The effects of (-)-epigallocatechin gallate (EGCG) on pacemaker activities of cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from murine small intestine were investigated using whole-cell patch-clamp technique at $30^{\circ}C$ and $Ca^{2+}$ image analysis. ICC generated spontaneous pacemaker currents at a holding potential of -70 mV. The treatment of ICC with EGCG resulted in a dose-dependent decrease in the frequency and amplitude of pacemaker currents. SQ-22536, an adenylate cyclase inhibitor, and ODQ, a guanylate cyclase inhibitor, did not inhibit the effects of EGCG. EGCG-induced effects on pacemaker currents were not inhibited by glibenclamide, an ATP-sensitive $K^+$ channel blocker and TEA, a $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel blocker. Also, we found that EGCG inhibited the spontaneous $[Ca^{2+}]_i$ oscillations in cultured ICC. In conclusion, EGCG inhibited the pacemaker activity of ICC and reduced $[Ca^{2+}]_i$ oscillations by cAMP-, cGMP-, ATP-sensitive $K^+$ channel-independent manner.
Kim, Byung Joo;Lee, Jae Hwa;Jun, Jae Yeoul;Chang, In Youb;So, Insuk;Kim, Ki Whan
Molecules and Cells
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제21권3호
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pp.337-342
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2006
Interstitial cells of Cajal (ICCs) are pacemaker cells that activate the periodic spontaneous depolarization (pacemaker potentials) responsible for the production of slow waves in gastrointestinal smooth muscle. The effects of vasoactive intestinal polypeptide (VIP) on the pacemaker potentials in cultured ICCs from murine small intestine were investigated by whole-cell patch-clamp techniques. Addition of VIP (50 nM-$1{\mu}M$) decreased the amplitude of pacemaker potentials and depolarized resting membrane potentials. To examine the type of receptors involved in ICC, we examined the effects of the $VIP_1$ agonist and found that it had no effect on pacemaker potentials. Pretreatment with $VIP_1$ antagonist ($1{\mu}M$) for 10 min also did not block the VIP (50 nM)-induced effects. On the other hand exposure to 1H-(1,2,4)oxadiazolo(4,3-A)quinoxalin-1-one (ODQ, $100{\mu}M$), an inhibitor of guanylate cyclase, prevented VIP inhibition of pacemaker potentials. Similarly KT-5823 ($1{\mu}M$) or RP-8-CPT-cGMPS ($10{\mu}M$), inhibitors of protein kinase G (PKG) blocked the effect of VIP (50 nM) on pacemaker potentials as did N-nitro-L-arginine (L-NA, $100{\mu}M$), a non-selective nitric oxide synthase (NOS) inhibitor. These results imply that the inhibition of pacemaker activity by VIP depends on the NO-cGMP-PKG pathway.
The purpose of this study is to investigate the effects of Carthami Flos on interstitial cells of Cajal in the gastrointestinal tract. Many regions of the tunica muscularis of the gastrointestinal (GI) tract display spontaneous contraction. These spontaneous contractions are mediated by periodic generation of electrical slow waves. Recent studies have shown that the interstitial cells of Cajal (ICCs) act as pacemakers and conductors of electrical slow waves in gastrointestinal smooth muscles. We investigated the cytotoxicity activity, antioxidant activity, and pacemaking activity. The cytotoxicity activity was measured by MTT (3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2,5-diphenyltetrazolium bromide) assay. Antioxidant activities were determined by DPPH (1.1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) radical scavenging capacity assay and DCFH-DA (2,7-dichlorofluorescein diacetate) method. The effects of Carthami Flos on the pacemaker potentials in cultured ICCs from murine small intestine were investigated by using whole-cell patch-clamp techniques at $30^{\circ}C$. The addition of Carthami Flos (5, 10, $30{\mu}g$/ml) depolarized the resting membrane potentials in a concentration dependent manner. These results suggest that the GI tract can be targets for Carthami Flos, and their interaction can affect intestinal motility.
Objectives : The purpose of this study was to investigate the effects of Carthami flos on pacemaker potentials of small intestinal and colonic Interstitial Cells of Cajal (ICC). Methods : To dissociate the ICC, we used enzymatic digestions from the small intestine and colon in mice. In the ICC, the electrophysiological whole-cell patch-clamp configuration was used to record pacemaker potentials in the cultured ICC. Results : 1. The ICC generated pacemaker potentials in the murine small intestine and colon. 2. Pretreatment with a Ca2+ free solution and thapsigargin, a Ca2+-ATPase inhibitor in the endoplasmic reticulum, stopped the pacemaker potentials. In the case of Ca2+-free solutions, Carthami flos did not induce membrane depolarizations in the murine small intestine and colon. However, when thapsigargin in a bath solution was applied, Carthami flos induced membrane depolarizations only in the murine colon. 3. Pretreatment with 2-APB (transient receptor potential melastatin (TRPM) channel inhibitor) abolished the pacemaker potentials and suppressed Carthami flos-induced effects in the murine small intestine and colon. 4. However, pretreatment with T16Ainh-AO1 (Ca2+ activated Cl- channel; anoctamin 1 (ANO1) inhibitor) did not affect the pacemaker potentials and induced Carthami flos-induced effects only in the murine small intestine. Conclusions : These results suggest that Carthami flos can modulate the pacemaker activity of ICC and the mechanisms underlying pacemaking in ICC might be different in the small intestine and the colon.
Lubiprostone is a chloride ($Cl^-$) channel activator derived from prostaglandin $E_1$ and used for managing constipation. In addition, lubiprostone affects the activity of gastrointestinal smooth muscles. Interstitial cells of Cajal (ICCs) are pacemaker cells that generate slow-wave activity in smooth muscles. We studied the effects of lubiprostone on the pacemaker potentials of colonic ICCs. We used the whole-cell patch-clamp technique to determine the pacemaker activity in cultured colonic ICCs obtained from mice. Lubiprostone hyperpolarized the membrane and inhibited the generation of pacemaker potentials. Prostanoid $EP_1$, $EP_2$, $EP_3$, and $EP_4$ antagonists (SC-19220, PF-04418948, 6-methoxypyridine-2-boronc acid N-phenyldiethanolamine ester, and GW627368, respectively) did not block the response to lubiprostone. L-NG-nitroarginine methyl ester (L-NAME, an inhibitor of nitric oxide synthase) and 1H-[1,2,4]oxadiazolo[4,3,-a]quinoxalin-1-one (ODQ, an inhibitor of guanylate cyclase) did not block the response to lubiprostone. In addition, tetraethylammonium (TEA, a voltage-dependent potassium [$K^+$] channel blocker) and apamin (a calcium [$Ca^{2+}$]-dependent $K^+$ channel blocker) did not block the response to lubiprostone. However, glibenclamide (an ATP-sensitive $K^+$ channel blocker) blocked the response to lubiprostone. Similar to lubiprostone, pinacidil (an opener of ATP-sensitive $K^+$ channel) hyperpolarized the membrane and inhibited the generation of pacemaker potentials, and these effects were inhibited by glibenclamide. These results suggest that lubiprostone can modulate the pacemaker potentials of colonic ICCs via activation of ATP-sensitive $K^+$ channel through a prostanoid EP receptor-independent mechanism.
The presenilin 1 (PS1) or PS2 is an essential component of the ${\gamma}$-secretase complex, which mediates the intramembrane proteolysis of selected type-I membrane, including the ${\beta}$-amyloid precursor protein (APP) to yield A${\beta}$. Familial Alzheimer's disease (FAD)-associated mutations in presenilins give rise to an increased production of a highly amyloidogenic A${\beta}$42. In addition to their well-documented proteolytic function, the presenilins play a role in calcium signaling. We have previously reported that presenilin FAD mutations cause highly consistent alterations in intracellular calcium signaling pathways, which include deficits in capacitative calcium entry (CCE), the refilling mechanism for depleted internal calcium stores. However, molecular basis for the presenilin-mediated modulation of CCE remains to be elucidated. In the present study, whole-cell patch clamp method was used to identify a specific calcium-permeable ion channel current(s) that is responsible for the CCE deficits associated with FAD-linked PS1 mutants. Unexpectedly, both voltage-activated and conventional store depletion-activated calcium currents I(CRAC), were absent in HEK293 cells, which were stably transfected either with wild-type or FAD mutant (L286V, M146L, and delta E9) forms of PS1. Recently, magnesium-nucleotide-regulated metal cation current, or I(MagNum), has been described and appears to share many common properties with I(CRAC) including calcium permeability and inhibitor sensitivity (e.g. 2-APB). We have detected I(MagNum) in all 293 cells tested. Interestingly, FAD mutant 293 cells developed only about half of currents compared to PS1 wild type cells.
The effects of imipramine on A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents and ATP-sensitive $K^{+}\;(K_{ATP)$ currents were studied in isolated murine proximal colonic myocytes using the whole-cell patch-clamp technique. Depolarizing test pulses between-80 mV and +30 mV with 10 mV increments from the holding potential of-80 mV activated voltage-dependent outward $K^{+}$ currents that peaked within 50 ms followed by slow decreasing sustained currents. Early peak currents were inhibited by the application of 4-aminopyridine, whereas sustained currents were inhibited by the application of TEA. The peak amplitude of A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents was reduced by external application of imipramine. The half-inactivation potential and the half-recovery time of A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents were not changed by imipramine. With 0.1 mM ATP and 140 mM $K^{+}$ in the pipette and 90 mM $K^{+}$ in the bath solution and a holding potential of -80 mV, pinacidil activated inward currents; this effect was blocked by glibenclamide. Imipramine also inhibited $K_{ATP}$ currents. The inhibitory effects of imipramine in A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents and $K_{ATP}$ currents were not changed by guanosine 5-O-(2-thiodiphosphate) ($GDP{\beta}S$) and chelerythrine, a protein kinase C inhibitor. These results suggest that imipramine inhibits A-type delayed rectifier $K^{+}$ currents and $K_{ATP}$ currents in a manner independent of G-protein and protein kinase C.
Kim, Jong-Yoon;Kim, Sung-Joon;Kang, Tong-Mook;Lee, Sang-Jin;Jun, Jae-Yeoul;So, In-Suk;Kim, Ki-Whan
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제2권3호
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pp.361-368
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1998
The spontaneous contractions of gastric smooth muscles are regulated by slow waves, which are modulated by both nervous system and humoral agents. This study was designed to examine the effects of prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) on the contractile and electrical activities of antral smooth muscles in guinea-pig stomach, using an intracellular recording technique. To elucidate the underlying mechanism for its effect on contractility, ionic currents were also measured using a whole-cell patch clamp method. The basal tone by $PGE_2$ was variable, whereas the magnitude of phasic contractions was reduced ($19.0{\pm}2.1%$, n=19). The resting membrane potentials were hyperpolarized ($-4.4{\pm}0.5%$ mV, n=10), and plateau potentials were lowered ($-2.9{\pm}0.5%$ mV, n=10). In most cases, however, the initial peak potentials of slow waves were depolarized more by $PGE_2$ than those of control. The frequency of the slows wave was increased from $5.7{\pm}0.2$ cycles/min to $6.5{\pm}0.2$ (n=22). Voltage-operated $Ca^{2+}$ currents were decreased by $PGE_2$ (n=5). Voltage-operated $K^+$ currents, both Ca-dependent and Ca-independent, were increased (n=5). These results suggest that $PGE_2$ plays an important role in the modulation of gastric smooth muscle activities, and its inhibitory effects on the contractility and activities of slow waves are resulted from both decrease of $Ca^{2+}$ currents and increase of $K^+$ currents.
The effect of genistein, widely used as a specific tyrosine kinase inhibitor, on rat brain Kv1.5 channels which were stably expressed in Chinese hamster ovary cells was investigated using the whole-cell patch-clamp technique. Genistein inhibited Kv1.5 currents at +50 mV in a concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ of $54.7{\pm}8.2\;{\mu}M$ and a Hill coefficient of $1.1{\pm}0.2$. Pretreatment of Kv1.5 with protein tyrosine kinase inhibitors ($10\;{\mu}M$ lavendustin A and $100\;{\mu}M$ AG1296) and a tyrosine phosphatase inhibitor ($500\;{\mu}M$ sodium orthovanadate) did not block the inhibitory effect of genistein. The inhibition of Kv1.5 by genistein showed voltage-independence over the full activation voltage range positive to 0 mV. The activation (at +50 mV) kinetics was significantly delayed by genistein: time constant for an activation of $1.4{\pm}0.2$ msec under control conditions and $10.0{\pm}1.5$ msec in the presence of $60\;{\mu}M$ genistein. Genistein also slowed the deactivation of the tail currents, resulting in a crossover phenomenon: a time constant of $11.4{\pm}1.3$ msec and $40.0{\pm}4.2$ msec under control conditions and in the presence of $60\;{\mu}M$ genistein, respectively. Inhibition was reversed by the application of repetitive depolarizing pulses, especially during the early part of the activating pulse. These results suggest that genistein directly inhibits Kv1.5 channels, independent of phosphotyrosine-signaling pathway.
Park, Kyu-Sang;Kong, In-Deok;Lee, Joong-Woo;Rhim, Hye-Whon;Kim, Young-Chul;So, In-Suk;Kim, Ki-Whan
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제6권5호
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pp.255-260
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2002
The effects of intracellular and extracellular pH on the inwardly rectifying $K^+$ (IRK) channel of the bovine aortic endothelial cells (BAECs) were examined using whole-cell patch-clamp technique. The IRK current, efficiently blocked by $Ba^{2+}\;(200{\mu}M),$ is the most prominent membrane current in BAECs, which mainly determines the resting membrane potential. The expression of Kir2.1 was observed in BAECs using reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Intracellular alkalinization, elicited by the extracellular substitution of NaCl with $NH_4Cl$ (30 mM), significantly augmented the amplitude of IRK current. On the contrary, the amplitude of IRK current was attenuated by the Na-acetate (30 mM)-induced intracellular acidification. The changes in extracellular pH also closely modulated the amplitude of IRK current, which was decreased to $40.2{\pm}1.3%$ of control upon switching the extracellular pH to 4.0 from 7.4. The extracellular pH value for half-maximal inhibition (pK) of IRK current was 5.11. These results demonstrate that the activity of IRK channel in BAECs, probably Kir2.1, was suppressed by proton at both sides of plasma membrane.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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