Permissive action of thyroid hormone at the level of Ca channel and responsible mechanisms underlying thyroid hormone-induced change in myocardial contractile state and $T_3-induced$ arrhythmias were investigated in rabbit ventricular or atrial myocytes using whole cell patch clamp technique. Single cells were isolated by Langendorff perfusion with collagenase. Cardiac myocytes were incubated in $low-Cl^-,$, $high-K^+$ medium containing $1_{\mu}M\;L-triiodothyronine\;(T_3)$ at $4^{\circ}C$ for 2.10 hours. The calcium currrent $(I_{Ca})$ was increased in $T_3$ loaded cells, however, the shape of current voltage curve and reverse potential did not altered. Cyclic AMP, cyclic GMP, isoprenaline and 3-isobutyl-1-methyl-xanthine increased $I_{Ca}$ in euthyroid and hyperthyroid conditions, and acetylcholine blocked the increase of $I_{Ca}\;in\;T_3$ loaded cells. The amplitude of $I_{Ca}$ was much larger after perfusing cGMP than cGMP in both conditions, whereas the degree of increase of $I_{Ca}$ was greater after perfusing cAMP than cGMP in $T_3$ loaded cells. The degree of increase of $I_{Ca}$ after perfusing isoprenaline or IBMX also was greater in $T_3$ loaded cells than in control cells. Background current induced by isoprenaline also increased in $T_3$ loaded cells. The Ca release dependent inward current was increased in amplitude but its activation and inactivation time course was not changed in $T_3$ loaded cells. Activation of Na pump current was not changed in $T_3$ loaded cells. From the above results it is suggested that thyroid hormone induced increase in the contractile state of cardiac myocytes are accompanied by augmented $I_{Ca}$ and the increase of Ca release from sarcoplasmic reticulum and the permissive action of thyroid hormone to catecholamines could induce arrhythmias through the increase of $I_{Ca}$ and background current.
지금까지 각종 신경전달물질의 칼슘통로 억제 효과는 일반적으로 protein kinase 의 관여없이 G-protein mediated, membrane-delimited mechanism$^{1)}$ 으로 설명되어왔다. 그러나 최근들어 protein kinase C (PKC)의 활성화가 몇몇 신경전달물질에 의한 칼슘통로 억제효과를 야기하는 중요한 세포내 기전으로 보고되고 있다 그러므로 본 연구에서는 흰쥐 교감신경뉴론을 대상으로 하여 whole cell patch clamp technique을 사용하여 칼슘전류를 기록하고, 세포밖에 norepinephrine (NE)과 함께 PKC agonist 인 phorbol-12, 13-dibutyrate (PDBu)을 투여하면서 PDBu 전 처치로 인하여 NE 에 의한 칼슘전류 억제에 어떤 변화가 초래되는 지를 분석함으로써, 신경전달물질의 칼슘전류 억제효과시 PKC의 역할을 밝히고자 하였다. PDBu (500 nM) 처치는 칼슘전류의 크기를 증가시켰으며 이는 막전압 의존성을 보여 -10 mV ~ +10 mV 의 저분극 자극시 가장 크게 전류크기가 증가하였다. 또한 PDBu 처치는 tail current 의 deactivation을 느리게 하였다. PDBu 는 NE 에 의하여 활성화되는 pertussis toxin 예민성 G protein pathway를 통한 칼슘전류 억제를 감소시켰다. 비특이적인 protein kinase 길항제인 staurosporine (1 $\mu$M) 을 전처치 하고 PDBu를 투여하면 PDBu의 칼슘전류 크기 증가 효과가 소실되었으며 또한 NE에 의한 칼슘전류 억제를 해제하는 PDBu 의 조절효과도 소실되었다. 이상의 결과로부터 Protein Kinase C 가 활성되면 G protein을 경유하여 나타나는 칼슘전류 억제 효과가 소실된다고 결론지을 수 있다. Protein Kinase C 에 의하여 인산화되는 부위가 G-protein 인지 혹은 칼슘통로인 지에 관한 해답을 얻기 위하여는 추후 연구가 진행되어야 한다.
A variety of G protein coupled receptors (GPCRs) are expressed in the presynaptic terminals of central and peripheral synapses and play regulatory roles in transmitter release. The patch-clamp whole-cell recording technique, applied to the calyx of Held presynaptic terminal in brainstem slices of rodents, has made it possible to directly examine intracellular mechanisms underlying the GPCR-mediated presynaptic inhibition. At the calyx of Held, bath-application of agonists for GPCRs such as $GABA_B$ receptors, group III metabotropic glutamate receptors (mGluRs), adenosine $A_1$ receptors, or adrenaline ${\alpha}2$ receptors, attenuate evoked transmitter release via inhibiting voltage-activated $Ca^{2+}$ currents without affecting voltage-activated $K^+$ currents or inwardly rectifying $K^+$ currents. Furthermore, inhibition of voltage-activated $Ca^{2+}$ currents fully explains the magnitude of GPCR-mediated presynaptic inhibition, indicating no essential involvement of exocytotic mechanisms in the downstream of $Ca^{2+}$ influx. Direct loadings of G protein ${\beta}{\gamma}$ subunit $(G{\beta}{\gamma})$ into the calyceal terminal mimic and occlude the inhibitory effect of a GPCR agonist on presynaptic $Ca^{2+}$ currents $(Ip_{Ca})$, suggesting that $G{\beta}{\gamma}$ mediates presynaptic inhibition by GPCRs. Among presynaptic GPCRs glutamate and adenosine autoreceptors play regulatory roles in transmitter release during early postnatal period when the release probability (p) is high, but these functions are lost concomitantly with a decrease in p during postnatal development.
The interaction of cyclosporine A (CsA), an immunosuppressant, with rat brain Kv1.5 (Kv1.5) channels, which were stably expressed in Chinese hamster ovary cells, was investigated using the whole-cell patch-clamp technique. CsA reversibly blocked Kv1.5 currents at +50 mV in a reversible concentrationdependent manner with an apparent $IC_{50}$ of 1.0μM. Other calcineurin inhibitors (cypermethrin, autoinhibitory peptide) had no effect on Kv1.5 and did not prevent the inhibitory effect of CsA. Fast application of CsA led to a rapid and reversible block of Kv1.5, and the onset time constants of the CsA-induced block were decreased in a concentration-dependent manner. The CsA-induced block of Kv1.5 channels was voltage-dependent, with a steep increase over the voltage range of channel opening. However, the block exhibited voltage independence over the voltage range in which channels were fully activated. The rate constants for association and dissociation of CsA were $7.0{\mu}M{-1}s^{-1}$ and $8.1s^{-1}$, respectively. CsA slowed the deactivation time course, resulting in a tail crossover phenomenon. Block of Kv1.5 by CsA was use-dependent. CsA also blocked Kv1.3 currents at +50 mV in a reversible concentration-dependent manner with an apparent $IC_{50}$ of $1.1{\mu}M$. The same effects of CsA on Kv1.3 were also observed in excised inside-out patches when applied to the internal surface of the membrane. The present results suggest that CsA acts directly on Kv1.5 currents as an open-channel blocker, independently of the effects of CsA on calcineurin activity.
The effect of cyclosporin A (CsA), an immunosuppressant, on human ether-a-go-go-related gene (HERG) channel as it is expressed in human embryonic kidney cells was studied using a whole-cell, patch-clamp technique. CsA inhibited the HERG channel in a concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ value and a Hill coefficient of $3.17{\mu}m$ and 0.89, respectively. Pretreatment with cypermethrine, a calcineurin inhibitor, had no effect on the CsA-induced inhibition of the HERG channel. The CsA-induced inhibition of HERG channels was voltage-dependent, with a steep increase over the voltage range of the channel opening. However, the inhibition exhibited voltage independence over the voltage range of fully activated channels. CsA blocked the HERG channels predominantly in the open and inactivated states rather than in the closed state. Results of the present study suggest that CsA acts directly on the HERG channel as an open-channel blocker, and it acts independently of its effect on calcineurin activity.
Park, Seojin;Kang, Minji;Heo, Ryeon;Mun, Seo-Yeong;Park, Minju;Han, Eun-Taek;Han, Jin-Hee;Chun, Wanjoo;Park, Hongzoo;Park, Won Sun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제26권5호
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pp.397-404
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2022
Fesoterodine, an antimuscarinic drug, is widely used to treat overactive bladder syndrome. However, there is little information about its effects on vascular K+ channels. In this study, voltage-dependent K+ (Kv) channel inhibition by fesoterodine was investigated using the patch-clamp technique in rabbit coronary artery. In whole-cell patches, the addition of fesoterodine to the bath inhibited the Kv currents in a concentration-dependent manner, with an IC50 value of 3.19 ± 0.91 μM and a Hill coefficient of 0.56 ± 0.03. Although the drug did not alter the voltage-dependence of steady-state activation, it shifted the steady-state inactivation curve to a more negative potential, suggesting that fesoterodine affects the voltage-sensor of the Kv channel. Inhibition by fesoterodine was significantly enhanced by repetitive train pulses (1 or 2 Hz). Furthermore, it significantly increased the recovery time constant from inactivation, suggesting that the Kv channel inhibition by fesoterodine is use (state)-dependent. Its inhibitory effect disappeared by pretreatment with a Kv 1.5 inhibitor. However, pretreatment with Kv2.1 or Kv7 inhibitors did not affect the inhibitory effects on Kv channels. Based on these results, we conclude that fesoterodine inhibits vascular Kv channels (mainly the Kv1.5 subtype) in a concentration- and use (state)-dependent manner, independent of muscarinic receptor antagonism.
We examined the effects of psoralen derivatives on a rapidly activating delayed rectifier $K^+$ channel (hKv1.5) cloned from human heart and stably expressed in $Ltk^-$ cells. Using the whole cell configuration of the patch-clamp technique, we found that the five psoralen derivatives inhibited hKv1.5 current. Especially, 4-(2-Propenyloxy)-7H-furo[3,2-g][1]benzopyran-7-one (compound 5) was more potent than the inhibition of the hKv1.5 current of psoralen. The compound 5 inhibited the hKv1.5 current in a concentration-, time-, and voltage-dependent manner. These results suggest that the compound 5 is an excellent candidate as an antiarrhythmic drug for atrial fibrillation.
Torilin was purified from Torilis japonica (Houtt.) DC., and its effects on a rapidly activating delayed rectifier $K^+$ channel (hKv1.5), cloned from human heart and stably expressed in Ltk cells, as well as the corresponding $K^+$ current (the ultrarapid delayed rectifier, $I_{KUR}$) were assessed in human atrial myocytes. Using the whole cell configuration of the patch-clamp technique, torilin was found to inhibit the hKv1.5 current in time and voltage-dependent manners, with an $IC_50$ value of $2.51{\pm}0.34\;{\mu}M$ at +60 mV. Torilin accelerated the inactivation kinetics of the hKv1.5 channel, and slowed the deactivation kinetics of the hKv1.5 current, resulting in a tail crossover phenomenon. Additionally, torilin inhibited the hKv1.5 current in a use dependent manner. These results strongly suggest that torilin is a type of open-channel blocker of the hKv1.5 channel.
Choi, Seok;Choi, Jeong June;Jun, Jae Yeoul;Koh, Jae Woong;Kim, Sang Hun;Kim, Dong Hee;Pyo, Myoung-Yun;Choi, Sangzin;Son, Jin Pub;Lee, Inki;Son, Miwon;Jin, Mirim
Molecules and Cells
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제27권3호
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pp.307-312
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2009
The interstitial cells of Cajal (ICC) are pacemaking cells required for gastrointestinal motility. The possibility of whether DA-9701, a novel prokinetic agent formulated with Pharbitis Semen and Corydalis Tuber, modulates pacemaker activities in the ICC was tested using the whole cell patch clamp technique. DA-9701 produced membrane depolarization and increased tonic inward pacemaker currents in the voltage-clamp mode. The application of flufenamic acid, a non-selective cation channel blocker, but not niflumic acid, abolished the generation of pacemaker currents induced by DA-9701. Pretreatment with a $Ca^{2+}$-free solution and thapsigargin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in the endoplasmic reticulum, abolished the generation of pacemaker currents. In addition, the tonic inward currents were inhibited by U-73122, an active phospholipase C inhibitor, but not by $GDP-{\beta}-S$, which permanently binds G-binding proteins. Furthermore, the protein kinase C inhibitors, chelerythrine and calphostin C, did not block the DA-9701-induced pacemaker currents. These results suggest that DA-9701 might affect gastrointestinal motility by the modulation of pacemaker activity in the ICC, and the activation is associated with the non-selective cationic channels via external $Ca^{2+}$ influx, phospholipase C activation, and $Ca^{2+}$ release from internal storage in a G protein-independent and protein kinase C-independent manner.
Substantia nigra is known to highly express glibenclamide binding site, a protein associated to ATP-sensitive $K^{+}$ ($K_{ATP}$) channel in the brain. However, the functional expression of $K_{ATP}$ channels in the area is not yet known. In this work, we attempted to estimate the functional expression of $K_{ATP}$ channels in neurons of the substantia nigra pars compacta (SNC) in young rats using slice patch clamp technique. Membrane properties and whole cell currents attributable to $K_{ATP}$ channel were examined by the current and voltage clamp method, respectively. In SNC, two sub-populations of neurons were identified. Type I (rhythmic) neurons had low frequency rebound action potentials ($4.5{\pm}0.25Hz$, n=75) with rhythmic pattern. Type II (phasic) neurons were characterized by faster firing ($22.7{\pm}3.16Hz$, n=12). Both time constants and membrane capacitance in rhythmic neurons ($34.0{\pm}1.27$ ms, $270.0{\pm}11.83$ pF) and phasic neurons ($23.7{\pm}4.16$ ms, $184{\pm}35.2$ pF) were also significantly different. The current density of $K_{ATP}$ channels was $6.1{\pm}1.47$ pA/pF (2.44~15.43 pA/pF, n=8) at rhythmic neurons of young rats. Our data show that in SNC there are two types of neurons with different electrical properties and the density of $K_{ATP}$, channel of rhythmic neuron is about 600 channels per neuron.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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