Park, Han-Saem;Ham, Youngseok;Ahn, Hee-Hoon;Shin, Keum;Kim, Yeong-Suk;Kim, Tae-Jong
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.42
no.2
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pp.149-156
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2014
Termites are wood pests that cause vast economic damage every year. They digest both cellulose and starch, but the enzymes for starch digestion have not been well characterized. We obtained complete amino acid sequence information on the KME1 ${\alpha}$-amylase from Reticulitermes speratus KMT1 through analysis of total mRNA sequences. The KME1 enzyme has two ${\alpha}$-amylase domains and is 68% identical to the ${\alpha}$-amylase from Blattellager manica, its closest relative in the GenBank database. Some unique features of its conserved region and its distant evolutionary relationship to other insect ${\alpha}$-amylases suggest that KME1 is a new type of ${\alpha}$-amylase.
Considering the greater role of α-amino acids in our daily lives, the enantiomer resolution of seven α-amino acids derivatized with fluorogenic reagent (4-fluoro-7-nitro-2,1,3-benzoxadiazole, NBD-F) by chiral HPLC on amylose or cellulose trisphenylcarbamate derived chiral stationary phases (CSPs) under simultaneous ultraviolet (UV) and fluorescence (FL) detection was performed. The degree of enantioseparation and resolution was affected by nature and selector backbones of the CSPs as well as the kind of amino acids. Baseline enantiomer separation and resolutions were observed for the enantiomers of all analytes as NBD derivatives especially on coated type amylose tris(3,5-dimethylphenylcarbamate) derived CSPs (Chiralpak AD-H and Lux Amylose-1). The other CSPs also showed good enantioselectivity except for the CSPs (Chiralpak IB, Chiralcel OD-H and Lux Cellulose-1) having cellulose tris(3,5-dimethylphenylcarbamate) as chiral selectors. The developed analytical chiral method was applied to determine the enantiomeric purity of seven commercially available L-α-amino acids and the impurities as D-forms were found to be in the range 0.08-0.87 %, respectively. The intra- and interday accuracy and precision assays showed high accuracy and precision of the developed analytical method. This chiral HPLC method for the enantiomer resolution of amino acids using fluorescent derivatization could be useful for the determination of enantiomeric purity of pharmaceuticals and biological study for amino acid type compounds among chiral drugs.
Lipase (EC 3.1.1.3) in the culture filtrate of Streptomyces coelicolor A3(2) was active on ${\alpha}$-naphthyl-butyrate as well as on various triacylglycerols with different lengths of acyl chains. The extracellular lipase was purified 15-fold by ammonium sulfate fractionation, Sephadex G-100, DEAE-Cellulose and Phenyl-Sepharose CL4B column chromatography with overall yield of 16%. It showed an molecular weight of 34.7 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The enzyme activity with tributyrin as substrate was optimal at pH 8.0~9.0 and at $37^{\circ}C$. The enzyme activity decreased when the chain length of acyl group of triacyglycerol increased. A-factor, a hormone-like regulator of Streptomyces differentiation inhibited the lipase activity, which might corelate with the low enzyme activity in early exponential growth phase.
The extractability and stability of ginkgoflavonolglycosides under presence of several cellulose preparations were investigated. The enzymes used were macerosin, cellulose C and cellulase NC. The content variation of the glycosides was measured with HPLC method, using caffeic acid as an internal standard. The methanol extract of ginkgo leaf, containing the total flavonolglycosides of 4.46%, was used for the content comparison. By extraction with the enzymes, each or mixed, the peak levels of all the glycosides began to decrease after 1 or 2 hours. After 24 hour extraction, most of the glycosides were degraded to minor components. The flavonolglycosides in ginkgo leaf were also hydrolysed simply by the water extraction. After 24 hour extraction with water at $40^{\circ}C$, the peak levels of major glycosides were distinctly decreased. Rutin was hydrolysed by enzyme treatment or by ginkgo leaf itself. As a result, it was concluded that the commercially available cellulases and the ginkgo leaf itself contain the activities of $\beta$-glycosidase and $\alpha$-rhamnosidase. Kaempferol-3-O-(6'"-O-p-coumaroylglucosyl)-rhamnoside and four other ginkgo flavonolglycosides were not hydrolysed under the same condition.tion.
Production of acetic acid from cellulosic biomass by Simultaneous Saccharification and Extractive Fermentation (SSEF) was investigated. The homoacetate organism used in this study was a strain of Clostridium thermoaceticum, ATCC # 49707. A batch operation of Simultaneous Saccharification and Fermentation(SSF) using ${\alpha}$-cellulose at pH 5.5 and 55$^{\circ}C$ yielded 40% conversion of cellulose to acetic acid, while a fed-batch SSF operation produced a maximum acetic acid concentration of 25 g/L, with 50% overall yield. In-situ extractive fermentation to reduce the end-product inhibition on both bacteria and enzyme was carried out. in a batch SSEF using 200 g/L IRA-400 resin, acetic acid concentration reached to 23.9 g/L and acetic acid yield and productivity were observed to be 48% and 0.20 g/L-hr, respectively.
To elucidate enzymatic properties of a-glactosidase (EC 3.2.1.22) from Asp. niger, a-galactosidase from wheat bran culture was purified by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography and gel filtration. And then its enzymatic propeties were investigated. The highest level of $\alpha$-galactosidase activity was obtained when Asp. niger was grown on wheat bran medium at $30^{\circ}C$ for 96 hours. The $\alpha$-galactosidase was purified by 23.7 fold by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography on DEAE-Celluose and Sephadex A-50, and gel filtration on Sephadex G-150 and its specific activity was 1,229 Unitslmg protein and the yield was 14% of the total activity of wheat bran culture. The purified $\alpha$-galactosidase was found to be homogeneous by polyacrylamide gel electrophoresis and HPLC. The $\alpha$-galactosidase was a tetrameric glycoprotein which consisted of identical subunits with molelcular weight of 28,000 each by SDS-PAGE and isoelectric point was determined analytical isoelectric focusing to be pH 4.6. The optimal temperature and pH for the $\alpha$-galactosidase activity were $40^{\circ}C$ and pH 6.5, respectively, and 54% of its activity was lost by heating at $60^{\circ}C$ for 10 mins, It was appeared to have higher affinty to raffinose than to stachyose. The K, value and activation energy of $\alpha$-galactosidase were 5.0 mM and 8.515 Kcal per mole for p-nitrophenyl- $\alpha$--D-galactopyranoside, respectively.
Cellulase from Aspergillus niger, (${\alpha}$-amylase from Bacillus sp. and protease from Bacillus globigii were used as enzyme sources in this study to examine how their respective substrates protect them in two kinds of simulated gastrointestinal tract digesting processes. Avian total digest tract simulation test showed that filter paper, Avicel and cellulose resulted in 7.7, 6.4 and 7.4 times more activity than of unprotected cellulose, respectively. Protease with addition of casein, gelatin or soybean protein showed no significant protection response. Starch protected amylase to be 2.5 times activity of the unprotected one. Monogastric animal total tract digestion simulation test showed that filter paper, Avicel and cellulose resulted in 5.9, 9.0 and 8.8 times activity of unprotected cellulase, respectively. Casein, gelatin and soybean protein resulted in 1.2, 1.3 and 2.0 times activity of unprotected protease, respectively. Starch did not protect amylase activity in monogastric animal total tract simulation. Protection of mixed enzymes by substrates in two animal total tract simulation tests showed that filter paper in combination with soybean protein resulted in 1.5 times activity of unprotected cellulose, but all substrates tested showed no significant protection effect to protease. Soybean protein and starch added at the same time protected the amylase activity to be two times of the unprotected one. Test of non-purified substrate protection in two animal total digest tract simulation showed that cellulase activity increased as BSA (bovine serum albumin) concentration increased, with the highest activity to be 1.3 times of unprotected enzyme. However, BSA showed no significant protection effect to protease. Amylase activity increased to 1.5 times as BSA added more than 1.5% (w/v). Cellulase activity increased to 1.5 times as soybean hull was added higher than 1.5%. Amylase had a significant protection response only when soybean hull added up to 2%. Protease activity was not protected by soybean hull to any significant extent.
Kim, Jin-Gu;Shin, Seung-Ryeul;Kim, Kwang-Soo;Shon, Tae-Hwa
Applied Biological Chemistry
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v.31
no.4
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pp.351-355
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1988
This study carried out to change ${\alpha}-amylase$ activity and isozymes in barley during germination in the dark and red light. The specific activity of ${\alpha}-amylase$ increased during the germination in the dark, giving 355.0 and 523.7 units/mg protein at 3 and 5 days, and the activity was increased by the red light up to 48 and 15% at 3 and 5 days of germination, respectively. The ratio of ${\alpha}-amylase$ I and II was approximately 95 : 5 at both 3 and 5 days of germination in the dark while the different ratio was found by the red light i.e. 60 : 40 and 90 : 10 at 3 and 5 days of germination, respectively.
The ${\alpha}-Amylase$ inhibitor from black bean(Phaseolus vulgaris) was purified to homogeneity using 70% saturated ammonium sulfate, DEAF-cellulose, Concanavalin-A sepharose chromatography and gel filtration with Superose 6. The purified α-amylase inhibitor showed a single band of 25 KD in molecular weight on the SDS-PAGE. The specific activity of the inhibitor was 544.0 units/mg and the purity was enhanced about 18-fold. The amino acids of ${\alpha}-Amylase$ inhibitor from black bean was mainly glutamic acid, aspartic acid and lysine. The inhibitor was glycoproteins and its carbohydrate contents was 3.2%.
The chemical compositions, cell wall biopolymers and non-isothermal behavior of the stem biomass of Nicotiana Tabacum originated from tobacco industry were investigated in depth. On a weight basis, the contents of total ash and total sugar are 19.1% and 20.7% respectively. Lignin content was around 3% of tobacco stem biomass while pectin was over 7%. The holo-cellulose content in cell wall biopolymer was around 13% and the $\alpha$-cellulose constitutes 60% of the total holo-cellulose. The thermal behavior of stem biomass showed different patterns depending on either inert (nitrogen) or oxidizing (air) atmospheric condition. In the air atmosphere, the rapid thermal decompositions at around $473^{\circ}C$ and $581^{\circ}C$ were recorded as the peaks in DTG curve, while the peaks were not shown in the nitrogen atmosphere condition. The thermal analysis of the freeze dried soluble obtained from hot water extraction of tobacco stem biomass showed that the rapid thermal decomposition at around $581^{\circ}C$ in the air atmosphere was due to the residual char originated from the soluble fraction. The distinct difference in thermal decomposition between hemicellulose and cellulose were easily found in the DTG curve obtained in the nitrogen atmosphere.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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