Autoimmune disease is known to be caused by unregulated self-antigen-specific T cells, causing tissue damage. Although antigen specificity is an important mechanism of the adaptive immune system, antigen non-related T cells have been found in the inflamed tissues in various conditions. Bystander T cell activation refers to the activation of T cells without antigen recognition. During an immune response to a pathogen, bystander activation of self-reactive T cells via inflammatory mediators such as cytokines can trigger autoimmune diseases. Other antigen-specific T cells can also be bystander-activated to induce innate immune response resulting in autoimmune disease pathogenesis along with self-antigen-specific T cells. In this review, we summarize previous studies investigating bystander activation of various T cell types (NKT, γδ T cells, MAIT cells, conventional CD4+, and CD8+ T cells) and discuss the role of innate-like T cell response in autoimmune diseases. In addition, we also review previous findings of bystander T cell function in infection and cancer. A better understanding of bystander-activated T cells versus antigen-stimulated T cells provides a novel insight to control autoimmune disease pathogenesis.
The advent of the major histocompatibility complex (MHC) multimer technology has led to a breakthrough in the quantification and analysis of antigen-specific T cells. In particular, this technology has dramatically advanced the measurement and analysis of CD8 T cells and is being applied more widely. In addition, the scope of application of MHC multimer technology is gradually expanding to other T cells such as CD4 T cells, natural killer T cells, and mucosal-associated invariant T cells. MHC multimer technology acts by complementing the T-cell receptor-MHC/peptide complex affinity, which is relatively low compared to antigen-antibody affinity, through a multivalent interaction. The application of MHC multimer technology has expanded to include various functions such as quantification and analysis of antigen-specific T cells, cell sorting, depletion, stimulation to replace antigen-presenting cells, and single-cell classification through DNA barcodes. This review aims to provide the latest knowledge of MHC multimer technology, which is constantly evolving, broaden understanding of this technology, and promote its widespread use.
Yang Mhan-Pyo;Lee Chang-Woo;Kwun Jong-Kuk;Hasegawa Atsuhiko
Journal of Veterinary Clinics
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v.8
no.1
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pp.1-10
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1991
The B-lymphocyte differentiation from committed B-cell progenitors to antibody-secreting cells was discussed. B-cell progenitors derived from hematopoietic stem cells undergo the rearrangement of immunoglobulin(Ig) gene. The earliest cells as B-cell precursors have cytoplasmic Is(${\mu}$ chain). The entire Is molecule is expressed on the surface after synthesis of L chain. The resting B cells(Go stage) stimulated by binding antigen via Ig-receptors are activated(G$_1$ stage) and followed by proliferation(S stage), coupled with further selection(affinity maturation. class switch). The production of antibody against a particular antigen depends on the activation of B cells with surface Is capable of reacting with that antigen. This process does not occur in isolation but is controlled by helper and suppressor T cells and antigen presenting cells(APC). The mechanism of T cell-dependent B-cell response for production of antibody is largely explained by the cell to cell cooperation and soluble helper factors of T cells. 1) The antigen specific B cells and helper T cells are linked by Is-receptors, leading to the delivery of helper signals to the B cells. 2) Helper T cells recognize the processed antigen-derived peptides with the MHC class II molecules(la antigen) and is stimulated to secrete B-cell proliferation and differentiation factors which activate B cells of different antigenic specificity. The two models are shown currently 1) At low antigen concentration, only the antigen-specific B cell binds antigen and presents antigen-derived peptides with la molecules to helper T cells, which are stimulated to secrete cytokines(IL-4, IL-5, etc.) and 2) At high antigen concentration, antigen-derived peptides are presented by specific B cells, by B cells that endocytose the antigens, as well as by APC Cytokines secreted from helper T cells also lead to the activation of B cells and even bystander B cells in the on- vironmment and differentiate them into antibody-secreting plasma cells.
Han, Young-Woo;Aleyas, Abi G.;George, Junu A.;Yoon, Hyun-A;Lee, John-Hwa;Kim, Byung-Sam;Eo, Seong-Kug
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.12
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pp.1955-1964
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2007
A recent report showed that analysis of CD154 expression in the presence of the secretion inhibitor Brefeldin A (Bref A) could be used to assess the entire repertoire of antigen-specific $CD4^+\;T$ helper cells. However, the capacity of intracellular CD154 expression to identify antigen-specific $CD8^+\;T$ cells has yet to be investigated. In this study, we compared the ability of intracellular CD154 expression to assess antigen-specific $CD8^+\;T$ cells with that of accepted standard assays, namely intracellular cytokine IFN-${\gamma}$ staining (ICS) and MHC class I tetramer staining. The detection of intracellular CD154 molecules in the presence of Bref A reflected the kinetic trend of antigen-specific $CD8^+\;T$ cell number, but unfortunately showed less sensitivity than ICS and tetramer staining. However, ICS levels peaked and saturated 8 h after antigenic stimulation in the presence of Bref A and then declined, whereas intracellular CD154 expression peaked by 8 h and maintained the saturated level up to 24 h post-stimulation. Moreover, intracellular CD154 expression in antigen-specific $CD8^+\;T$ cells developed in the absence of $CD4^+\;T$ cells changed little, whereas the number of IFN-${\gamma}$-producing $CD8^+\;T$ cells decreased abruptly. These results suggest that intracellular CD154 could aid the assessment of antigen-specific $CD8^+\;T$ cells, but does not have as much ability to identify heterogeneous $CD4^+\;T$ helper cells. Therefore, the combined analytical techniques of ICS and tetramer staining together with intracellular CD154 assays may be able to provide useful information on the accurate phenotype and functionality of antigen-specific $CD8^+\;T$ cells.
Yi, Jaeu;Jung, Jisun;Han, Daehee;Surh, Charles D.;Lee, You Jeong
Molecules and Cells
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v.42
no.3
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pp.228-236
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2019
CD4 T cells differentiate into $ROR{\gamma}t/IL$-17A-expressing cells in the small intestine following colonization by segmented filamentous bacteria (SFB). However, it remains unclear whether SFB-specific CD4 T cells can differentiate directly from naïve precursors, and whether their effector differentiation is solely directed towards the Th17 lineage. In this study, we used adoptive T cell transfer experiments and showed that naïve CD4 T cells can migrate to the small intestinal lamina propria (sLP) and differentiate into effector T cells that synthesize IL-17A in response to SFB colonization. Using single cell RT-PCR analysis, we showed that the progenies of SFB responding T cells are not uniform but composed of transcriptionally divergent populations including Th1, Th17 and follicular helper T cells. We further confirmed this finding using in vitro culture of SFB specific intestinal CD4 T cells in the presence of cognate antigens, which also generated heterogeneous population with similar features. Collectively, these findings indicate that a single species of intestinal bacteria can generate a divergent population of antigen-specific effector CD4 T cells, rather than it provides a cytokine milieu for the development of a particular effector T cell subset.
Background: Identification of antigen-specific T cells has yielded valuable information on pathologic process and the disease state. Assays for quantification of inflammatory cytokines or lytic-granule molecules have been generally used to evaluate antigen specific T cell response, however their applicability have been hampered due to the limited source of autologous antigen-presenting target cells (APC). Methods: K562, a leukemic cell line deficient of human leukocyte antigen (HLA), was transfected with a gene encoding HLA-A*02 (K562/ A*02) and its function as stimulator cells in inducing activation of HLA-matched T cells was evaluated by IFN-${\gamma}$ enzyme linked immunospot (ELISPOT) assay. Results: The stable transfectant K562/ A*02 pulsed with HLA- A*02 restricted peptide could specifically induce IFN-${\gamma}$ secretion by CD8+ T cells compared to no detectable secretion by CD4+ T cells. However, CD56+ NK cells secreted IFN-${\gamma}$ in both K562/ A*02 with peptide and without peptide. The number of IFN-${\gamma}$ secreted CD8+ T cells was increased according to the ratio of T cells to K562 and peptide concentration. Formalin-fixed K562/ A*02 showed similar antigen presenting function to live K562/ A*02. Moreover, K562/ A*02 could present antigenicpeptide to not only A*0201 restricted CD8+ T cells but also CD8+ T cells from A*0206 donor. Conclusion: These results suggest that K562/ A*02 could be generally used as target having specificity and negligible background for measuring CD8+ T cell responses and selective use of K562 with responsder matched HLA molecules on its surface as APC may circumvent the limitation of providing HLA-matched autologous target cells.
T cells play a key role in viral infection. However, in patients with chronic hepatitis C virus (HCV) infection, HCV-specific T cells are dysfunctional and impaired in the liver, which is the primary site for HCV replication. There are multiple potential mechanisms for HCV-specific T cell dysfunction including induction of immune inhibitory pathways (program death-1; PD-1, cytotoxic t lymphocyte associated antigen-4; CTLA-4) and immune tolerance induced specific for the liver. However, the interaction between hepatocytes and HCV-specific CD8 T cells has not clearly established. In this study, we confirmed huh (human hepatoma) 7.5 cells expressing HLA (human leukocyte antigen) A2 presented antigen to activate HCV-specific CD8 T cells in HLA A2-restricted manner and expression of PD-L (program death ligand) 1 on huh7.5 cells reduced HCV-specific CD8 T cell activation, suggesting an immune modulatory activity. Loss of HCV-specific tetramer responses following antigenic stimulation correlated with increased caspase-3 activity. In addition, PD-L1 on huh7.5 cells rescued HCV-specific CD8 T cells from apoptosis. Our results suggest that the interaction between PD-L1 and PD-1 can recover the function of HCV-specific CD8 T cells in the liver, which could be applied in therapy of HCV chronic infection.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2003.06a
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pp.55-62
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2003
The mucosal immune system provides a first line of defense against invasion of infectious agents via inhalation, ingestion and sexual contact. For the induction of protective immunity at these invasion sites, one must consider the use of the CMIS, which interconnects inductive tissues, including PP and NALT, and effector tissues of the intestinal, respiratory and genitourinary tracts. In order for the CMIS to induce maximal protective mucosal immunity, co-administration of mucosal adjuvant or use of mucosal antigen delivery vehicle has been shown to be essential. When vaccine antigen is administered via oral or nasal route, antigen-specific Th 1 and Th2 cells, cytotoxic T lymphocytes(CTLs) and IgA B cell responses are effectively induced by the CMIS. In the early stages of induction of mucosal immune response, the uptake of orally or nasally administered antigens is achieved through a unique set of antigen-sampling cells, M cells located in follicle-associated epithelium(FAE) of inductive sites. After successful uptake, the antigens are immediately processed and presented by the underlying DCs for the generation of antigen-specific T cells and IgA committed B cells. These antigen-specific lymphocytes are then home to the distant mucosal effector tissues for the induction of antigen-specific humoral(e.g., IgA) and cell-mediated (e.g., CTL and Th1) immune responses in order to form the first line of defense. Elucidation of the molecular/cellular characteristics of the immunological sequence of mucosal immune response beginning from the antigen sampling and processing/presentation by M cells and mucosal DCs followed by the effector phase with antigen-specific lymphocytes will greatly facilitate the design of a new generation of effective mucosal antigen-specific lymphocytes will greatly facilitate the design of a new generation of a new generation of effective mucosal adjuvants and of a vaccine deliver vehicle that maximizes the use of the CMIS.
Among the therapeutic strategies in cancer immunotherapy-such as immune-modulating antibodies, cancer vaccines, or adoptive T cell transfer-T cells have been an attractive target due to their cytotoxicity toward tumor cells and the tumor antigen-specific binding of their receptors. Leveraging the unique properties of T cells, chimeric antigen receptor-T cells and T cell receptor (TCR)-T cells were developed through genetic modification of their receptors, enhancing the specificity and effectiveness of T cell therapy. Adoptive cell transfer of chimeric antigen receptor-T cells has been successful for the treatment of hematological malignancies. To expand T cell therapy to solid tumors, T cells are modified to express defined TCR targeting tumor associated antigen, which is called TCR-T therapy. This review discusses anti-tumor T cell therapies, with a focus on engineered TCR-T cell therapy. We outline the characteristics of TCR-T cell therapy and its clinical application to non-hematological malignancies.
Programmed death-1 (PD-1) is a strong negative regulator of T lymphocytes in tumor-microenvironment. By engaging PD-1 ligand (PD-L1) on tumor cells, PD-1 on T cell surface inhibits anti-tumor reactivity of tumor-infiltrating T cells. Systemic blockade of PD-1 function using blocking antibodies has shown significant therapeutic efficacy in clinical trials. However, approximately 10 to 15% of treated patients exhibited serious autoimmune responses due to the activation of self-reactive lymphocytes. To achieve selective activation of tumor-specific T cells, we generated T cells expressing a dominant-negative deletion mutant of PD-1 (PD-1 decoy) via retroviral transduction. PD-1 decoy increased IFN-γ secretion of antigen-specific T cells in response to tumor cells expressing the cognate antigen. Adoptive transfer of PD-1 decoy-expressing T cells into tumor-bearing mice potentiated T cell-mediated tumor regression. Thus, T cell-specific blockade of PD-1 could be a useful strategy for enhancing both efficacy and safety of anti-tumor T cell therapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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