The actinomycete strain AMLK-335 was antagonistic to vancomycin-resistant enterococci (VRE). Based on the diaminopimelic acid (DAP) type, and morphological and physiological characteristics revealed by scanning electron microscopy (SEM), AMLK-335 was confirmed to belong to the genus Streptomyces. Analysis of the 16S rDNA nucleotide sequences found AMLK-335 to have a relationship with Streptomyces platensis. The production of antibiotic from this strain was most favorable when cultured on glucose, polypeptone, yeast extract (PY) medium for 6 days at $27^{\circ}$. The antibiotic was identified as cyclo(L-phenylalanyl-L-prolyl) by comparing ti with the reported MS and NMR spectral data. Cyclo(phe-pro) from the PY cultures of AMLK-335 was most effective (K-98-258). Futhermore, cyclo(phe-pro) had antimicrobial activity against Bacillus subtilis, Microcuccs luteus, Staphylococcus aureus, and Saccharomyces cerevisiae, but it wa ineffective against Candida albicans, Streptomyces murinus, and Aspergillus niger.
High producers or blocked mutants of aminoglycoside antibiotic-producing Streptomyces spp. were selected by application of an agar plug method and by culturing individual colonies in broth. The productivities of aminoglycoside antibiotic producing organisms were increased by selection of a high producer from colonies obtained by spreading spores of wild strain, or survived from treatment of a mutagen or from the colonies regenerated from protoplast-formation and cell-wall regenerations. Some mutagen treated colonies lost the ability to produce antibiotics (5-8%). Some A-factor negative and deostreptamine or streptidine negative mutants were obtained by N-methyl-N'-nitro-N-nitrosomethylguanidine (MNNG) treatment. Many of the survivors from the MNNG treatment lost the ability to produce antibiotics. Major colonies produced less amount of antibiotics ; only few survived colonies produced more antibiotics than the parent. Resistance of Streptomyces spp. against the antibiotics produced by itself was also markedly affected by mutagen treatment.
The present study was to investigate the effect of the transition from conventional to organic dairy farming on the antimicrobial resistant pattern of pathogens in milk. A farm with tie-stall management, with an average herd size of 20 milking cows, was selected based on the owner' willingness to accept, for at least 6 months, the highly restricted protocol developed in this study. Comparisons of bacterial isolates and antimicrobial susceptibilities before changing to an organic farm system (BEFORE) and for 6 months after (AFTER) operating the experimental organic farm system were performed by Fisher's Exact Chi-square tests. Significant levels were defined at p<0.05. During the AFTER period, average frequency of antibiotic treatment was decreased from more than 3 cases/month to less than 1 case/month during which the antibiotic use was authorized only by the veterinarian. In total, 92 and 70 quarter milk samples from 24 and 18 cows during BEFORE and AFTER, respectively, were included in the study. Overall, isolates ranged from a non-resistant level for cephazolin to a very high resistant level to streptomycin (64.71% to 95.45%). Percentages of antimicrobial resistant isolates during BEFORE were significantly higher than during AFTER for ampicillin (43.48% and 5.88%, respectively) and streptomycin (95.45% and 64.71%, respectively). In conclusion, percentages of antimicrobial resistant isolates were decreased after 6 months of operating as an organic farm system.
The Actinomycete strain KH29 is antagonistic to the multidrug-resistant Acinetobacter baumannii. Based on the diaminopimelic acid (DAP) type, and the morphological and physiological characteristics observed through the use of scanning electron microscopy (SEM), KH29 was confirmed as belonging to the genus Streptomyces. By way of its noted 16S rDNA nucleotide sequences, KH29 was found to have a relationship with Streptomyces cinnamonensis. The production of an antibiotic from this strain was found to be most favorable when cultured with glucose, polypeptone, and yeast extract (PY) medium for 6 days at $27^{\circ}C$. The antibiotic produced was identified, through comparisons with reported spectral data including MS and NMR as a cyclo(L-tryptophanyl-L-tryptophanyl). Cyclo(L-Trp-L-Trp), from the PY cultures of KH29, was seen to be highly effective against 41 of 49 multidrug-resistant Acinetobacter baumannii. Furthermore, cyclo(L-Trp-L-Trp) had antimicrobial activity against Bacillus subtilis, Micrococcus luteus, Staphylococcus aureus, Saccharomyces cerevisiae, Aspergillus niger, and Candida albicans, However, it was ineffective against Streptomyces murinus.
Journal of Practical Agriculture & Fisheries Research
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v.25
no.4
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pp.44-52
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2024
This study attempts to derive measures to improve content claims of free antibiotic livestock products(FLP) through analyzing situations for the FLP market and results of survey for its providers. Recently the number of certified farms has been decreasing, but shipments per farm has been increasing. Furthermore as the COVID-19 has increased health and environmental concern, shipments of FLP have showed a steady increase. The distribution channel of FLP, regardless of varieties, is similar to that of general livestock products(GLP). The major results from survey for providers of FLP are little difference in between content claims of GLP and FLP and low utilization of FLP in production of livestock processed products compared with its shipments. The policies for content claims of FLP suggested by this study are permission of FLP authentication labelling for livestock processed products and permission of those which contain FLP over 70% in the first step.
Streptomyces lavendulae FRI-5 produces the ${\gamma}$-butyrolactone autoregulator IM-2, which is required for nucleoside antibiotic producetion. We have developed a system for introducing DNA into S. lavendule FRI-5 via conjugal transfer from Esherichia cole. Conditions were established for conjugation of the oriT-and attP-containing plasmid pSET152 from E. coli ET12567 (pUZ8002) to FRI-5. Conjugation resulted in integration of the plasmid at the chromosomal C31 attB site. The frequency of intergeneric conjugation varied with the medium used. The highest frequency ($1.6\times10-5$ per recipient) was obtained on ISP medium 2 containing 10mM MgCl2. Southern blot and phenotypic analyses of exconjugants revealed that S. lavendulae FRI-5 contains a unique C31 attB site, and that integration of heterologous DNA into the attB site did not interfere with morphological differentiation or IM-2-dependent signal transduction, including the production of a blue pigment. This system will now enable detailed genetic analysis of the regulation of antibiotic production in S. lavendulae FRI-5.
In this study, 200 isolates of fluorescent pseudomonads were isolated from different fields of East and West Azarbaijan and Ardebil provinces of Iran. These bacterial isolates were screened on the basis of a dual culture assay, the presence of known antibiotic genes, and their ability to successfully colonize roots and to promote plant growth. Twelve isolates exhibited 30% or more inhibition of mycelia growth of $P.$$drechsleri$. Genes encoding production of the antibiotics 2,4-diacetylphloroglucinol, phenazine-1-carboxylic acid, and pyoluteorin were detected in some strains but none of the strains possessed the coding gene for production of antibiotic pyrrolnitrin. In an $in$$vitro$ test for root colonization, the population density on roots of plants treated with most of the above strains was more than 6 $\log_{10}$ CFU $g^{-1}$ roots, with a maximum of 7.99 $\log_{10}$ CFU $g^{-1}$ roots for strain 58A. Most of the strains promoted significant plant growth in comparison to non-treated controls. In green house studies, the percentage of healthy plants in pots treated with strains 58A and 8B was 90.8% and 88.7%, respectively. The difference between these treatments and treatment with the fungicide metalaxyl was not significant.
Cronobacter sakazakii is an opportunistic pathogenic bacterium found in powdered infant formula and is fatal to neonates. Antibiotic resistance has emerged owing to overuse of antibiotics. Therefore, demand for high-yield bacteriophages as an alternative to antibiotics has increased. Accordingly, we developed a modified mass-production method for bacteriophages by introducing a two-stage self-cycling (TSSC) process, which yielded high-concentration bacteriophage solutions by replenishing the nutritional medium at the beginning of each process, without additional challenge. pH of the culture medium was monitored in real-time during C. sakazakii growth and bacteriophage CS01 propagation, and the changes in various parameters were assessed. The pH of the culture medium dropped to 5.8 when the host bacteria reached the early log phase (OD540 = 0.3). After challenge, it decreased to 4.65 and then recovered to 4.94; therefore, we set the optimum pH to challenge the phage at 5.8 and that to harvest the phage at 4.94. We then compared phage production during the TSSC process in jar-type bioreactors and the batch culture process in shaker flasks. In the same volume of LB medium, the concentration of the phage titer solution obtained with the TSSC process was 24 times higher than that obtained with the batch culture process. Moreover, we stably obtained high concentrations of bacteriophage solutions for three cycles with the TSSC process. Overall, this modified TSSC process could simplify large-scale production of bacteriophage CS01 and reduce the unit cost of phage titer solution. These results could contribute to curing infants infected with antibiotic-resistant C. sakazakii.
SCO6993 (606 amino acids) in Streptomyces coelicolor belongs to the large ATP-binding regulators of the LuxR family regulators having one DNA-binding motif. Our previous findings predicted that SCO6993 may suppress the production of pigmented antibiotics, actinorhodin, and undecylprodigiosin, in S. coelicolor, resulting in the characterization of its properties at the molecular level. SCO6993-disruptant, S. coelicolor ΔSCO6993 produced excess pigments in R2YE plates as early as the third day of culture and showed 9.0-fold and 1.8-fold increased production of actinorhodin and undecylprodigiosin in R2YE broth, respectively, compared with that by the wild strain and S. coelicolor ΔSCO6993/SCO6993+. Real-time polymerase chain reaction analysis showed that the transcription of actA and actII-ORF4 in the actinorhodin biosynthetic gene cluster and that of redD and redQ in the undecylprodigiosin biosynthetic gene cluster were significantly increased by SCO6993-disruptant. Electrophoretic mobility shift assay and DNase footprinting analysis confirmed that SCO6993 protein could bind only to the promoters of pathway-specific transcriptional activator genes, actII-ORF4 and redD, and a specific palindromic sequence is essential for SCO6993 binding. Moreover, SCO6993 bound to two palindromic sequences on its promoter region. These results indicate that SCO6993 suppresses the expression of other biosynthetic genes in the cluster by repressing the transcription of actII-ORF4 and redD and consequently negatively regulating antibiotic production.
The optimum production condition for the antibiotic from Bacillus thuringiensis BK4 was determined, and the suppression rate of Fusarium-wilt by the butanol-extracted antibiotic was verified by employing tomatoes in vitro and in vivo pot tests. Cell growth and antifungal activity were the best when 0.5% xylose and 0.2% peptone No.3 were given as carbon and nitrogen sources, respectively, in the presence of 5mM $CaCl_2$. The partially purified antibiotic successfully prevented Fusarium oxysporum pathogen in pot experiments. When the pots were treated with both live cells and the partially purified antibiotic, an additive-effect was seen in the suppression of Fusarium-wilt, but synergistic effect was not detected. The antibiotic, denoted BK4, purified by Sephadex LH-20 column chromatography was eluted with a single peak at a retention time of 38 min. on prep-HPLC; Minimum inhibition concentration of the homogenous antibiotic was determined to be 50${\mu}$g/ml.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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