Plant MYB transcription factors regulate secondary metabolism, cellular morphogenesis, and plant hormone signaling pathway. MYB proteins in plants consist of two repeats of 50 amino acid residues, which are referred to as R2R3 and they interact with WD40 or basic helix loop helix (bHLH) proteins. Yeast two hybrid assay was determined whether rice MYB protein interacts with either OsTTG1, which contains a WD40 domain, or with OsGL3, which contains a bHLH domain. Among 30 OsMYB proteins, three interacted with OsTTG1 and five interacted with OsGL3. A series of MYB mutants were created to determine the MYB domain important for the interaction with OsTTG1 or OsGL3. By using the yeast two hybrid assay, we found that the R3 motif of OsMYB10 and the R2 motif of OsMYB16 were required for interaction with OsTTG1 and OsGL3 proteins, respectively.
Allele rescue and sequence analysis of soo1-1 allele in Saccharomyces cerevisiae mutant LP0353 revealed that soo1-1 is identical to the previously reported ret1-1 allele, which has a base substitution of A for $G^{681}$ leading to an amino acid substitution of aspartic acid for $glycine^{227}$ in Soolp. However, it was revealed that the addition of osmotic stabilizer, such as 1.2M sorbitol can rescue the temperature sensitive phenotype of the ret1-1 mutant and that the soo1-1/ret1-1 mutation may confer defects in post-translational modification of proteins involved in the yeast cell wall biogenesis. Evidence for a putative role of 5th WD40 domain of the Soo1p/$\alpha$-COP in the construction and maintenance of cell walls was also presented by complementation test with deletion constructs of the SOOl.
KIF21A is a member of the Kinesin superfamily proteins (KIFs), which are microtubule-dependent molecular motors, anterograde axonal transporters of cargoes. Recently, congenital fibrosis of the extraocular muscles 1 (CFEOM1) has been shown to result from a small number of recurrent heterozygous missense mutations of KIF21A. CFEOM1 results from the inability of mutated KIF21A to successfully deliver cargoes to the development of the occulo-motor neuron or neuromuscular junction. Here, we used an yeast two-hybrid system to identify a protein that interacts with the WD-40 repeat domain of KIF21A and found a specific interaction with Purkinje cell protein-2 (Pcp-2), a small protein also known as L7. Pcp-2 protein bound to the WD-40 domain of KIF21A and KIF21B but not to other KIFs in yeast two-hybrid assays. In addition, this specific interaction was also observed in the glutathione S-transferase pull-down assay. An antibody to Pcp-2 specifically co-immunoprecipitated KIF21A associated with Pcp-2 from mouse brain extracts. These results suggest that Pcp-2 may be involved in the KIF21A-mediated transport as a KIF21A adaptor protein.
Kinesin-I exists as a tetramer of two heavy chains (KHCs, also called KIF5s), which contain the amino (N)-terminal motor domain and carboxyl (C)-terminal domain, as well as two light chains (KLCs), which bind to the KIF5s (KIF5A, KIF5B and KIF5C) stalk region. To identify the interaction proteins for KIF5A, yeast two-hybrid screening was performed and a specific interaction with the ${\beta}$ subunit of heterotrimeric G proteins ($G{\beta}$) was found. $G{\beta}$ bound to the amino acid residues between 808 and 935 of KIF5A and to other KIF5 members in the yeast two-hybrid assay. The WD40 repeat motif of $G{\beta}$ was essential for interaction with KIF5A. In addition, these proteins showed specific interactions in the glutathione S-transferase (GST) pull-down assay. An antibody to KIF5s specifically co-immunoprecipitated KIF5s associated with heterotrimeric G proteins from mouse brain extracts. These results suggest that kinesin-I motor protein transports heteroterimeric G protein attachment vesicles along microtubules in the cell.
Dynamin-related protein 2A (AtDRP2A, formally ADL6), a member of the dynamin family, is critical for protein trafficking from the TGN to the central vacuole. However, the mechanism controlling its activity is not well understood in plant cells. We isolated Arabidopsis sec13 homolog1 (AtSeh1) that interacts with AtDRP2A by a yeast two-hybrid screening. AtSeh1 has four WD40 motifs and amino acid sequence homology to Sec13, a component of COPII vesicles. Coimmunoprecipitation and protein pull-down experiments demonstrated specific interaction between AtSeh1 and AtDRP2A. AtSeh1 bound to the pleckstrin homology domain of AtDRP2A in competition with the C-terminal domain of the latter, and this resulted in inhibition of the interaction between AtDRP2A and PtdIns3P in vitro. AtSeh1 localized to multiple locations: the nucleus, the prevacuolar compartment and the Golgi complex. Based on these results we propose that AtSeh1 plays a role in regulating cycling of AtDRP2A between membrane-bound and soluble forms.
In order to screen interactor(s) of the Aspergillus nidulans ${\alpha}$-COP of COPI vesicle, we performed the yeast two hybrid screening by using the gene for A. nidulans ${\alpha}$-COP as a bait and identified ${\varepsilon}$-COP of the COPI vesicle as an interacting protein. The A. nidualns gene for the ${\varepsilon}$-COP was designated $aneA^+$ ($\underline{A.}$$\underline{n}$idulans $\underline{e}$psi-lone-COP), which encoded 296 amino acid residues with high level of identity with orthologs from other fungi. Domain analyses with yeast two-hybrid system suggested that the interaction between ${\alpha}$-COP and ${\varepsilon}$-COP relied on the C-terminus of both proteins, and that the N-terminal WD domian of ${\alpha}$-COP and the TPR region of ${\varepsilon}$-COP were not essential but required for the enhancement of the interaction. These results indicate that the interaction mode between ${\alpha}$-COP and ${\varepsilon}$-COP of COPI vesicle is evolutionarily well conserved in eukaryotes.
Parkinson's disease (PD) is the second most common neurodegenerative disease, and 5-10% of the PD cases are genetically inherited as familial PD (FPD). LRRK2 (leucine-rich repeat kinase 2) was first reported in 2004 as a gene corresponding to PARK8, an autosomal gene whose dominant mutations cause familial PD. LRRK2 contains both active kinase and GTPase domains as well as protein-protein interaction motifs such as LRR (leucine-rich repeat) and WD40. Most pathogenic LRRK2 mutations are located in either the GTPase or kinase domain, implying important roles for the enzymatic activities in PD pathogenic mechanisms. In comparison to other PD causative genes such as parkin and PINK1, LRRK2 exhibits two important features. One is that LRRK2's mutations (especially the G2019S mutation) were observed in sporadic as well as familial PD patients. Another is that, among the various PD-causing genes, pathological characteristics observed in patients carrying LRRK2 mutations are the most similar to patients with sporadic PD. Because of these two observations, LRRK2 has been intensively investigated for its pathogenic mechanism (s) and as a target gene for PD therapeutics. In this review, the general biochemical and molecular features of LRRK2, the recent results of LRRK2 studies and LRRK2's therapeutic potential as a PD target gene will be discussed.
Eph receptors and their ephrin ligands have been implicated in a variety of cellular processes such as cellular morphogenesis and motility. Our previous studies demonstrated that Odin, one of the Anks family proteins, functions as a scaffolding protein of the EphA8 signaling pathway leading to modulation of cell migration or axonal outgrowth. Here we show that WDR7 is associated with Odin and that it is possibly implicated in the EphA8 signaling pathway. WD40 repeats present in the COOH-terminal region of WDR7 appear to be crucial for its association with Odin, whereas the binding motif of Odin is located in between ankyrin repeats and PTB domain. Co-immunoprecipitation experiments revealed that association of WDR7 with Odin is enhanced by ephrin ligand treatment, possibly through forming large protein complexes including both EphA8 and ephrin-A5. Consistently, immunofluorescence staining experiments suggested that WDR7 constitute a component of the large protein complexes containing Odin, EphA8 and ephrin-A5. Taken together, our results suggest the WDR7-Odin complexes might be involved in the signaling pathway downstream of the EphA8 receptor.
Genome sequencing of the pig is being accelerated because of its importance as an evolutionary and biomedical model animal as well as a major livestock animal. However, information on expressed porcine genes is insufficient to allow annotation and use of the genomic information. A series of expressed sequence tags of 5' ends of five full-length enriched cDNA libraries (SUSFLECKs) were functionally characterized. SUSFLECKs were constructed from porcine abdominal fat, induced fat cells, loin muscle, liver, and pituitary gland, and were composed of non-normalized and normalized libraries. A total of 55,658 ESTs that were sequenced once from the 5′ ends of clones were produced and assembled into 17,684 unique sequences with 7,736 contigs and 9,948 singletons. In Gene Ontology analysis, two significant biological process leaf nodes were found: gluconeogenesis and translation elongation. In functional domain analysis based on the Pfam database, the beta transducin repeat domain of WD40 protein was the most frequently occurring domain. Twelve genes, including SLC25A6, EEF1G, EEF1A1, COX1, ACTA1, SLA, and ANXA2, were significantly more abundant in fat tissues than in loin muscle, liver, and pituitary gland in the SUSFLECKs. These characteristics of SUSFLECKs determined by EST analysis can provide important insight to discover the functional pathways in gene networks and to expand our understanding of energy metabolism in the pig.
The ubiquitin E3 ligase COP1 (Constitutive Photomorphogenesis 1) is a protein repressor of photomorphogenesis in Arabidopsisplants, and it found in various organisms, including animals. The COP1 protein regulates the stability of many of the light-signaling components that are involved in photomorphogenesis and in the developmental processes. To study the effect of COP1 on flowering in a short day plant, we have cloned a full-length of PnCOP1 (Pharbitis nil COP1) cDNA from Pharbitis nil Choisy cv. Violet, and we examined its transcript levels under various conditions. A full-length PnCOP1 cDNA consists of 2,280 bp nucleotidesthat contain 47 bp of 5'-UTR, 232 bp of 3'-UTR including the poly (A) tail, and 1,998 bp of the coding sequence. The deduced amino acid sequence contains 666 amino acids, giving it a theoretical molecular weight of 75 kD and a isolectric point of 6.2. The PnCOP1 contains three distinct domains, an N-terminal $Zn^2+$-binding RING-finger domain, a coiled-coil structure, and WD40 repeats at the C-terminal, implying that the protein plays a role in protein-protein interactions. The PnCOP1 transcript was detected in the cotyledon, hypocotyls and leaves, but not in root. The levels of the PnCOP1 transcript were reduced in leaves that were a farther distance away from the cotyledons. The expression level of the PnCOP1 gene was inhibited by light, while the expression was increased in the dark. During the floral inductive 16 hour-dark period for Pharbitis nil, the expression was increased and it reached its maximum at the 12th hour of the dark period. The levels of PnCOP1 mRNA were dramatically reduced upon light illumination. These results suggest that PnCOP1 may play an important function in the floral induction of Pharbitis nil.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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