In order to find the cellular interaction factors of the Heliothis armigera nuclear polyhedrosis virus capsid protein VP39, a Heliothis armigera cell cDNA library was constructed. Then VP39 was used as bait. The host actin gene was isolated from the cDNA library with the yeast two-hybrid system. This demonstrated that VP39 could interact with its host actin in yeast. In order to corroborate this interaction in vivo, the vp39 gene was fused with the green fluorescent protein gene in plasmid pEGFP39. The fusion protein was expressed in the Hz-AM1 cells under the control of the Autographa californica multiple nucleopolyhedrovirus immediate early gene promoter. The host actin was labeled specifically by the red fluorescence substance, tetramethy rhodamine isothicyanete-phalloidin. Observation under a fluorescence microscopy showed that VP39, which was indicated by green fluorescence, began to appear in the cells 6 h after being transfected with pEGFP39. Red actin cables were also formed in the cytoplasm at the same time. Actin was aggregated in the nucleus 9 h after the transfection. The green and red fluorescence always appeared in the same location of the cells, which demonstrated that VP39 could combine with the host actin. Such a combination would result in the actin skeleton rearrangement.
Chung Ok Choi;Chung Gil Lee;Sung Man Cho;Soo Hwan An;Joon Hun Kwon
Korean Journal of Poultry Science
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v.15
no.3
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pp.199-206
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1988
A total of 3 hybridoma clones producing monoclonal antibody (MCA) against infectious laryngotracheitis virus (ILTV) was established by somatic cell hybridization between mouse myeloma cells and spleen, cells from mice immunized with ILTV. The MCAs were screened by the indirect flourescent antibody (IFA) staining and the specific hybridomas were cloned by limiting dilution method. The MCAs produced by the 3 hybriomas were all classified as immunogloblin G and found to be reacting against common antigen(s) of high and low pathogenic ILTV examined. The titer of these antibodies in mouse ascitic fluid was from $10^5$ to $10^6$. Indirect fluorescent antibody test using these antibodies was found to be quite effective for the detection of ILTV from infected chickens being the most sensitive among the test methods adopted.
Bae, Hansol;Choi, Soo Min;Yang, Seong Wook;Pai, Hyun-Sook;Kim, Woo Taek
Molecules and Cells
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v.28
no.1
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pp.57-65
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2009
CDC48 is a member of the AAA ATPase superfamily. Yeast CDC48 and its mammalian homolog p97 are implicated in diverse cellular processes, including mitosis, membrane fusion, and ubiquitin-dependent protein degradation. However, the cellular functions of plant CDC48 proteins are largely unknown. In the present study, we performed virus-induced gene silencing (VIGS) screening and found that silencing of a gene encoding a tobacco CDC48 homolog, NgCDC48, resulted in severe abnormalities in leaf and shoot development in tobacco. Furthermore, transgenic tobacco plants (35S:anti-NgCDC48), in which the NgCDC48 gene was suppressed using the antisense RNA method, exhibited severely aberrant development of both vegetative and reproductive organs, resulting in arrested shoot and leaf growth and sterile flowers. Approximately 57-83% of 35S:anti-NgCDC48 plants failed to develop mature organs and died at early stage of development. Scanning electron microscopy showed that both adaxial and abaxial epidermal pavement cells in antisense transgenic leaves were significantly smaller and more numerous than those in wild type leaves. These results indicate that NgCDC48 is critically involved in cell growth and development of tobacco plants. An in vivo targeting experiment revealed that NgCDC48 resides in the endoplasmic reticulum (ER) in tobacco protoplasts. We consider the tantalizing possibility that CDC48-mediated degradation of an as-yet unidentified protein(s) in the ER might be a critical step for cell growth and expansion in tobacco leaves.
This study was carried out to evaluate the vaccination effects of recombinant fusion protein rVP19+28 against WSSV in shrimp, Litopenaeus vannamei. The VP19+28 gene fused with VP19 and VP28 genes was inserted into pET-28a(+) expression vector and cloned in E. coli BL21 (DE3) to produce fused gene product recombinant VP19+VP28 as a single protein. For the vaccination, the shrimps were fed with pellets coated with purified recombinant protein, rVP19+28, for 2 weeks. Then, constant amounts of WSSV at $1{\times}10^2$ diluted stocks were injected to the muscle of the shrimp for the in vivo challenge tests. Non-vaccinated shrimps showed a cumulative mortality of 100% at 11 days post-challenge. The shrimps vaccinated with the inactivated E. coli BL21 as a host cell control showed cumulative mortality of 100% at 17 days post-challenge. The shrimps vaccinated with rVP19, rVP28 and rVP19+28 showed mortalities of 66.7%, 41.7% and 41.7% at 21 days post-challenge, respectively. These results indicated that the rVP28 and rVP19+28 had relatively high vaccination effects against WSSV infection. However, this study suggests that the fusion protein rVP19+28 was more effective for the protection of shrimp against WSSV than rVP28, even though the cumulative mortalities were the same 21 days post-challenge.
Avian influenza virus (AIV) is recognized as key to the emergence of pandemic influenza for humans; there are growing concerns that AIV H9N2 may become more efficient to transmit to humans in the near future, since the infection of poultry with AIV H9N2 has been common in recent years. In this study, we aimed to produce antisera recognizing the HA and NA proteins of AIV H9N2. Initially, coding sequences corresponding to the N-terminal regions of the HA and NA proteins of the Korean AIV H9N2 (A/Ck/Kr/MS96/96) isolated from a domestic chicken were amplified from the genomic RNA. Following cloning of the amplified cDNA fragments into pGEX4T-1 vector, two GST-fusion proteins (GST-HAln and GST-NAn) were expressed in E. coli BL21 and purified with glutathione sepharose columns; the recombinant GST-HAln and GST-NAn proteins were both used as immunogens in rabbits. The antigenicity of the rabbit antisera was analyzed by immunoblotting of the cell lysates prepared from AIV H9N2-infected MDCK cells. Overall, the recombinant HAln and NAn proteins fused to the C-terminus of GST and the rabbit antisera raised against the corresponding recombinant proteins would provide a valuable reagent for AIV diagnosis and basic research.
Kim, Jin-Ik;Kaufman, Randal J.;Back, Sung Hoon;Moon, Ja-Young
Molecules and Cells
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v.42
no.11
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pp.783-793
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2019
When endoplasmic reticulum (ER) functions are perturbed, the ER induces several signaling pathways called unfolded protein response to reestablish ER homeostasis through three ER transmembrane proteins: inositol-requiring enzyme 1 (IRE1), PKR-like ER kinase (PERK), and activating transcription factor 6 (ATF6). Although it is important to measure the activity of ATF6 that can indicate the status of the ER, no specific cell-based reporter assay is currently available. Here, we report a new cell-based method for monitoring ER stress based on the cleavage of $ATF6{\alpha}$ by sequential actions of proteases at the Golgi apparatus during ER stress. A new expressing vector was constructed by using fusion gene of GAL4 DNA binding domain (GAL4DBD) and activation domain derived from herpes simplex virus VP16 protein (VP16AD) followed by a human $ATF6{\alpha}$ N-terminal deletion variant. During ER stress, the GAL4DBD-VP16AD(GV)-$hATF6{\alpha}$ deletion variant was cleaved to liberate active transcription activator encompassing GV-$hATF6{\alpha}$ fragment which could translocate into the nucleus. The translocated GV-$hATF6{\alpha}$ fragment strongly induced the expression of firefly luciferase in HeLa Luciferase Reporter cell line containing a stably integrated 5X GAL4 site-luciferase gene. The established double stable reporter cell line HLR-GV-$hATF6{\alpha}$(333) represents an innovative tool to investigate regulated intramembrane proteolysis of $ATF6{\alpha}$. It can substitute active pATF6(N) binding motif-based reporter cell lines.
Tuberculosis (TB) remains a serious health issue around the word. Adenovirus (Ad)-based vaccine and modified vaccinia virus Ankara (MVA)-based vaccine have emerged as two of the most promising immunization candidates over the past few years. However, the performance of the homologous and heterologous prime-boost immunization regimens of these two viral vector-based vaccines remains unclear. In the present study, we constructed recombinant Ad and MVA expressing an Ag85B-TB10.4 fusion protein (AdH4 and MVAH4) and evaluated the impact of their different immunization regimens on the humoral and cellular immune responses. We found that the viral vector-based vaccines could generate significantly higher levels of antigen-specific antibodies, $IFN-{\gamma}$-producing splenocytes, $CD69^+CD8^+$ T cells, and $IFN-{\gamma}$ secretion when compared with bacillus Calmette-$Gu{\acute{e}}rin$ (BCG) in a mouse model. AdH4-containing immunization regimens (AdH4-AdH4, AdH4-MVAH4, and MVAH4-AdH4) induced significantly stronger antibody responses, much more $IFN-{\gamma}$-producing splenocytes and $CD69^+CD8^+$ T cells, and higher levels of $IFN-{\gamma}$ secretion when compared with the MVAH4-MVAH4 immunization regimen. The number of $IFN-{\gamma}$-producing splenocytes sensitive to $CD8^+$ T-cell restricted peptides of Ag85B (9-1p and 9-2p) and Th1-related cytokines ($IFN-{\gamma}$ and $TNF-{\alpha}$) in the AdH4-MVAH4 heterologous prime-boost regimen immunization group was significantly higher than that in the other viral vector-based vaccine- and BCG-immunized groups, respectively. These results indicate that an immunization regimen involving AdH4 may have a higher capacity to induce humoral and cellular immune responses against TB in mice than that by regimens containing BCG or MVAH4 alone, and the AdH4-MVAH4 prime-boost regimen may generate an ideal protective effect.
Retroviruses enter host cells by membrane fusion between the viral Env proteins on the virus membrane and a virus receptor on the cellular membrane. The envelope protein of the ecotropic Moloney murine leukemia virus is synthesized as a gp85 precursor and is proteolytically cleaved into an extracellular surface unit (SU) and the transmembrane protein (TM). The cytoplasmic tail (16 amino acid; R peptide) of the TM protein is further cleaved by the viral protease during virion maturation. Unlike the wild type Env protrin bearing the R peptide, R peptide-truncated Envelope induces syncytia in susceptible cells. To understand the mechanism of R peptidetruncated Env in syncytium formation, R peptide-truncated Env expressing full-length molecular clone containing EGFP in PRR (proline rich region) of Env was constructed. This molecular clone induced syncytia in transfected NIH3T3 cells, fluorescence was detected in the cytoplasm and at the plasma membrane, while the nuclei did not stain and appeared black by fluorescence microscopy. Interestingly, virions with truncated envelope produced from transfected NIH3T3 cells induced syncytia in NIH3T3 cells, but fluorescence was not detected in the same infected cells. It is believed that cell-free viruses direct the fusion of neighboring cells without infection. Our data suggests that use of EGFP-tagged envelope for monitoring syncytium is a sensitive and convenient method. We also found that virion incorporated the R peptide-truncated Env is able to induce the formation of syncytia by fusion from without.
Chung Ok Choi;Chung Gil Lee;Sung Man Cho;Jin Soo Na;Soo Hwan An;Joon Hun Kwon
Korean Journal of Poultry Science
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v.15
no.3
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pp.207-210
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1988
A total of 3 hybridoma clones producting menoclonal antibody (MCA) against Newcastle disease virus(NDV) was raised by cell fusion method. The MCAs did not cross react against other avian or mammalian viruses tested. However, these antibodies reacted with all strains of velogenic and lentogenic NDVs tested indicating that they are unable to discriminate the possible antigenic differences among NDVs. All. the MCAs were classified as IgG type and did not show neutralizing and hemagglutination inhibition (HAI) activity except one clone which has low HAI activity. One of these MCA raised in mouse ascites revealed the titer of $10^6$ by indirect immunofluorescent antibody (IFA) test Using the MCA, virulent NDV could easily be detected from tracheal and conjunctival smears made 2 to 3 days after experimental infection.
In view of the potential of replicase protein as a diagnostic reagent for human caliciviruses (HuCVs), we have cloned and over-expressed this gene from the Snow Mountain-like Korean strains in Escherichia coli as a fusion protein with glutathione S-transferase (GST), and described the preliminary antigenic characterization of the recombinant products. Each 470bp fragment corresponding to highly conserved region of RNA-dependent RNA polymerase was generated by RT-PCR from stools of two diarrheal children, cloned in pMOSBlue T-vector, and subcloned between the EcoRI and SalI restriction sites of pGEX-4T-3, a GST gene fusion vector, yielding $pGCV_{pol}$. This construct expressed a Snow Mountain-like HuCV replicase under the control of the IPTG-inducible tac promoter. An extract prepared by sonication of the E. coli cell inclusion bodies bearing $pGCV_{pol}$ products was purified and analyzed by SDS-PAGE. After Coomassie blue staining, it was shown that the recombinant replicase migrated on the gels with an approximate molecular mass of 46.5 kDa, that was subsequently cleaved into a 26 kDa GST fragment and a 20.5 kDa replicase protein upon digestion with thrombin protease. The replicase was recognized on immunoblotting with the sera from symptomatic children with the HuCV-associated diarrhea but not by asymptomatic sera from adults. The results presented the first biological activity of individually expressed HuCV replicase subunit and provided important reagents for diagnosis of HuCV infection.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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