Employing electrophysiological and cell proliferation assay techniques, we studied the effects of $Ca^{2+}$ -activated $K^+$ channel modulators on the proliferation of human dermal fibroblasts, which is important in wound healing. Macroscopic voltage-dependent outward $K^+$ currents were found at about -40 mV stepped from a holding potential of -70 mV. The amplitude of $K^+$ current was increased by NS1619, a specific large-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ (BK) channel activator, but decreased by iberiotoxin (IBTX), a specific BK channel inhibitor. To investigate the presence of an intermediate-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ (IK) channels, we pretreated the fibroblasts with low dose of TEA to block BK currents, and added 1-EBIO (an IK activator). 1-EBIO recovered the currents inhibited by TEA. When various $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel modulators were added into culture media for 1∼3 days, NS1619 or 1-EBIO inhibited the cell proliferation. On the other hand, IBTX, clotrimazole or apamin, a small conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel (SK) inhibitor, increased it. These results suggest that BK, IK, and SK channels might be involved in the proliferation of human dermal fibroblasts, which is inversely related to the channel activation.
There are many report suggesting that influx and intracellular calcium concentration $([Ca^{2+}]_i)$ are related to cell signalling in various cells. However, it has not been reported that calcium channel activation is affected by the substances involved in signal transduction pathways in the mouse eggs. In this study, the effects of isoprenaline (ISP) and cyclic AMP on calcium influx through calcium channels were investigated to show their relationship with the signal transduction process in unfertilized mouse eggs. Using whole cell voltage clamp techniques, calcium currents, elicited by the depolarizing pulses of 300 ms duration (from -50 mV to 50 mV in 10 mV increments) from a holding potential of -80 mV, were recorded. The current-voltage (I-V) relation of calcium currents was shown to be bell-shaped; the current began to activate at -50 mV and reached its maximum $(-1.33{\pm}0.16\;nA:\;mean{\pm}S.E.,\;n=7)$ at -10 mV, then decayed at around 50 mV. Calcium currents were fully activated within $7\;ms{\sim}20\;ms$ and completely inactivated 200 ms after onset of the step pulse. ISP within the concentration ranges of $10^{-8}\;M{\sim}10^{-4}\;M$ dose-dependently increased the amplitude calcium current. The permeable cyclic AMP analogue,8-bromocyclic AMP, also increased its maximal amplitude by 46ft at $10^{-5}\;M$, while protein kinase inhibitor (PKI), which is known to inhibit 0.02 phosphorylating units of cyclic AMP-dependent protein kinase (PKA) per microgram decreased calcium currents. Currents recorded in the presence of PKI were resistant to increase by the application of $10^{-5}\;M$. Also, PKI inhibited the calcium current increase elicited by ISP treatment. These results suggest that $\beta-adrenergic$ regulation of the calcium channel is mediated by the cAMP-dependent protein kinase. This signal transduction pathway might play a role in regulating $[Ca^{2+}]_i$, level due to the increase of calcium influx in mouse eggs.
Dihydropyridine (DHP) calcium channel blockers (CCBs) have been widely used to treat of several cardiovascular diseases. An excessive shortening of action potential duration (APD) due to the reduction of $Ca^{2+}$ channel current ($I_{Ca}$) might increase the risk of arrhythmia. In this study we investigated the electrophysiological effects of nicardipine (NIC), isradipine (ISR), and amlodipine (AML) on the cardiac APD in rabbit Purkinje fibers, voltage-gated $K^+$ channel currents ($I_{Kr}$, $I_{Ks}$) and voltage-gated $Na^+$ channel current ($I_{Na}$). The concentration-dependent inhibition of $Ca^{2+}$ channel currents ($I_{Ca}$) was examined in rat cardiomyocytes; these CCBs have similar potency on $I_{Ca}$ channel blocking with $IC_{50}$ (the half-maximum inhibiting concentration) values of 0.142, 0.229, and 0.227 nM on NIC, ISR, and AML, respectively. However, ISR shortened both $APD_{50}$ and $APD_{90}$ already at $1{\mu}M$ whereas NIC and AML shortened $APD_{50}$ but not $APD_{90}$ up to $30{\mu}M$. According to ion channel studies, NIC and AML concentration-dependently inhibited $I_{Kr}$ and $I_{Ks}$ while ISR had only partial inhibitory effects (<50% at $30{\mu}M$). Inhibition of $I_{Na}$ was similarly observed in the three CCBs. Since the $I_{Kr}$ and $I_{Ks}$ mainly contribute to cardiac repolarization, their inhibition by NIC and AML could compensate for the AP shortening effects due to the block of $I_{Ca}$.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.04a
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pp.175-175
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1996
The spinal dorsal horn is the area where primary afferent fibers terminate and cutaneous sensory information is Processed. A number of putative neurotransmitter substances, including excitatory and inhibitory amino acids and peptides, are present in this region and sites and cellular mechanisms of their actions have been a target of numerous studies. In this study, single neurons were acutely isolated and the properties of whole cell current and responses to excitatory and inhibitory neurotransmitters were studied by the patch clamp method. Young rats (7-14 days) were anesthetized with diethyl-ether, and the lumbar spinal cord was excised and cut transversely at a thickness of 30$\mu\textrm{m}$ by Vibroslicer. The treatment of spinal slices with low concentration of proteases (pronase and thermolysin 0.75 mg/$m\ell$) and mechanical dissociation yielded isolated neurons with near intact morphology. Multipolar, ellipsoidal and bipolar, and pyramidal cells were shown. By applying step voltage pulses to neurons held at -70 mV, two types of inward currents and one outward currents observed. The fast activating and inactivating inward current was the Na$\^$+/ current because of its fast kinetics and blocking by 0.5${\mu}$M TTX, a specific blocker of Na$\^$+/ channel. The second type of inward currents were sustained. Based on their kinetics and current-voltage relations, it was likely that the second type of inward current was the voltage-dependent Ca$\^$2+/ current. In the presence of TTX, the steady-state currents mainly represented outward K$\^$+/ current which looked like the delayed rectifier K$\^$+/ current. In addition, the membrane currents produced by agonist of excitatory amino acid (EAA) receptor and the endogenous transmitter candidate L-glutamate were recorded in isolated whole-cell voltage clamped neurons as well as responses to inhibitory amino acids (${\gamma}$-amino butyric acid, glycine). Drugs were applied by a method that allows complete exchange of the solution within 1 sec; an infinite number of solutions can be applied to a single cell.
Kim, Young-Ho;Hahn, Jung-Hyun;Lim, In-Ja;Chung, Sung-Kwon;Bang, Hyo-Weon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.2
no.2
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pp.165-172
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1998
Under certain pathophysiological conditions, such as inflammation and ischemia, the concentration of H^+$ ion in the tissue surrounding neurons is changed. Variations in H^+$ concentration are known to alter the conduction and/of the gating properties of several types of ion channels. Several types of K^+$ channels are modulated by pH. In this study, the whole cell configuration of the patch clamp technique has been applied to the recording of the responses of change of external pH on the delayed rectifier K^+$ current of cultured DRG neurons of rat. Outward K^+$ currents were examined in DRG cells, and the Charybdotoxin and Mn^{2+}$ could eliminate Ca^{2+}-dependent$K^+$ currents from outward K^+$ currents. This outward K^+$ current was activated around -60 mV by step depolarizing pulses from holding potential -70 mV. Outward K^+$ currents were decreased by low external pH. Activation and steady-state inactivation curve were shifted to the right by acidification, while there was small change by alkalization. These results suggest that H^+$ could be alter the sensory modality by changing and modifying voltage-dependent K^+$ currents, which participated in repolarization.
The signal transduction pathway for most neurotransmitter induced inhibition of $Ca^{2+}$ channels in sympathetic neurons involves a G-protein mediated, membrane-delimited mechanism without the participation of any known protein kinase. However, activation of protein kinase C (PKC) has been proposed as one of the intracellular mechanisms mediating some neurotransmitter induced $Ca^{2+}$ channel inhibition. In the present study, we investigated the effects of phorbol-12, 13-dibutyrate (PDBu) on $Ca^{2+}$ channel currents of acutely dispersed neurons from adult rat superior cervical ganglion (SCG) neurons using whole cell variant of the patch clamp technique. PDBu (500 nM), the activator of PKC, increased $Ca^{2+}$ channel currents and retarded the deactivation of tail currents. The effects of PDBu were voltage dependent and the maximal increase in the current amplitudes was observed between -10 to 10 mV (n=4). PDBu attenuated $Ca^{2+}$ current inhibition induced by norepinephrine (NE), which modulates $Ca^{2+}$ channels via a pertussis toxin (PTX)-sensitive pathway. Inhibition of PDBu by staurosporine (1 $\mu$M) blocked the effects of PDBu on current amplitudes and NE-induced G-protein mediated inhibition of $Ca^{2+}$ currents. Further experiment should be done to know if G-protein or $Ca^{2+}$ channel itself is the target of PKC phosphorvlation.phosphorvlation.
In this study we determined whether or not 5-hydroxytryptamine (5-HT) has an effect on the pacemaker activities of interstitial cells of Cajal (ICC) from the mouse small intestine. The actions of 5-HT on pacemaker activities were investigated using a whole-cell patch-clamp technique, intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) analysis, and RT-PCR in ICC. Exogenously-treated 5-HT showed tonic inward currents on pacemaker currents in ICC under the voltage-clamp mode in a dose-dependent manner. Based on RT-PCR results, we found the existence of 5-$HT_{2B,\;3,\;4,\;and\;7}$ receptors in ICC. However, SDZ 205557 (a 5-$HT_4$ receptor antagonist), SB 269970 (a 5-$HT_7$ receptor antagonist), 3-tropanylindole - 3 - carboxylate methiodide (3-TCM; a 5-$HT_3$ antagonist) blocked the 5-HT-induced action on pacemaker activity, but not SB 204741 (a 5-$HT_{2B}$ receptor antagonist). Based on $[Ca^{2+}]_i$ analysis, we found that 5-HT increased the intensity of $[Ca^{2+}]_i$. The treatment of PD 98059 or JNK II inhibitor blocked the 5-HT-induced action on pacemaker activity of ICC, but not SB 203580. In summary, these results suggest that 5-HT can modulate pacemaker activity through 5-$HT_{3,\;4,\;and\;7}$ receptors via $[Ca^{2+}]_i$ mobilization and regulation of mitogen-activated protein kinases.
Phenolic compounds affect intracellular free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) signaling. The study examined whether the simple phenolic compound octyl gallate affects ATP-induced $Ca^{2+}$ signaling in PC12 cells using fura-2-based digital $Ca^{2+}$ imaging and whole-cell patch clamping. Treatment with ATP ($100\;{\mu}M$) for 90 s induced increases in $[Ca^{2+}]_i$ in PC12 cells. Pretreatment with octyl gallate (100 nM to $20\;{\mu}M$) for 10 min inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ response in a concentration-dependent manner ($IC_{50}=2.84\;{\mu}M$). Treatment with octyl gallate ($3\;{\mu}M$) for 10 min significantly inhibited the ATP-induced response following the removal of extracellular $Ca^{2+}$ with nominally $Ca^{2+}$-free HEPES HBSS or depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores with thapsigargin ($1\;{\mu}M$). Treatment for 10 min with the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine ($1\;{\mu}M$) significantly inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase, and treatment with octyl gallate further inhibited the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate significantly inhibited the $[Ca^{2+}]_i$ increase induced by 50 mM KCI. Pretreatment with protein kinase C inhibitors staurosporin (100 nM) and GF109203X (300 nM), or the tyrosine kinase inhibitor genistein ($50\;{\mu}M$) did not significantly affect the inhibitory effects of octyl gallate on the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate markedly inhibited the ATP-induced currents. Therefore, we conclude that octyl gallate inhibits ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in PC12 cells by inhibiting both non-selective P2X receptor-mediated influx of $Ca^{2+}$ from extracellular space and P2Y receptor-induced release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores in protein kinase-independent manner. In addition, octyl gallate inhibits the ATP-induced $Ca^{2+}$ responses by inhibiting the secondary activation of voltage-gated $Ca^{2+}$ channels.
In previous reports we demonstrated that ginsenosides, active ingredients of Panax ginseng, affect some subsets of voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels in neuronal cells expressed in Xenopus laevis oocytes. However, the major component(s) of ginseng that affect cloned $Ca^{2+}$ channel subtypes such as ${\alpha}_{1C}$(L)-, ${\alpha}_{1B}$(N)-, ${\alpha}_{1A}$(P/Q)-, ${\alpha}_{1E}$(R)- and ${\alpha}_{1G}$(T) have not been identified. Here, we used the two-microelectrode voltage clamp technique to characterize the effects of ginsenosides and ginsenoside metabolites on $Ba^{2+}$ currents ($I_{Ba}$) in Xenopus oocytes expressing five different $Ca^{2+}$ channel subtypes. Exposure to ginseng total saponins (GTS) induced voltage-dependent, dose-dependent and reversible inhibition of the five channel subtypes, with particularly strong inhibition of the ${\alpha}_{1G}$-type. Of the various ginsenosides, $Rb_1$, Rc, Re, Rf, $Rg_1$, $Rg_3$, and $Rh_2$, ginsenoside $Rg_3$ also inhibited all five channel subtypes and ginsenoside $Rh_2$ had most effect on the ${\alpha}_{1C}$- and ${\alpha}_{1E}$-type $Ca^{2+}$ channels. Compound K (CK), a protopanaxadiol ginsenoside metabolite, strongly inhibited only the ${\alpha}_{1G}$-type of $Ca^{2+}$ channel, whereas M4, a protopanaxatriol ginsenoside metabolite, had almost no effect on any of the channels. $Rg_3$, $Rh_2$, and CK shifted the steady-state activation curves but not the inactivation curves in the depolarizing direction in the ${\alpha}_{1B}$- and ${\alpha}_{1A}$-types. These results reveal that $Rg_3$, $Rh_2$ and CK are the major inhibitors of $Ca^{2+}$ channels in Panax ginseng, and that they show some $Ca^{2+}$ channel selectivity.
Because synaptic refinement of medial nucleus of trapezoid body (MNTB) - lateral superior olive (LSO) synapses is most active during the first postnatal week and the long term depression (LTD) has been suggested as one of its mechanisms, LTD of MNTB-LSO synapses was investigated in neonatal rat brain stem slices with the whole cell voltage clamp technique. In $Mg^{2+}$ free condition, tetanus (10 stimuli at 10 Hz for 2 min) in the current clamp mode induced a robust LTD of isolated D, L-APV-sensitive postsynaptic currents (PSCs) for more than 30 min ($n=6,\;2.4{\pm}0.4%$ of the control), while isolated CNQX-sensitive PSCs were not suppressed ($n=6,\;95.3{\pm}1.6%$). Tetanus also elicited similar LTD in the isolated GABAergic/glycinergic PSCs ($n=6,\;3.6{\pm}0.5%$) and mixed PSCs (GABAergic/glycinergic/glutamatergic) ($n=4,\;2.2{\pm}0.7%$). However, such a strong LTD was not observed in the mixed PSCs when 10 mM EGTA was added in the internal solution (n=10), indicating that postsynaptic $Ca^{2+}$ rise is needed for the strong LTD. This robust LTD might contribute to the active synaptic refinement occurring during the first postnatal week.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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