Severe crown gall disease was occurred in green house cultivating rose in Jinchen, Chungbuk recently. Although it causes problem on rose cultivation, the growers do not have many choices of control measures for the disease now. Agrobacterium radiobacter K84 has been known as a strong antagonist against A. tumefaciens, a pathogen causing crown gall disease, and used as a biopesticide for crown gall in many countries since it had been introduced in 1972. We tested control activity of A. radiobacter K84 for the crown gall disease on rose. Spray of A. radiobacter K84 suspension on above ground of rose either before or after pathogen spray reduced size and fresh weight of galls significantly. Size and fresh weight of galls on roses inoculated with pathogen either before A. radiobacter K84 spray (pathogen-K84 treatment) or after A. radiobacter K84 spray(K84-pathogen treatment) were 4 to 5% of those of galls on roses inoculated pathogen only. Disease incidence of plants inoculated pathogen only was 85% whereas disease incidence of pathogen-K84 or K84-pathogen treatments were 6.7% and 5.0% respectively. Dipping of roots of rose in suspension of A. radiobacter K84 was also reduced size of galls and diseased rate significantly. These results indicate that A. radiobacter K84 is effective in the prevention of gall formation by A. tumefaciens and it can be used to control of crown gall disease of rose.
Lee, Young Bok;Seong, Bong Jae;Lee, Eun Gyoung;Lee, Ki Won;Choi, Kwan Sam
Korean Journal of Agricultural Science
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v.20
no.2
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pp.133-144
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1993
Calli were induced on microtuber disks of potato(S.tuberosum) infected with three binary vectors transconjugated with C58, A281 and LBA 4404 of Agrobacterium tumefaciens and pBI121. The frequency inducing callus was the highest by infection of C121 carrying pC58 and pBI121, and shoots were differentiated on the calli without any hormonal application. Transformed calli were selected by their resistance to kanamycin and identified by GUS activity. The frequency of callus formation by infection of binary vector strain was affected according to the hormonal application.
This study was conducted to develop herbicide-resistance domestic maize plants by introducing the CP4 5-enol-pyruvylshikimate-3-phosphate synthase (CP4 EPSPS) gene using Agrobacterium tumefaciens-mediated immature embryo transformation. Immature embryos of five genotypes (HW1, KL103, HW3, HW4, HW7) were co-cultivated with strains Agrobacterium tumefaciens (strain C58C1) containing the binary vector (pCAMBIA2300) carrying Ubiquitin promoter-CP4 EPSPS gene and Cauliflower mosaic virus 35S (CaMV35S) promoter-nptll gene conferring resistance to paromomycin as a selective agent. The presence and expression of CP4 EPSPS transgene were confirmed by PCR, RT-PCR and Northern blot analysis, respectively. Also, the resistance to glyphosate in the transgenic maize ($T_1$) was analyzed by shikimate accumulation assay. The frequency (%) of paromomycin-resistance callus was 0.37, 0.03, 2.20, 2.37, and 0.81% in pure lines HW1, KL103, HW3, HW4 and HW7, respectively. EPSP transgene sequences were amplified in putative transgenic plants that regenerated from paromomycin-resistance calli of two inbred lines (HW3, HW4). Of them, RT-PCR and Northern blot analyses revealed that the transgene was only expressed in two transgenic events (M266, M104) of HW4 inbred line, and a mild glyphosate resistance of transgenic event (M266) was confirmed by the lower shikimate accumulation in leaf segments. These results demonstrate that transgenic maize with herbicide-resistance traits in Korean genotype can be genetically obtained.
Optimal shoot regeneration and transformation conditions of root type chicory (Cichorium intybus L. var. sativus cv Cesare) were studied. Leaf explants were co-cultured with Agrobacterium tumefaciens, which contained NPTII as a selectable marker and a rice homeotic gene, OsMADS1, that encodes a MADS-domain-containing transcription factor. After one day of co-cultivation, explants were transferred to selection media consisting of MS basal medium supplemented with 0.5 mg/L BAP, 0.1 mg/L IAA, 70 mg/L kanamycin, and 250 mg/L cefotaxime. PCR and Southern blot analyses revealed stable integration of the OsMADS1 gene in the chicory genome. Four-teen original transgenic plants ($T_o$ plants) were acclimatized in the greenhouse and examined for their morphological characters. Most of the transgenic plants showed altered morphologies, such as short, bushy, and early-flowering phenotypes with reduced apical dominance. Additionally, half of the transgenic plants exhibited altered leaf shapes, and 4 out of 14 plants were sterile. These phenotypes were inherited by the next generation. Northern blot analysis confirmed expression of the OsMADS1 gene in both floral and vegetative organs.
The effects of media and elicitors on betalain, phytolaccoside G and D2 production were examined in the hairy roots of Phytolacca esculenta van Houtte induced by Agrobacterium tumefaciens $A_4$T. Phytolaccoside G and D2 from Phytolacca hairy roots PEH2 were identified by TLC, HPLC, IR, Mass, $^1$H-NMR, and ^(13)C-NMR. Among the culture media tested, SH medium was the best for hairy root growth of hairy roots. White medium was the most suitable medium for betalain production, while MS medium was for phytolaccoside G and D2 production. Although the growth of hairy roots was supped by light (1,000 Lux), the production of betalain, phytolaccoside G and D2 was enhanced by the same light treatment. Addition of elicitors such as NaF, chitosan, and yeast extract to the culture medium increased the content of betalain, phytolaccoside G and D2, suggesting the importance of culture condition for the production of those componds.
This study describes an efficient protocol for Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of two subgroups of genotype AAA bananas (Musa acuminata cv. Pei Chiao and Musa acuminata cv. Gros Michel). Instead of using suspension cells, cauliflower-like bud clumps, also known as multiple bud clumps (MBC), were induced from sucker buds on MS medium containing $N^6$-Benzylaminopurine (BA), Thidiazuron (TDZ), and Paclobutrazol (PP333). Bud slices were co-cultivated with A. tumefaciens C58C1 or EHA105 that carry a plasmid containing Arabidopsis root-type ferredoxin gene (Atfd3) and a plant ferredoxin-like protein (pflp) gene, respectively. These two strains showed differences in transformation efficiency. The EHA105 strain was more sensitive in Pei Chiao, 51.3% bud slices were pflp-transformed, and 12.6% slices were Atfd3-transformed. Gros Michel was susceptible to C58C1 and the transformation efficiency is 4.4% for pflp and 13.1% for Atfd3. Additionally, gene integration of the putative pflp was confirmed by Southern blot. Resulting from the pathogen inoculation assay, we found that the pflp transgenic banana exhibited resistance to Fusarium oxysporum f. sp. cubense tropical race 4. This protocol is highly advantageous to banana cultivars that have difficulties in setting up suspension cultures for the purpose of quality improvement through genetic transformation. In addition, this protocol would save at least 6 months in obtaining explants for transformation and reduce labor for weekly subculture in embryogenic cell suspension culture systems.
Robinia pseudoacacia var. umbraculifera, commonly called umbrella black locust were regenerated after co-cultivation of internode segments with Agrobacterium tumefaciens which included yeast cadmium factor 1 (YCF 1) gene. The tolerance to cadmium and lead for plants can be increased by the YCF1 gene expression. Moreover, the recent studies have shown that YCF1 gene transgenic plants increase the accumulation of cadmium and lead into plant vacuoles. The effect of plant growth regulator such as 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), ${\alpha}$-naphthaleneacetic acid (NAA), 6-benzyladenine (BA), and thidiazuron (TDZ) were studied to evaluate the propagation of plants through internode explants. The efficient induction of multiple adventitious shoots and callus were observed on a medium supplemented with 0.1 mg/L TDZ + 0.2 mg/L BA. To induce shoot elongation and rooting, regenerated shoots were transferred into basal MS medium without any plant growth regulator. Successful Agrobacterium tumefaciens mediated transformation was obtained by 20 min vacuum-infiltration with $50{\mu}M$ acetosyringone on the optimal multiple shoot induction medium with 30 mg/L hygromycin and 300 mg/L cefotaxime. To confirm the integration and expression of transgene, Polymerase Chain Reaction (PCR) and Reverse Transcriptase PCR (RT-PCR) were performed with specific primers. The frequency of transformation was approximately 18.94%. This study can be used to genetic engineering of phytoremediator.
Seo Sang-Tae;Lee Jung-Sup;Park Jong-Han;Han Kyoung-Suk;Jang Han-Ik
Research in Plant Disease
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v.12
no.1
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pp.51-54
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2006
The effectiveness of four plant oils (garlic, ginger, cinnamon and lemongrass) against a range of plant pathogenic organisms was tested in vitro. Of the four oils, two oils (garlic and cinnamon) showed relatively good antimicrobial activities. Activity of garlic oil was shown against the plant pathogenic bacteria Agrobacterium tumefaciens, Ewinia carotovora, Ralstonia solanacearum, Xanthomonas campestris, and the fungi Phytophthora infestans, Fusarium oxysporum, Collectotricum sp., whereas Acidovorax avenae and Pythium sp. showed the resistance towards garlic oil. Results from the planta bioassays under greenhouse conditions indicated that garlic oil significantly reduced the cucumber powdery mildew (Sphaerotheca fusca) and tomato powdery mildew (Erysiphe cichoracearum) showing control value 70.0-74.6% and 71.2%, respectively.
Alginate lyases, also known as alginases or alginate depolymerases, catalyze the degradation of alginate by a ${\beta}$-elimination mechanism that has yet to be fully elucidated. Alginate is a copolymer of ${\alpha}$-L-guluronate (G) and its C5 epimer ${\beta}$-D-mannuronate (M), arranged as homopolymeric G blocks, M blocks, alternating GM or random heteropolymeric G/M stretches. Almost all alginate lyases depolymerize alginate in an endolytical fashion via a ${\beta}$-elimination reaction. The alginate lyase Atu3025 from Agrobacterium tumefaciens strain C58, consisting of 776 amino-acid residues, is a novel exotype alginate lyase classified into polysaccharide lyase family 15. Till now there is no crystal structure available for this class of proteins. Since there is no template with high sequence identity, three-dimensional coordinates for exotype alginate lyase (PL 15 family) were determined using modeling methods (Comparitive modeling and Fold recognition). The structures were modeled using the X-ray coordinates from Heparinase protein family (PDB code: 3E7J). This enzyme (Atu3025) displays enzymatic activity for both poly-M and poly-G alginate. Since poly-M is widespread; docking of a tri-mannuronate against the modeled structure was performed. We identified some of those residues which are crucial for lyase activity. The results from this study should guide future mutagenesis studies and also provides a starting point for further proceedings.
We have investigated the effect of culture conditions on tropane alkaloids (scopolamine, hyoscyamine) production in hairy root cultures of Hyoscyamus niger L. induced by Agrobacterium tumefaciens $A_4$T. SH medium was the best for tropane alkaloids production from the hairy root clones, HN18 and HN57. The optimum culture peroid was 5 weeks for HN18 clone and 6 weeks for HN57 clone, respectively. The optimum sucrose and dextrose concentrations in tropane alkaloids productivity were 3% and 2%, respectively. The growth of both HN18 and HN57 clones increased with as sucrose concentration increase up to 7% sucrose, but tropane alkaloid contents was significantly decreased. In the HN18 clone, the optimum concentration of sucrose for alkaloids productivity was 5% and those of dextrose was 2%. The productivity of tropane alkaloids for HN57 clone under dextrose treatments was quite a low level compared to sucrose treatments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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