PD98059 ($10\;{\mu}M$, a specific inhibitor of MEK) clearly showed that astaxanthin can inhibit $H_2O_2$-mediated apoptotic death via modulation of p38 and MEK signaling pathways.
Kim, Ki-Mo;Kim, Peter K.M.;Kwon, Young-Guen;Bai, Se-Kyung;Nam, Woo-Dong;Kim, Young-Myeong
BMB Reports
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v.35
no.1
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pp.127-133
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2002
Nitrosative stress can prevent or induce apoptosis. It occurs via S-nitrosylation by the interaction of nitric oxide (NO) with the biological thiols of proteins. Cellular redox potential and non-heme iron content determine S-nitrosylation. Apoptotic cell death is inhibited by S-nitrosylation of the redox-sensitive thiol in the catalytic site of caspase family proteases, which play an essential role in the apoptotic signal cascade. Nitrosative stress can also promote apoptosis by the activation of mitochondrial apoptotic pathways, such as the release of cytochrome c, an apoptosis-inducing factor, and endonuclease G from mitochondria, as well as the suppression of NF-${\kappa}B$ activity. In this article we reviewed the mechanisms whereby S-nitrosylation and nitrosative stress regulate the apoptotic signal cascade.
Objectives : The effects of aqueous extract of Backhapgogumtanggami-bang (BGTG, a newly devised herb medicine) on the induction of apoptotic cell death were investigated in human lymphoid origin leukemia cell lines, HL-60. Methods : Cells were treated with various concentrations and $400{\;}\mu\textrm{g}/ml$ BGTG for 12 hr. Genomic DNA was isolated and separated on 1.8% agarose gels. Lysates from the cells were used to measure the activity of caspase-2, -3, -8, and -9 protease by using fluorogenic peptide. Cells were preincubated with SB-203580 for 30 min. Nuclear protein from the cells was incubated with oliginucleotide probe of AP-l and NF-kB. Nuclear extracts from the cells were isolated and reacted with antibodies. Results : The viability of HL-60 cells were markedly decreased by BGTG extract in a dose- and time-dependent manner. BGTG extract induced the apoptotic death of HL-60 cells which was characterized by the DNA fragmentation. The activations of Caspase-2, 3, and 9 were induced by BGTG. However, selective inhibition of the p38 mitogen-activated protein kinase pathways by SB-203580 did not affect the extent of BGTG extract-induced cell death. Furthermore, we observed the transient activations of transcriptional factors such as AP-l and NF-kB. Conclusions : These results suggest that BGTG extract induced apoptotic death of HL-60 cells and caspase activations as well as the modulation of transcriptional factors such as AP-1 and NF-kB.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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